組織化學(xué)技術(shù)教程.ppt

1、第三章 組織化學(xué)的基本技術(shù) 組織化學(xué)發(fā)展到今天，它的技術(shù)多而復(fù)雜，但基本技術(shù)是容易掌握的。從樣品的取材、固定劑的選擇、切片的制備、孵育反應(yīng)、各種溶液的配制以及光鏡組織化學(xué)技術(shù)和電鏡組織化學(xué)技術(shù)等，每項技術(shù)都有明確的要求和規(guī)范的操作程序。進(jìn)行沒項工作，應(yīng)事先做好準(zhǔn)備，按技術(shù)程序進(jìn)行，可做一定的預(yù)備實驗，效果穩(wěn)定后，再開始實驗研究，這樣才能達(dá)到預(yù)期的科研效果,一、 樣品的取材 樣品制備的第一步就是取材，取材的好壞關(guān)系到實驗的結(jié)果。所以必須做好準(zhǔn)備工作。如取材的器材；動物標(biāo)本準(zhǔn)備，一般輕微麻醉，迅速取材為好?，F(xiàn)將取材的原則和具體要求分述如下： 刀剪銳利、潔凈。 快速、準(zhǔn)確、盡量保持生活狀態(tài)，力爭1

2、分鐘之內(nèi)放入固定液，最遲不能超過3分 鐘。要清楚取材的部位和內(nèi)部，對病理 組織還應(yīng)做到以下幾點： 材部位必須是主要病變區(qū)。 必須取病灶與正常組織的交界區(qū) 必要時取遠(yuǎn)離病灶的正常組織做對照,一刀切取，切取應(yīng)在蠟版或濾紙上進(jìn)行， 避免拉鋸、牽拉或擠壓等動作。 低溫操作，防止自溶現(xiàn)象，通常以0-4 的低溫條件下操作為佳。 定位準(zhǔn)確，取材時必須注意樣品的定向和 定位，即頭、尾、左、右以及上、下方向。 切好的樣品貼放在濾紙片上，標(biāo)記好定向標(biāo) 志，防入預(yù)冷固定液內(nèi)，或冰凍切片或短時 間冷凍保存。 樣品大小適當(dāng)，光鏡樣品一般在1.0cm以內(nèi)， 免疫組織化學(xué)樣品大約在 : 2cm1.5cm0.3cm厚度控制在

3、0.3cm。 電鏡樣品規(guī)格要求切成0.5-1.0cm3小塊,二、 固定 1固定的目的要求 固定是將組織盡可能保持原有生活狀態(tài)以 適用于某些研究程序的一種方法。固定有 如下幾方面的目的。 不僅保持組織生前的形態(tài)結(jié)構(gòu)，還要保持 結(jié)構(gòu)的化學(xué)成分和活性。 促使組織凝固、硬化，保持一定的形狀、 體積。 增加媒染作用，便于染色；增加折光率， 便于觀察,殺死活細(xì)胞或活組織，以進(jìn)行組織化學(xué)反 應(yīng)。由于固定的上述目的要求，許多良好 的組織學(xué)固定液，卻不能用于組織化學(xué)標(biāo) 本，特別是酶組織化學(xué)標(biāo)本和免疫組織化 學(xué)標(biāo)本。 2固定劑的選擇 用于組織化學(xué)的固定劑有很多種，一 般可分為單純固定劑和混合固定劑兩大類。 所有的

4、組織化學(xué)標(biāo)本固定必須根據(jù)其性質(zhì)及 所進(jìn)行的組織化學(xué)反應(yīng)選擇適當(dāng)?shù)墓潭▌?常用組織化學(xué)固定劑舉例如下： 醛類固定劑：甲醛、戊二醛；中性 福爾馬林，多聚甲醛等。 非醛類：丙酮、酒精、Zenkers液 和Carnoy氏液等等。 應(yīng)用固定劑時應(yīng)查閱有關(guān)的文獻(xiàn)資 料，對前人未做的方法應(yīng)慎用。固 定劑穿透組織的速率有很大特異性， 不同的固定液其穿透組織速率可有明 顯的不同（穿透因子不同）： t = kde t=時間；d=組織深度； k、e為穿透因子（常數(shù),3 固定的方法 原位固定法 原位固定法是在保持動物對其器官組織血液供應(yīng)的條件下，邊解剖邊向所取樣本的部位滴加預(yù)冷的固定液的一種方法。這種方法有益于組織細(xì)

5、胞酶活性和結(jié)構(gòu)的保存，不足之處是對動物刺激時間較長，因此應(yīng)快速取樣，斷頭處死動物。 浸透固定法 浸透固定法是將組織塊浸泡在固定液內(nèi)而固定的一種方法。在組織化學(xué)樣品的處理上，對浸透的時間、溫度有一定的要求，特別是免疫組織化學(xué)樣品的要求更嚴(yán)一些,灌流故定法 灌流故定法是通過血管的途徑，將固定液灌注到所要固定的器官組織內(nèi)，將生活的細(xì)胞在原位及時的固定后，在摘取樣品的方法。這種方法的特點是：快速、固定充分，但是對固定液的溫度、壓力及取材時間有嚴(yán)格的要求。 培養(yǎng)細(xì)胞和外周血細(xì)胞固定法 培養(yǎng)細(xì)胞核外周血細(xì)胞的固定方法比較特殊，對培養(yǎng)細(xì)胞通常取蓋片入37的 Hanks液中，漂洗兩次(每次35min)，洗除血

6、清后，再置于甲醛緩沖固定液內(nèi)1030min。.如果進(jìn)行電鏡觀察就以2%戊二醛固定或采取雙重固定法,外周血通常采用涂片，以甲醛緩沖固定液固定。電鏡酶組化則須離心沉淀后，用戊二醛固定（具體法見第4，5，6章）。 4 固定后的處理漂洗 已固定的組織樣品，在切片之前必須進(jìn)行漂洗，其主要目的是洗去組織中存余的固定液。這樣做有助于酶活性的提高，可避免樣品下一步和其它液相的液體接觸，引起組織的結(jié)構(gòu)改變和酶活性的降低，漂洗要求最適的PH值、滲透壓、溫度和時間來進(jìn)行,否則會影響試驗的結(jié)果,三 組織切片技術(shù) 一般的組織化學(xué)染色切片厚度要求在57 m左右，神經(jīng)組織切片的厚度要求比較特殊，一般在20100 m之間，以

7、便觀察神經(jīng)纖維的走行。對于不同的組化反應(yīng)在切片制作上有不同的要求。目前的切片技術(shù)主要有：冰凍切片、石蠟切片、超薄切片（電鏡學(xué)）。 1冰凍切片 冰凍切片是酶組織化學(xué)和免疫組織化學(xué)最常用的方法。它的突出特點：能比較好地保存組織的酶活性，較完好地保存組織抗原的免疫活性,驟冷（Quenching） 1）驟冷的目的 最主要的目的是防止標(biāo)本內(nèi)的水結(jié)成 冰晶破壞標(biāo)本結(jié)構(gòu)。 殺死組織（細(xì)胞）。 快捷制片。 2）驟冷的方法 一般可以用四種方法驟冷，應(yīng)根據(jù)實驗室條件選擇,Chayen氏驟冷法 （目前常用的驟冷法之一） 液氮法 (也是常用的驟冷方法之一) 凍干燥法（抽干組織中的水分） 冷凍替代法（置換組織中的水分,

8、切片 驟冷后的組織塊切片機(jī)上切片，目前的 切片機(jī)有兩類： 1）開放式冰凍切片機(jī)（半導(dǎo)體制冷切片機(jī)、 甲醇制冷切片機(jī)及老式CO2、氯乙烷等切片 機(jī)）。開放式冰凍切片機(jī)由于暴露于空氣 中，溫度不易控制，技術(shù)難度大，現(xiàn)多已 淘汰。 2）恒溫冰凍切片機(jī)（Cryastat）常用 恒溫冰凍切片機(jī)切片后如不染色，必須冷 風(fēng)吹干，貯存于低溫冰箱內(nèi)或短暫預(yù)固定 后，冰箱貯存,2 石蠟切片 常規(guī)石蠟切片、HE染色程序： 取材 固定 脫水：升梯度酒精脫水 50%70%80%90%95%100% 34h 1.5h 透明：用二甲苯、觀察組織塊至透明 為止（0.51h，共兩次） 浸蠟：一般用兩個蠟缸。石蠟（ 601h ；

9、石蠟（60）2 h,包埋：鐵板架包埋或其他容器，有時要求快 速冷卻。 切片和貼片：在切片機(jī)上切片，置水槽中展 片、撈片和貼片。 染色 HE染色 步驟： 1） 二甲苯510分鐘，脫去切片中的石蠟。 2）降濃度梯度酒精脫水 （100%95%90%80%70%）。 每級脫水23分鐘以除二甲苯。 3） 蒸餾水洗，去乙醇1030分鐘。 4） 蘇木精，染細(xì)胞核，23分鐘,5） 0.5%鹽酸酒精分化數(shù)秒。 6） 流水沖洗，3040分鐘。 7） 入伊紅23分鐘，細(xì)胞染成粉紅色。 8） 水洗，去浮色，數(shù)秒。 9） 升梯度酒精脫水 （70%80%90%95%100%）， 每級35分鐘。 10） 二甲苯10分鐘，使標(biāo)本透明。 11） 封固。 酶組化和免疫組化與常規(guī)石蠟切片略有不同： 脫水透明應(yīng)在4下進(jìn)行，以盡量減少酶和抗原的損失。 組織塊：2cm1.5cm0.3cm。以充分脫水、透明、浸蠟 浸蠟、包埋：60，軟蠟為佳,四、孵育反應(yīng) 1 配制孵育液的要求 清洗器具，過酸沖洗。 現(xiàn)用現(xiàn)配，保持新鮮。 嚴(yán)格配比，保持平衡。 防止污染，過濾為佳。 優(yōu)選試劑，注意純度,2 孵育的溫度和時間 溫度對酶細(xì)胞化學(xué)反應(yīng)影響很大，一般孵育的溫度有37（溫箱）；1520（室溫；04可延長時間，一般為幾個小時乃至過夜。最佳條件要根據(jù)所用樣品的種類以及