缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長的影響實(shí)驗(yàn)報(bào)告(實(shí)驗(yàn)一班)

1、僅供個(gè)人參考缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長的影響姓名：侯菲學(xué)號(hào)： 00981 實(shí)驗(yàn)?zāi)康膹男螒B(tài)學(xué)和生理生化變化方面了解缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長的影響。2 實(shí)驗(yàn)安排（ 1）用氯化三苯基四氮唑（TTC ）法與紅墨水法進(jìn)行種子生活力的快速測定實(shí)驗(yàn)原理 TTC （ 2，3，5三苯基氯化四氮唑）的氧化態(tài)是無色的，可被氫還原成不溶性的紅色三苯甲月替（ TTF）。應(yīng)用 TTC 的水溶液浸泡種子，使之滲入種胚的細(xì)胞內(nèi)，如果種胚具有生命力，其中的脫氫酶就可以將TTC 作為受氫體使之還原成為TTF而呈紅色，如果種胚死亡便不能染色，種胚生命力衰退或部分喪失生活力則染色較淺或局部被染色，因此，可以根據(jù)種胚染色的部位或染色的深淺程

2、度來鑒定種子的生命力。有生命力種子胚細(xì)胞的原生質(zhì)膜具有半透性，有選擇吸收外界物質(zhì)的能力，一般染料不能進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)，胚部不染色。而喪失生命力的種子，其胚部細(xì)胞原生質(zhì)膜喪失了選擇吸收能力，染料可自由進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)使胚部染色。所以可根據(jù)種子胚部是否被染色來判斷種子的生命力。此處用紅墨水為染料，如果胚不是紅色，則說明根具有活力，如果胚被染成紅色，則說明根已不具活力。實(shí)驗(yàn)材料 小麥種子方法與步驟 1.浸種將小麥種子用30溫水浸種6-8 小時(shí)，使其充分吸漲，以增加種胚的呼吸速率。2.顯色隨機(jī)取吸漲種子100 粒，用單面刀片沿種胚中心線縱切兩半，將其中一半置于培養(yǎng)皿中，加入適量的 0.5%TTC 溶液（以覆蓋種子

3、為度） ，在室溫（ 25）下放置 30min 左右。將另外 1 半也放入培養(yǎng)皿中， 加入 5%的紅墨水 （以覆蓋種子為度），染色 5-10min 。染色時(shí)間到后，倒去TTC 溶液和紅墨水，自來水沖洗1-2 次直至洗液無色為止。不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考3.觀察凡被 TTC 染紅的種胚為有活力的，反之為死種子。而被紅墨水染紅過的為死種子，不染色的為有活力的種子。4.記錄及計(jì)算統(tǒng)計(jì)有活力的種子數(shù)，求出活力百分?jǐn)?shù)。注意事項(xiàng) 1 選擇的種子要浸泡充分，使其膨脹，有利于實(shí)驗(yàn)現(xiàn)象的產(chǎn)生。2 在挑選種子時(shí)，要隨機(jī)選擇，數(shù)夠100 粒。3 切種子時(shí)，在胚芽處均等切取，防止一半的胚過小，影響實(shí)驗(yàn)觀察，而且防止

4、胚過小而掉落。4進(jìn)行實(shí)驗(yàn)處理時(shí)，要使得100 粒種子的一半進(jìn)行TTC 染色，一半進(jìn)行紅墨水染色，保證實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性。5 計(jì)數(shù)前要把染液洗掉，盡量讓一個(gè)人記數(shù)，使得數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)一致。（ 2）植物的溶液培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)原理 溶液培養(yǎng)法所利用的礦質(zhì)元素的種類和數(shù)量，可以認(rèn)為地控制，因此要了解某種元素是否為植物所需要時(shí)，可有意識(shí)地配制缺乏某種元素的培養(yǎng)液，看植物生長發(fā)育過程中是否顯示一定的病癥，若是植物必需的礦質(zhì)元素，則培養(yǎng)液中缺乏會(huì)引起植物特有的病癥，并使生長發(fā)育停止，最后引起死亡，并且在生長過程中也會(huì)出現(xiàn)一些生理生化變化。實(shí)驗(yàn)材料 小麥幼苗方法與步驟 1.種子的萌發(fā)2.培養(yǎng)器的準(zhǔn)備3.培養(yǎng)液的準(zhǔn)備（ 1）貯備

5、液的準(zhǔn)備Ca(NO 3)2 ： 82.07g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；KNO 3： 50.56 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；MgSO 4·7H2O： 61.62 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考KH 2PO4： 27.22 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；NaNO 3： 42.45 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；MgCl 2： 23.81 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；Na 2SO4： 35.51 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；CaCl 2：55.50 g 用蒸餾水溶解并定容為1000m

6、L ；KCl 2： 37.28 g 用蒸餾水溶解并定容為1000mL ；微量元素混合液：稱取 H3BO 3 2.86g、MnCl 21.81g、ZnCl 2 0.11g、CuCl 2 ·7H2O0.05g、NaMoO 4 ·2H2O0.025g 用蒸餾水溶解并定容為1000 mL微量元素中的鐵鹽單獨(dú)配置。配法是將2.78g FeSO4·7H2O 水溶液緩慢加入到3.73gNa2 EDTA 微沸水溶液中，并不斷攪拌，最后冷卻定容到500mL 。（ 2）培養(yǎng)液的配制按表 1 用量配制完全培養(yǎng)液和各種缺素培養(yǎng)液表 1 完全培養(yǎng)液和各種缺素培養(yǎng)液的配制配制培養(yǎng)液所需 /m

7、L/L蒸餾完-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微貯備液水全量液Ca(NO 3)210101010101010KNO 310101010101010MgSO 4·7H2O10101010101010KH 2PO410101010101010NaNO 3101010MgCl 210Na2 SO10CaCl210KCl 2102.5Fe-EDTA1111111微量元素11111111不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考蒸餾水1000958958965.5968958958958959950配制溶液中，先去蒸餾水900mL ，加入貯備液，最后配成1000mL ，以避免產(chǎn)生沉淀。培養(yǎng)液配好后，用1m

8、ol/LHCL或 1mol/LNaOH 調(diào) pH 值為 5-6。4.幼苗的培養(yǎng)5.培養(yǎng)和觀察6.生理生化指標(biāo)的測定注意事項(xiàng) 1.選用的幼苗生長一致、大小均一。2.培養(yǎng)液所用的藥品需保證純正。3.要每天都定時(shí)來搖晃培養(yǎng)液，使其空氣流通，不易缺氧，影響呼吸作用。4 按時(shí)間進(jìn)行換水，紗布上也要加適量的水。5 對(duì)比注意觀察小麥的生長形態(tài)。（ 3）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響實(shí)驗(yàn)原理 氯化三苯基四氮唑（TTC ）是標(biāo)準(zhǔn)氧化電位為80mV 的氧化還原色素，溶于水中成為無色溶液，但還原后即生成紅色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比較穩(wěn)定，不會(huì)被空氣中的氧自動(dòng)氧化，所以TTC 被廣泛地用作酶試驗(yàn)的氫受

9、體，植物根系中脫氫酶所引起的TTC 還原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，蘋果酸得到增強(qiáng)，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC 還原量能表示脫氫酶活性并作為根系活力的指標(biāo)。實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗根系。方法與步驟 （ 1） TTC 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作取 0.4 TTC 溶液 0.2ml 放入 10ml 量瓶中，加少許Na2 S2 O4 粉搖勻后立即產(chǎn)生紅色的甲月替。 再用乙酸乙酯定容至刻度，搖勻。然后分別取此液0.25ml 、0.50ml 、1.00ml 、 1.50ml 、 2.00ml 置 10ml 容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲月替 25g、50g、100g、150g、200g的標(biāo)

10、準(zhǔn)比色系列， 以空白作參比， 在 485nm波長下測定吸光度，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考圖表標(biāo)題500度400y = 199.97x + 53.107濃 300FT 200P100000.511.52OD 值（ 2）根系活力的測定稱根尖0.5g，放入 50mL 燒杯中，加入0.4%TTC 和磷酸緩沖液的等量混合液 10ml，浸沒根， 37下暗保溫 3h，后加 1mol·L -1 硫酸 2ml，停止反應(yīng)。（同時(shí)做一空白實(shí)驗(yàn)，先加硫酸，再加根樣，其他操作同上）。取出根，吸干水分后與乙酸乙酯 3 4ml 一起在研缽內(nèi)磨碎，以提出甲 月替。紅色提取液移入刻度試管，并用少量乙酸

11、乙酯把殘?jiān)礈於?、三次，移入試管?最后加乙酸乙酯使總量為10ml，在波長 485nm 下比色，以乙酸乙酯為空白調(diào)零。結(jié)果計(jì)算 四氮唑還原強(qiáng)度（mg/g( 根鮮重 )/h）四氮唑還原量（mg） / 根重（ g）×時(shí)間(h)注意事項(xiàng) 1 藥品均用分析純級(jí)藥品，實(shí)驗(yàn)器具必須非常干凈，各貯備液的移液器要專用，實(shí)驗(yàn)藥品的配制要用無離子水，以確保缺素培養(yǎng)的準(zhǔn)確性。2 移植植物是要小心，切勿傷根。3 乙酸乙酯的味道較刺鼻，實(shí)驗(yàn)過程中盡量要使門窗敞開，保持通風(fēng)。4 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)要測兩三次，求平均值。（ 4）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響實(shí)驗(yàn)原理 硝酸還原酶 (nitrate reduct

12、ase，NR) ，是植物氮素同化的關(guān)鍵酶，它催化植物體內(nèi)的硝酸鹽還原為亞硝酸鹽：NO -NADH+H+NR NO-+ NAD+ H2O3 +2產(chǎn)生的亞硝酸鹽與對(duì)-氨基苯磺酸 (對(duì) -氨基苯磺酸胺 )及 -萘胺 (或萘基乙烯二胺 )在酸性條件下定量生成紅色偶氮化合物。生成的紅色偶氮化合物在540nm 有最大吸不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考收峰，可用分光光度法測定。硝酸還原酶活性可由產(chǎn)生的亞硝態(tài)氮的量表示。一般單位鮮重以N g/(g.h)為單位。實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗。實(shí)驗(yàn)步驟 （一）標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制取 7 支潔凈烘干的 15mL 刻度試管按下表順序加入試劑， 配成 02.0 g的系列標(biāo)準(zhǔn)亞硝態(tài)

13、氮溶液。搖勻后在 25下保溫 30min ，然后在 540nm 下比色測定。以亞硝態(tài)氮 ( g)為橫坐標(biāo) (x) ，吸光度值為縱坐標(biāo) (y)建立回歸方程。試劑 /mL管號(hào)1234567亞硝酸鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液00.20.40.81.21.62.0蒸餾水2.01.81.61.20.80.40.01%磺胺44444440.02%萘基乙烯胺4444444溶液每管含亞硝態(tài)氮00.20.40.81.21.62.0/ g6y = 7.7291x + 0.0093濃度）5線性 (濃度 )Lm/4gu（ 3度濃 210OD值00.20.40.60.8亞硝酸根標(biāo)準(zhǔn)曲線(二 )樣品中硝酸還原酶活力測定(1) 酶的提取不得

14、用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考稱取材料 0.4g 鮮樣，分別放置于含有下列溶液的燒杯中：對(duì)照： 0.2mol/L磷酸緩沖液（ Ph7.5） 5mL + 蒸餾水 5mL處理： 0.2mol/L磷酸緩沖液（ Ph7.5） 5mL +0.2mol/L KNO 3 5mL(2)抽氣(3)酶促反應(yīng)30溫箱中暗保溫 30min 。（ 4） NO 2-的測定吸取對(duì)照液、處理液和蒸餾水各 2mL 于 3 支試管中，分別加入磺胺試劑 4mL ，a-萘胺試劑 4mL ，混合搖勻， 30溫箱中 保溫 30min ，用分光光度計(jì)測定 520nm處的吸光度值，根據(jù)測得的吸光度值從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得NO 2- 。（ 5）計(jì)算結(jié)果N

15、R 活 力 （ gNO2-·g-1FWh -1 ） = 處 理 液 濃 度 （ g/mL ） - 對(duì) 照 液 濃 度（ g/mL ） *10mL/( 葉片鮮重g* 時(shí)間 h)注意事項(xiàng) 1 實(shí)驗(yàn)抽氣時(shí)，要使葉片沉到抽氣管底部和中部，保證葉片內(nèi)的氣體全部排出。2 抽氣中盡量避免葉片的掉落，在抽氣管里進(jìn)行定容。3 酶促反應(yīng)在暗條件下進(jìn)行，以防光照下葉綠體形成還原型鐵氧還蛋白，促使亞硝酸還原酶把 NO2還原成 NH3。4 實(shí)驗(yàn)材料要是進(jìn)行了一定的光合作用后進(jìn)行測定。（ 5）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉綠素含量的影響實(shí)驗(yàn)原理 根據(jù)葉綠體色素對(duì)可見光譜的吸收，利用分光光度計(jì)在某一特定波長下測定其吸光度，

16、即可利用公式計(jì)算出提取液中各色素的含量。如果溶液中有數(shù)種吸光物質(zhì)，則此混合液在一定波長下的總吸光度等于各組分在相應(yīng)波長下吸光值的總和，這就是吸光值的加和性。今欲測定葉綠體色素混合提取液中的葉綠素a、b 和類胡蘿卜素的含量，只需測定該提取液在三個(gè)特定波長下的吸光值A(chǔ) ，并根據(jù)葉綠素a、b 和類胡蘿卜素在該波長下的吸光系數(shù)即可求出其濃度。在測定葉綠素a、b 時(shí)為了排除類胡蘿卜素的干擾，所以用單色光的波長選擇葉綠素在紅光區(qū)的最大吸收峰。在 95% 乙醇 中最大吸收峰的波長分別為 645nm 和 649nm ，類胡蘿卜素為不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考470nm，據(jù)此列出下列公式：C a(mg/L)=1

17、3.95A 663 6.88 A645C b(mg/L)=24.96A 645 7.32A 663C x . c (mg/L)=(1000A 470 2.05C a-114.8 C b)/245( 類胡蘿卜素 )實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗。實(shí)驗(yàn)步驟 將 0.1 克葉片剪碎，入 25mL 容量瓶，加 95%乙醇 25ml，加蓋，于 3040 黑暗的溫箱保溫 24h，至葉片變白，于 663、645nm 下比色（ 需注意比色前需添加95% 乙醇至容量瓶刻度線）。用 95%乙醇作為空白管調(diào)零，通過 OD 值計(jì)算葉綠素含量。色素含量（ mg·g-1 ） = 濃度（ mg·L -1）

18、 ×提取液總量（ml） / 葉片重量（ g） ×1000注意事項(xiàng) 1 葉綠素一定要洗干凈，避免產(chǎn)生實(shí)驗(yàn)誤差。2 葉綠素初提液體積不要太多，以免浪費(fèi)試劑，如果濃度過高，可進(jìn)行適當(dāng)稀釋。3 注意分光光度計(jì)的正確使用。4 所測得的 OD 值是葉綠素 a 和葉綠素 b 混合一起的值，要根據(jù)計(jì)算公式可分別算出結(jié)果。（ 6）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響實(shí)驗(yàn)原理 考馬斯亮藍(lán)G-250(Coomassie brilliant blue G-250)測定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種。該染料在游離狀態(tài)下呈紅色，在稀酸溶液中當(dāng)它與蛋白質(zhì)的疏水區(qū)結(jié)合后變?yōu)榍嗌?，前者最大光吸收?

19、65nm，后者在595nm。在一定蛋白質(zhì)濃度范圍內(nèi)（ 1-1000g），蛋白質(zhì)與色素結(jié)合物在595nm 波長下的吸光度玉蛋白質(zhì)含量成正比，故可用于蛋白質(zhì)的定量測定?？捡R斯亮藍(lán)G-250 與蛋白質(zhì)結(jié)合反應(yīng)十分迅速，2min 左右即達(dá)到平衡。其結(jié)合物在室溫下1h 內(nèi)保持穩(wěn)定。此法靈敏度高(比斐林 -酚法還高4 倍 )，易于操作，干擾物質(zhì)少，是一種比較好的定量法。其缺點(diǎn)是在蛋白質(zhì)很高時(shí)線性偏低，且不同來源蛋白質(zhì)與色素結(jié)合狀況有一定差異。實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗。不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考實(shí)驗(yàn)步驟 預(yù)冷蒸餾水、研缽和50 mL 容量瓶。取0.5g 葉片 +少許預(yù)冷的蒸餾水（冰盤中研磨），迅速研磨

20、后用預(yù)冷的蒸餾水定容至50 mL。把容量瓶放入冰箱中30 分鐘，每隔35 分鐘搖動(dòng)一次，然后過濾2mL 樣品入大試管，加入8mL 蒸餾水稀釋。取具塞試管 2 支，加入 0.5mL 樣品 +3mL 考馬斯亮藍(lán)G-250，空白管加 0.5mL蒸餾水 +3mL 考馬斯亮藍(lán) G-250，搖勻， 2 分鐘后迅速于595nm 下比色。 OD 值不得超過 0.12。蛋白質(zhì)含量： C=-1A ：曲線查得蛋白質(zhì)含量-1W ：樣品重C： mg.g g.mlV ：樣液體積 mlg10-3 ：g換算成mg90蛋白含量 ( g/ml)80y = 83.669x + 3.0379線性 (蛋白含量 ( g/ml)70）60

21、Lm/50gu（ 40度濃 3020100OD 值00.20.40.60.81小牛血清蛋白含量標(biāo)準(zhǔn)曲線可溶性蛋白含量測定標(biāo)準(zhǔn)曲線注意事項(xiàng) 1 考馬斯亮藍(lán)G-250 所配溶液不穩(wěn)定，所以每次實(shí)驗(yàn)都必須新配，且必須新做標(biāo)準(zhǔn)曲線。2 考馬斯亮藍(lán)G-250 配制完畢， 如果發(fā)現(xiàn)溶液中有絮狀沉淀，可以試用濾紙過濾后使用，如果實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)使用過濾后的考馬斯亮藍(lán)G-250 溶液在與樣品接觸后短時(shí)間內(nèi)便又發(fā)生絮凝，基本上推測該考馬斯亮藍(lán)G-250 過期（比較容易出現(xiàn)）3 冰浴下進(jìn)行研磨，要迅速。4 葉片研磨時(shí)由于溫度過低會(huì)粘在研缽上，出現(xiàn)冰渣，并不會(huì)影響實(shí)驗(yàn)。3 結(jié)果與分析不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考3.1 缺

22、素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長的影響表 1 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長的影響處理蒸餾完全-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微水液量株高11.617.415.516.814.217.918.919.019.618.8（ cm）8543263864根長7.822017.320.618.114.315.820.118.018.0（ cm）548779556鮮重0.150.310.200.330.210.210.430.380.370.41（ g）662595526如上表所示，完全液所處理的小麥幼苗生長的最好，缺素培養(yǎng)的大部分培養(yǎng)液小麥幼苗生長狀況有相對(duì)不同程度的減弱，但卻有少數(shù)的缺素液的根長或株高呈增加趨勢，如

23、缺鎂的株高，卻磷的根長，可見影響因素有時(shí)并不成一致的對(duì)于，只是相對(duì)作用的部位影響較大。 但，很明顯的只用蒸餾水處理的小麥苗生長最不好，生長必須元素都缺乏，將影響其整個(gè)的生理形態(tài)。形態(tài)觀察：氮 缺乏 :植株矮小 ,全株葉色淡綠,老葉枯黃磷 缺乏 :植株生長受阻 ,葉的寬度變窄 ,葉片較小葉色暗綠無光澤， 部分作物在老葉及莖呈現(xiàn)紫色鉀 缺乏 :生長受阻 ,老葉的葉緣先端黃化 ,葉緣葉肉呈現(xiàn)焦枯褐斑， 植株軟弱 ,缺水時(shí)易萎凋新 ， 葉變暗綠色 ,伸長抑制變小葉鐵 缺乏 :老葉正常 ,新葉黃化，初期葉脈保持綠色而葉肉黃化使葉脈呈綠色網(wǎng)狀，嚴(yán)重時(shí)新葉變白變小鈣 缺乏 : 頂芽易受傷，葉尖，葉緣枯死，葉

24、尖彎曲成鉤狀，根系也有壞死鎂 缺乏：先從老葉的葉緣兩側(cè)開始向內(nèi)黃化，隨著缺鎂程度的加劇，葉片呈黃色條斑，葉片皺縮，根群少，葉小硫 缺乏：幼葉失綠黃化，葉小，葉片呈黃綠色，有時(shí)呈淡黃色和褐色微量 缺乏：葉片出現(xiàn)黃化卷曲，生長較矮小，有的出現(xiàn)褐斑。蒸餾水：小麥苗長得最矮小，出現(xiàn)葉片黃花現(xiàn)象，葉片整體顏色偏黃，根系不發(fā)達(dá)。完全液：植株生長茂盛，葉片鮮綠，生長的最高大。不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考3.2 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響表 2 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響蒸完處理餾全-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微量水液根系活力49.146.463.240.546.449.640.138.4

25、58.043.3（ mg·g-1 FWh -47676727251）如上表所示 :此組數(shù)據(jù)所反映出的關(guān)于小麥幼苗根系活力的影響還是較明顯的，但數(shù)據(jù)反映的變化，缺氮元素的培養(yǎng)根系活力卻明顯的增加，而相對(duì)于鉀和鈣的卻影響不大，我認(rèn)為這反映出了，小麥幼苗的缺素具有特異性，也就是說不同的元素對(duì)小麥的影響部位，生理情況不同。也或許是由于實(shí)驗(yàn)誤差數(shù)據(jù)不準(zhǔn)確而導(dǎo)致的。3.3 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響表 3 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響蒸完處理餾全-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微量水液硝酸還原酶活力43.738.59.830.544.627.721.327.

26、526.321.1（ gNO2-·g-1 FWh-1）2576631825NR 是植物氮代謝的關(guān)鍵酶,是一種誘導(dǎo)酶， NR的誘導(dǎo)過程需要光，依賴于光合作用。如表所示，硝酸還原酶活力在卻帶元素的培養(yǎng)中影響最大，其減少量是顯著的，對(duì)其他的元素，NR 的活力也有不同的減弱（對(duì)于完全培養(yǎng)液而言）。3.4 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉綠素含量的影響表 4 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)葉綠素含量的影響蒸完-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微處理餾全量水液葉綠素含量1.681.281.521.381.361.21.441.191.46（ mg·g-1FW ） 1.40葉綠素的合成需要鎂元素的參與，

27、葉綠素a 與葉綠素b 是高等植物葉綠體色素的重要組分，約占到葉綠體色素總量的75%左右。葉綠素在光合作用中起到吸收光能、傳遞光能的作用(少量的葉綠素a 還具有光能轉(zhuǎn)換的作用)，因此葉綠素的含量不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考與植物的光合速率密切相關(guān)。如上表所示，缺鎂元素的處理下，小苗的葉綠素含量為 1.2，其他元素的缺乏對(duì)葉綠素含量也有影響， 缺鐵元素處理下對(duì)葉片的葉綠素含量也有很大的影響，推測鐵元素在葉綠素的合成或?qū)θ~綠素的含量也存在不可小視的影響。3.5 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響表 5 缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響蒸完處理餾全-N-P-K-Ca-Mg-S-F

28、e-微量水液可溶性蛋白含5.956.042.773.95.73.354.613.443.563.4量（ mg·g-1 FW ）植物體內(nèi)的可溶性蛋白質(zhì)大多數(shù)是參與各種代謝的酶類，測其含量是了解植物體總代謝的一個(gè)重要指標(biāo)。如上表所示，在缺素培養(yǎng)下，小麥葉片中的可溶性蛋白含量均有下降，缺氮元素的減少量最明顯，可能是因?yàn)榈鞍踪|(zhì)中有氮元素，是合成蛋白質(zhì)、酶的必須元素，當(dāng)然，其他元素也會(huì)不同程度的影響植物的代謝水平。4 討論礦物元素對(duì)植物的生長和繁殖有著不容忽視的作用，是植物正常的生長所必須的條件，植物必需的礦質(zhì)元素都具有獨(dú)特的生理功能，但概括的講，植物必需的礦質(zhì)元素再植物體內(nèi)有3 個(gè)方面的生理

29、作用：1 是細(xì)胞結(jié)構(gòu)物質(zhì)的組成成分， 如N ，P， S 等。 2 作為酶，輔酶的成分成分或激活劑等，如K 、 Ca 等 3起電化學(xué)作用，參與滲透調(diào)節(jié)，膠體的穩(wěn)定和電荷的中和等，如K 、 Cl 等，當(dāng)缺乏某種元素時(shí)，植物相應(yīng)的也會(huì)出現(xiàn)一些表型以及生理的反應(yīng)。此次實(shí)驗(yàn)即就不同缺素培養(yǎng)下，對(duì)植物的形態(tài)觀察和細(xì)胞內(nèi)部的相關(guān)酶等指標(biāo)的測定，來研究不同的元素在植物體中的具體作用。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，可歸納：對(duì)于營養(yǎng)液中各不同營養(yǎng)元素缺乏，小麥幼苗鮮重都呈現(xiàn)不同程度的下降趨勢；其中小麥植株鮮重對(duì)缺鐵、缺鋅比較敏感，對(duì)缺錳、缺微量較不敏感；生理生化方面的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)顯示；對(duì)于營養(yǎng)液中缺乏不同的營養(yǎng)元素，小麥和玉米葉片中葉綠素含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量與對(duì)照相比，都有不同程度的降低。總體而言，缺鐵、缺錳、缺銅、缺鎂對(duì)小麥的這些生理生化指標(biāo)影響較大；缺微量元素對(duì)小麥的這些生理生化指標(biāo)影響較小。各種元素缺乏均在葉片上有顯著表現(xiàn)，葉片是光合作用的主要器官，因此其光合功能也會(huì)發(fā)生顯著變化。對(duì)小麥而言，缺鐵，錳，對(duì)小麥的新葉影響比較大，小麥新葉對(duì)缺鐵最為敏感。各種的元不得用于商業(yè)用途僅供個(gè)人參考素根據(jù)其作用的不同，均會(huì)導(dǎo)致相應(yīng)的部位，出現(xiàn)相應(yīng)的生理生化的變化，鎂