缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)的影響試驗(yàn)報(bào)告試驗(yàn)一班

1、僅供個(gè)人參考缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)的影響姓名：侯菲 學(xué)號(hào)：00981實(shí)驗(yàn)?zāi)康膹男螒B(tài)學(xué)和生理生化變化方面了解缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)的影響。2實(shí)驗(yàn)安排（1）用氯化三苯基四氮唑（TTC ）法與紅墨水法進(jìn)行種子生活力的快速測(cè)定實(shí)驗(yàn)原理TTC（2, 3, 5-三苯基氯化四氮唑）的氧化態(tài)是無色的，可被氫還原成不溶 性的紅色三苯甲月替 （TTF）。應(yīng)用TTC的水溶液浸泡種子， 使之滲入種胚的細(xì)胞 內(nèi)，如果種胚具有生命力，其中的脫氫酶就可以將TTC作為受氫體使之還原成為TTF而呈紅色，如果種胚死亡便不能染色，種胚生命力衰退或部分喪失生活力則 染色較淺或局部被染色，因此，可以根據(jù)種胚染色的部位或染色的深淺程度來

2、鑒 定種子的生命力。有生命力種子胚細(xì)胞的原生質(zhì)膜具有半透性，有選擇吸收外界物質(zhì)的能力， 一般染料不能進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)，胚部不染色。而喪失生命力的種子，其胚部細(xì)胞原生 質(zhì)膜喪失了選擇吸收能力，染料可自由進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)使胚部染色。所以可根據(jù)種子 胚部是否被染色來判斷種子的生命力。此處用紅墨水為染料，如果胚不是紅色， 則說明根具有活力，如果胚被染成紅色，則說明根已不具活力。實(shí)驗(yàn)材料小麥種子方法與步驟1浸種將小麥種子用30C溫水浸種6-8小時(shí)，使其充分吸漲，以增加種胚的呼吸速 率。2顯色隨機(jī)取吸漲種子100粒，用單面刀片沿種胚中心線縱切兩半，將其中一半置于培養(yǎng)皿中，加入適量的0.5%TTC溶液（以覆蓋種子為度）

3、，在室溫（25C）下放置30min左右。將另外1半也放入培養(yǎng)皿中， 加入5%的紅墨水（以覆蓋種子為 度）,染色 5-10min。染色時(shí)間到后，倒去 TTC溶液和紅墨水，自來水沖洗1-2次直至洗液無色為止。3.觀察凡被 TTC 染紅的種胚為有活力的，反之為死種子。而被紅墨水染紅過的為死 種子，不染色的為有活力的種子。4.記錄及計(jì)算統(tǒng)計(jì)有活力的種子數(shù)，求出活力百分?jǐn)?shù)。注意事項(xiàng) 1 選擇的種子要浸泡充分，使其膨脹，有利于實(shí)驗(yàn)現(xiàn)象的產(chǎn)生。2 在挑選種子時(shí)，要隨機(jī)選擇，數(shù)夠 100 粒。3 切種子時(shí)，在胚芽處均等切取，防止一半的胚過小，影響實(shí)驗(yàn)觀察，而 且防止胚過小而掉落。4 進(jìn)行實(shí)驗(yàn)處理時(shí)，要使得 1

4、00 粒種子的一半進(jìn)行 TTC 染色，一半進(jìn)行紅 墨水染色，保證實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性。5 計(jì)數(shù)前要把染液洗掉，盡量讓一個(gè)人記數(shù)，使得數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)一致。（2）植物的溶液培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)原理 溶液培養(yǎng)法所利用的礦質(zhì)元素的種類和數(shù)量， 可以認(rèn)為地控制， 因此要了解 某種元素是否為植物所需要時(shí)，可有意識(shí)地配制缺乏某種元素的培養(yǎng)液，看植物 生長(zhǎng)發(fā)育過程中是否顯示一定的病癥，若是植物必需的礦質(zhì)元素，則培養(yǎng)液中缺 乏會(huì)引起植物特有的病癥，并使生長(zhǎng)發(fā)育停止，最后引起死亡，并且在生長(zhǎng)過程 中也會(huì)出現(xiàn)一些生理生化變化。實(shí)驗(yàn)材料 小麥幼苗方法與步驟 1. 種子的萌發(fā)2. 培養(yǎng)器的準(zhǔn)備3. 培養(yǎng)液的準(zhǔn)備（1）貯備液的準(zhǔn)備Ca（NO 3

5、）2 ：82.07g 用蒸餾水溶解并定容為 1000mL；KNO 3：50.56 g 用蒸餾水溶解并定容為 1000mL ；MgS04 7出0: 61.62 g用蒸餾水溶解并定容為1000mL ;KH2PO4： 27.22 g用蒸餾水溶解并定容為1000mL ;NaNO3： 42.45 g用蒸餾水溶解并定容為1000mL ;MgCl 2： 23.81 g用蒸餾水溶解并定容為1000mL ;Na2SO4: 35.51 g用蒸餾水溶解并定容為 1000mL ;CaCl2： 55.50 g用蒸餾水溶解并定容為1000mL ;KCl 2： 37.28 g用蒸餾水溶解并定容為 1000mL ;微量元素混

6、合液：稱取 H3BO3 2.86g、MnCl 2 1.81g、ZnCl 2 0.11g、CuCl2 7H2O 0.05gNaMoO4 2 H2O0.025g用蒸餾水溶解并定容為1000 mL微量元素中的鐵鹽單獨(dú)配置。配法是將2.78g FeSOq 7H2O水溶液緩慢加入到3.73gNa2 EDTA微沸水溶液中，并不斷攪拌，最后冷卻定容到500mL。(2) 培養(yǎng)液的配制按表1用量配制完全培養(yǎng)液和各種缺素培養(yǎng)液表1完全培養(yǎng)液和各種缺素培養(yǎng)液的配制配制培養(yǎng)液所需/mL/L貯備液蒸餾水宀 完全-N-P-KCaMgSFe微量液Ca(NO 3)210101010101010KNO3101010101010

7、10MgSO4 7H2O10101010101010KH 2PO410101010101010NaNO3101010MgCl 210Na2SO10CaCl210KCl 2102.5Fe-EDTA1111111微量兀素11111111蒸餾水 1000958958965.5968958958958959950配制溶液中，先去蒸餾水900mL，加入貯備液，最后配成1000mL,以避免產(chǎn)生沉淀。培養(yǎng)液配好后，用1mol/LHCL或1mol/LNaOH調(diào)pH值為5-6。4幼苗的培養(yǎng)5培養(yǎng)和觀察6.生理生化指標(biāo)的測(cè)定注意事項(xiàng)1. 選用的幼苗生長(zhǎng)一致、大小均一。2. 培養(yǎng)液所用的藥品需保證純正。3. 要每天

8、都定時(shí)來搖晃培養(yǎng)液，使其空氣流通，不易缺氧，影響呼吸作用。4按時(shí)間進(jìn)行換水，紗布上也要加適量的水。5對(duì)比注意觀察小麥的生長(zhǎng)形態(tài)。（3）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響實(shí)驗(yàn)原理氯化三苯基四氮唑（TTC ）是標(biāo)準(zhǔn)氧化電位為80mV的氧化還原色素，溶于水中成為無色溶液，但還原后即生成紅色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲 腙比較穩(wěn)定，不會(huì)被空氣中的氧自動(dòng)氧化，所以TTC被廣泛地用作酶試驗(yàn)的氫受體，植物根系中脫氫酶所引起的TTC還原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，蘋果酸得到增強(qiáng)，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC還原量能表示脫氫酶活性并作為根系活力的指標(biāo)。實(shí)驗(yàn)材料缺素培養(yǎng)的小麥幼苗根系。方法與步驟（1）

9、TTC標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作取0.4% TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中，加少許 Na?住04粉搖勻后立即產(chǎn)生紅色的甲月替。再用乙酸乙酯定容至刻度， 搖勻。然后分別取此液0.25ml、0.50ml、 1.00ml、1.50ml、2.00ml置10ml容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲月替25g 50g 100g 150g 200進(jìn)的標(biāo)準(zhǔn)比色系列， 以空白作參比，在485nm 波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。不得用于商業(yè)用途圖表標(biāo)題500.51OD值1.5（2）根系活力的測(cè)定稱根尖0.5g，放入50mL燒杯中，加入0.4%TTC和磷酸緩沖液的等量混合 液10ml，浸沒根，37C下暗保溫3h

10、,后加1mol L-1硫酸2ml，停止反應(yīng)。（同時(shí) 做一空白實(shí)驗(yàn)，先加硫酸，再加根樣，其他操作同上）。取出根，吸干水分后與 乙酸乙酯34ml 一起在研缽內(nèi)磨碎，以提出甲 月替紅色提取液移入刻度試管，并 用少量乙酸乙酯把殘?jiān)礈於?、三次，移入試管，最后加乙酸乙酯使總量?0ml,在波長(zhǎng)485nm下比色，以乙酸乙酯為空白調(diào)零。結(jié)果計(jì)算四氮唑還原強(qiáng)度（mg/g（根鮮重）/h ）=四氮唑還原量（mg） /根重（g）刈寸間（h）注意事項(xiàng)1藥品均用分析純級(jí)藥品，實(shí)驗(yàn)器具必須非常干凈，各貯備液的移液器要專用，實(shí)驗(yàn)藥品的配制要用無離子水，以確保缺素培養(yǎng)的準(zhǔn)確性。2移植植物是要小心，切勿傷根。3乙酸乙酯的味道較

11、刺鼻，實(shí)驗(yàn)過程中盡量要使門窗敞開，保持通風(fēng)。4實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)要測(cè)兩三次，求平均值。（4）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響 實(shí)驗(yàn)原理硝酸還原酶（nitrate reductase, NR）,是植物氮素同化的關(guān)鍵酶，它催化植物體內(nèi)的硝酸鹽還原為亞硝酸鹽：NONADH+ H+ NJ NO 2- + NAD + + H2O540nm有最大吸產(chǎn)生的亞硝酸鹽與對(duì)-氨基苯磺酸（對(duì)-氨基苯磺酸胺）及a萘胺（或萘基乙烯二胺）在 酸性條件下定量生成紅色偶氮化合物。生成的紅色偶氮化合物在 收峰，可用分光光度法測(cè)定。硝酸還原酶活性可由產(chǎn)生的亞硝態(tài)氮的量表示。 般單位鮮重以n卩g/（g.h為單位。實(shí)驗(yàn)材料缺素培養(yǎng)

12、的小麥幼苗。實(shí)驗(yàn)步驟（一）標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制取7支潔凈烘干的15mL刻度試管按下表順序加入試劑， 配成02.0 yg勺系列 標(biāo)準(zhǔn)亞硝態(tài)氮溶液。搖勻后在 25C下保溫30min，然后在540nm下比色測(cè)定。以 亞硝態(tài)氮（卩g為橫坐標(biāo)（x），吸光度值為縱坐標(biāo)（y）建立回歸方程。試劑/mLAvV 口呂號(hào)1234567亞硝酸鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液00.20.40.81.21.62.0蒸餾水2.01.81.61.20.80.40.01%磺胺44444440.02%萘基乙烯胺4444444溶液每管含亞硝態(tài)氮00.20.40.81.21.62.0/ yg亞硝酸根標(biāo)準(zhǔn)曲線（二）樣品中硝酸還原酶活力測(cè)定（1）酶的提取稱取材料

13、0.4g 鮮樣，分別放置于含有下列溶液的燒杯中：對(duì)照： 0.2mol/L 磷酸緩沖液（ Ph7.5） 5mL +蒸餾水 5mL處理： 0.2mol/L 磷酸緩沖液（ Ph7.5） 5mL +0.2mol/L KNO3 5mL（2）抽氣（3）酶促反應(yīng)30 C溫箱中暗保溫30min。（4）NO 2-的測(cè)定吸取對(duì)照液、處理液和蒸餾水各 2mL 于 3支試管中，分別加入磺胺試劑 4mL， a-萘胺試劑4mL,混合搖勻，30C溫箱中 保溫30min，用分光光度計(jì)測(cè)定 520nm 處的吸光度值，根據(jù)測(cè)得的吸光度值從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得 NO 2- 。（5）計(jì)算結(jié)果NR活力（卩収02- g-1FWh-1 ）=處理

14、液濃度（/mL ）-對(duì)照液濃度（ygmL） *10mL/（葉片鮮重g*時(shí)間h）注意事項(xiàng) 1 實(shí)驗(yàn)抽氣時(shí)，要使葉片沉到抽氣管底部和中部，保證葉片內(nèi)的氣體全部排出。2 抽氣中盡量避免葉片的掉落，在抽氣管里進(jìn)行定容。3 酶促反應(yīng)在暗條件下進(jìn)行，以防光照下葉綠體形成還原型鐵氧還蛋白，促使亞硝酸還原酶把NO2還原成NH34 實(shí)驗(yàn)材料要是進(jìn)行了一定的光合作用后進(jìn)行測(cè)定。（ 5）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉綠素含量的影響實(shí)驗(yàn)原理 根據(jù)葉綠體色素對(duì)可見光譜的吸收，利用分光光度計(jì)在某一特定波長(zhǎng)下測(cè)定 其吸光度，即可利用公式計(jì)算出提取液中各色素的含量。如果溶液中有數(shù)種吸光物質(zhì)，則此混合液在一定波長(zhǎng)下的總吸光度等于各組 分

15、在相應(yīng)波長(zhǎng)下吸光值的總和，這就是吸光值的加和性。今欲測(cè)定葉綠體色素混 合提取液中的葉綠素 a、b 和類胡蘿卜素的含量，只需測(cè)定該提取液在三個(gè)特定波 長(zhǎng)下的吸光值 A，并根據(jù)葉綠素a、b和類胡蘿卜素在該波長(zhǎng)下的吸光系數(shù)即可求 出其濃度。在測(cè)定葉綠素 a、b時(shí)為了排除類胡蘿卜素的干擾，所以用單色光的波 長(zhǎng)選擇葉綠素在紅光區(qū)的最大吸收峰。在95%乙醇中最大吸收峰的波長(zhǎng)分別為 645nm和649nm ,類胡蘿卜素為470nm，據(jù)此列出下列公式：Ca（mg/L）=13.95A 663 6.88 A645Cb（mg/L）=24.96A 645 -7.32A663Cx . c （mg/L）=（1000A 4

16、70 2.05Ca-114.8 Cb）/245（類胡蘿卜素 ）實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗。實(shí)驗(yàn)步驟 將0.1克葉片剪碎，入 25mL容量瓶，加 95%乙醇25ml，加蓋，于 3040 C 黑暗的溫箱保溫 24h,至葉片變白，于 663、645nm下比色（需注意比色前需添加 95%乙醇至容量瓶刻度線 ）。用 95%乙醇作為空白管調(diào)零， 通過 OD 值計(jì)算葉綠素 含量。色素含量（mgg-1）=濃度（mgL-1）對(duì)提取液總量（ml） /葉片重量（g） X1000 注意事項(xiàng) 1 葉綠素一定要洗干凈，避免產(chǎn)生實(shí)驗(yàn)誤差。2 葉綠素初提液體積不要太多，以免浪費(fèi)試劑，如果濃度過高，可進(jìn)行適當(dāng)稀釋。3 注意分

17、光光度計(jì)的正確使用。4所測(cè)得的OD值是葉綠素a和葉綠素b混合一起的值，要根據(jù)計(jì)算公式可分別 算出結(jié)果。（6）缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響實(shí)驗(yàn)原理 考馬斯亮藍(lán) G-250（Coomassie brilliant blue G-250） 測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié) 合法的一種。該染料在游離狀態(tài)下呈紅色，在稀酸溶液中當(dāng)它與蛋白質(zhì)的疏水區(qū) 結(jié)合后變?yōu)榍嗌?，前者最大光吸收?65nm，后者在595nm。在一定蛋白質(zhì)濃度范圍內(nèi)（1-1000g ,蛋白質(zhì)與色素結(jié)合物在 595nm波長(zhǎng)下的吸光度玉蛋白質(zhì)含量 成正比，故可用于蛋白質(zhì)的定量測(cè)定?？捡R斯亮藍(lán)G-250與蛋白質(zhì)結(jié)合反應(yīng)十分迅速，2min

18、左右即達(dá)到平衡。其結(jié)合物在室溫下 1h 內(nèi)保持穩(wěn)定。此法靈敏度高 （比斐林 -酚法還高 4 倍），易于操作， 干擾物質(zhì)少，是一種比較好的定量法。其缺點(diǎn)是在蛋白質(zhì)很高時(shí)線性偏低，且不 同來源蛋白質(zhì)與色素結(jié)合狀況有一定差異。實(shí)驗(yàn)材料 缺素培養(yǎng)的小麥幼苗。實(shí)驗(yàn)步驟預(yù)冷蒸餾水、研缽和 50 mL容量瓶。取0.5g葉片+少許預(yù)冷的蒸餾水（冰盤中研磨），迅速研磨后用預(yù)冷的蒸餾水定容至50 mL。把容量瓶放入冰箱中30分鐘，每隔35分鐘搖動(dòng)一次，然后過濾2mL樣品入大試管，加入 8mL蒸餾水稀釋。取具塞試管2支，加入0.5mL樣品+3mL考馬斯亮藍(lán) G-250，空白管加0.5mL 蒸餾水+3mL考馬斯亮藍(lán)G

19、-250，搖勻，2分鐘后迅速于595nm下比色。0D值不 得超過0.12。蛋白質(zhì)含量：C=C: mg.g A :曲線查得蛋白質(zhì)含量 卩g.ml V :樣液體積ml W:樣品重 g10-3: yg換算成mg)可溶性蛋白含量測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線O9oooo OOOOO8765 4 3 2 1度濃注意事項(xiàng)1考馬斯亮藍(lán)G-250所配溶液不穩(wěn)定，所以每次實(shí)驗(yàn)都必須新配，且必須新做標(biāo)準(zhǔn)曲線。2考馬斯亮藍(lán)G-250配制完畢，如果發(fā)現(xiàn)溶液中有絮狀沉淀， 可以試用濾紙過濾 后使用，如果實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)使用過濾后的考馬斯亮藍(lán)G-250溶液在與樣品接觸后短時(shí)間內(nèi)便又發(fā)生絮凝，基本上推測(cè)該考馬斯亮藍(lán)G-250過期（比較容易出現(xiàn)）3

20、冰浴下進(jìn)行研磨，要迅速。4葉片研磨時(shí)由于溫度過低會(huì)粘在研缽上，出現(xiàn)冰渣，并不會(huì)影響實(shí)驗(yàn)。3結(jié)果與分析3.1缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)的影響表1缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)的影響處理蒸餾水完全-Ca-Mg-S-Fe-微量液-N-P-K株高11.617.415.516.814.217.918.919.019.618.8(cm)8543263864根長(zhǎng)7.822017.320.618.114.315.820.118.018.0(cm)548779556鮮重0.150.310.200.330.210.210.430.380.370.41(g)662595526如上表所示，完全液所處理的小麥幼苗生長(zhǎng)的最好，缺素培

21、養(yǎng)的大部分培養(yǎng)液小麥幼苗生長(zhǎng)狀況有相對(duì)不同程度的減弱，但卻有少數(shù)的缺素液的根長(zhǎng)或株高呈增加趨勢(shì)，如缺鎂的株高，去卩磷的根長(zhǎng)，可見影響因素有時(shí)并不成一致的對(duì)于，只是相對(duì)作用的部位影響較大。但，很明顯的只用蒸餾水處理的小麥苗生長(zhǎng)最不好， 生長(zhǎng)必須元素都缺乏，將影響其整個(gè)的生理形態(tài)。形態(tài)觀察：氮缺乏:植株矮小，全株葉色淡綠，老葉枯黃磷缺乏:植株生長(zhǎng)受阻，葉的寬度變窄，葉片較小葉色暗綠無光澤，部分作物在老葉 及莖呈現(xiàn)紫色鉀缺乏:生長(zhǎng)受阻，老葉的葉緣先端黃化，葉緣葉肉呈現(xiàn)焦枯褐斑，植株軟弱，缺水時(shí) 易萎凋新，葉變暗綠色，伸長(zhǎng)抑制變小葉鐵缺乏:老葉正常，新葉黃化，初期葉脈保持綠色而葉肉黃化使葉脈呈綠色網(wǎng)狀

22、， 嚴(yán)重時(shí)新葉變白變小鈣缺乏：頂芽易受傷，葉尖，葉緣枯死，葉尖彎曲成鉤狀，根系也有壞死鎂缺乏：先從老葉的葉緣兩側(cè)開始向內(nèi)黃化，隨著缺鎂程度的加劇，葉片呈黃色條斑，葉片皺縮，根群少，葉小硫缺乏：幼葉失綠黃化，葉小，葉片呈黃綠色，有時(shí)呈淡黃色和褐色微量缺乏：葉片出現(xiàn)黃化卷曲，生長(zhǎng)較矮小，有的出現(xiàn)褐斑。蒸餾水：小麥苗長(zhǎng)得最矮小，出現(xiàn)葉片黃花現(xiàn)象，葉片整體顏色偏黃，根系不發(fā)達(dá)。完全液：植株生長(zhǎng)茂盛，葉片鮮綠，生長(zhǎng)的最高大。3.2缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響表2缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗根系活力的影響處理-M-* 烝 八、餾水宀 完全液-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微量根系活力z-1-(mg-g FW

23、h1)49.146.463.240.546.449.640.138.458.043.34767672725如上表所示：此組數(shù)據(jù)所反映出的關(guān)于小麥幼苗根系活力的影響還是較明顯的，但 數(shù)據(jù)反映的變化，缺氮元素的培養(yǎng)根系活力卻明顯的增加，而相對(duì)于鉀和鈣的卻 影響不大，我認(rèn)為這反映出了，小麥幼苗的缺素具有特異性，也就是說不同的元 素對(duì)小麥的影響部位，生理情況不同。也或許是由于實(shí)驗(yàn)誤差數(shù)據(jù)不準(zhǔn)確而導(dǎo)致 的。3.3缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響表3缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)硝酸還原酶活力的影響烝 完處理餾水全液-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe量硝酸還原酶活力1（NO?- g- FWh-1）4

24、3.738.59.830.544.627.721.327.526.321.12576631825NR是植物氮代謝的關(guān)鍵酶，是一種誘導(dǎo)酶，NR的誘導(dǎo)過程需要光，依賴于光合作用。如表所示，硝酸還原酶活力在卻帶元素的培養(yǎng)中影響最大，其減少量是顯著的，對(duì)其他的元素，NR的活力也有不同的減弱（對(duì)于完全培養(yǎng)液而言）3.4缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉綠素含量的影響表4缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)葉綠素含量的影響處理-M-* 烝 八、餾水宀完全液-N-P-K-Ca-Mg-S-Fe-微量葉綠素含量/ -1(mg-g FW)1.401.681.281.521.381.361.21.441.191.46葉綠素的合成需要鎂元素的

25、參與，葉綠素a與葉綠素b是高等植物葉綠體色素的重要組分，約占到葉綠體色素總量的75%左右。葉綠素在光合作用中起到吸收光能、傳遞光能的作用（少量的葉綠素a還具有光能轉(zhuǎn)換的作用），因此葉綠素的含量與植物的光合速率密切相關(guān)。如上表所示，缺鎂元素的處理下，小苗的葉綠素含 量為1.2,其他元素的缺乏對(duì)葉綠素含量也有影響，缺鐵元素處理下對(duì)葉片的葉綠素含量也有很大的影響，推測(cè)鐵元素在葉綠素的合成或?qū)θ~綠素的含量也存在不 可小視的影響。3.5缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響表5缺素培養(yǎng)對(duì)小麥幼苗葉片內(nèi)可溶性蛋白含量的影響處理-M-* 蒸 八、餾水宀 完-Ca-Mg-S-Fe-微量全液-N-P-K可

26、溶性蛋白含量(mgg-1 FW)5.956.042.773.95.73.354.613.443.563.4植物體內(nèi)的可溶性蛋白質(zhì)大多數(shù)是參與各種代謝的酶類，測(cè)其含量是了解植物體 總代謝的一個(gè)重要指標(biāo)。如上表所示，在缺素培養(yǎng)下，小麥葉片中的可溶性蛋白 含量均有下降，缺氮元素的減少量最明顯，可能是因?yàn)榈鞍踪|(zhì)中有氮元素，是合 成蛋白質(zhì)、酶的必須元素，當(dāng)然，其他元素也會(huì)不同程度的影響植物的代謝水平。4討論礦物元素對(duì)植物的生長(zhǎng)和繁殖有著不容忽視的作用，是植物正常的生長(zhǎng)所必須的條件，植物必需的礦質(zhì)元素都具有獨(dú)特的生理功能，但概括的講，植物必需的礦質(zhì)元素再植物體內(nèi)有 3個(gè)方面的生理作用：1是細(xì)胞結(jié)構(gòu)物質(zhì)的組

27、成成分，如 N，P, S等。2作為酶，輔酶的成分 成分或激活劑等，如 K、Ca等3起電化學(xué) 作用，參與滲透調(diào)節(jié)，膠體的穩(wěn)定和電荷的中和等，如K、Cl等，當(dāng)缺乏某種元素時(shí)，植物相應(yīng)的也會(huì)出現(xiàn)一些表型以及生理的反應(yīng)。此次實(shí)驗(yàn)即就不同缺素培 養(yǎng)下，對(duì)植物的形態(tài)觀察和細(xì)胞內(nèi)部的相關(guān)酶等指標(biāo)的測(cè)定，來研究不同的元素 在植物體中的具體作用。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，可歸納：對(duì)于營(yíng)養(yǎng)液中各不同營(yíng)養(yǎng)元素缺乏，小麥幼苗鮮重都呈現(xiàn)不同程度的下降趨勢(shì)；其中小麥植株鮮重對(duì)缺鐵、缺鋅比較敏感，對(duì)缺錳、缺微量較不敏感；生理生化方面的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)顯示；對(duì)于營(yíng)養(yǎng)液中缺乏不同的營(yíng)養(yǎng)元素，小麥和玉米葉片中葉 綠素含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含

28、量與對(duì)照相比，都有不同程度的降低?？傮w而言，缺鐵、缺錳、缺銅、缺鎂對(duì)小麥的這些生理生化指標(biāo)影響較大；缺微量元素對(duì)小麥的這些生理生化指標(biāo)影響較小。各種元素缺乏均在葉片上有顯著表現(xiàn)，葉片是光合作用的主要器官，因此其光合功能也會(huì)發(fā)生顯著變化。對(duì)小麥而言，缺鐵，錳，對(duì)小麥的新葉影響比較大，小麥新葉對(duì)缺鐵最為敏感。各種的元素根據(jù)其作用的不同，均會(huì)導(dǎo)致相應(yīng)的部位，出現(xiàn)相應(yīng)的生理生化的變化，鎂元 素會(huì)對(duì)葉綠素的含量有較大的影響，而蛋白質(zhì)酶類則對(duì)氮元素含量比較敏感，根 系活力卻硫的影響較明顯，但不同的元素缺乏對(duì)這些指標(biāo)都會(huì)有所影響，元素之 間的作用有著相互關(guān)聯(lián)的關(guān)系，作用會(huì)相互的影響。對(duì)于植物的整個(gè)生命活動(dòng)， 個(gè)元素之間協(xié)同作用，共同維持植物的正常活動(dòng)和代謝。5 結(jié)論以及其在缺素培養(yǎng)可以驗(yàn)證出