![第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿_第1頁(yè)](http://file4.renrendoc.com/view/ff845499d00bee814cf48869469716f9/ff845499d00bee814cf48869469716f91.gif)
![第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿_第2頁(yè)](http://file4.renrendoc.com/view/ff845499d00bee814cf48869469716f9/ff845499d00bee814cf48869469716f92.gif)
![第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿_第3頁(yè)](http://file4.renrendoc.com/view/ff845499d00bee814cf48869469716f9/ff845499d00bee814cf48869469716f93.gif)
![第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿_第4頁(yè)](http://file4.renrendoc.com/view/ff845499d00bee814cf48869469716f9/ff845499d00bee814cf48869469716f94.gif)
![第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿_第5頁(yè)](http://file4.renrendoc.com/view/ff845499d00bee814cf48869469716f9/ff845499d00bee814cf48869469716f95.gif)
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第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方演示文稿當(dāng)前1頁(yè),總共54頁(yè)。優(yōu)選第二章基因工程操作常規(guī)技術(shù)方當(dāng)前2頁(yè),總共54頁(yè)。5引物酶PCR技術(shù)簡(jiǎn)史?DNA的復(fù)制??核酸體外擴(kuò)增的設(shè)想聚合酶鏈反應(yīng)的發(fā)明ATCGCGATAGCGTAGCTGCGACCTAGC5’3’3’5’DNA解旋解鏈合成引物子鏈延長(zhǎng)AUCGCGTAGCGCTATCGCATCGACGCTGGATCGGGAUCG
引物酶
5‘
RNA引物RNA引物當(dāng)前3頁(yè),總共54頁(yè)。TAGCGCTATCGCATCGACGCT
GGAUCGAUCGCGPCR技術(shù)簡(jiǎn)史?DNA的復(fù)制??核酸體外擴(kuò)增的設(shè)想聚合酶鏈反應(yīng)的發(fā)明
DNA解旋解鏈合成引物子鏈延長(zhǎng)3’5‘
5‘3’5’3’
3’5’ATCGCGATAGCGTAGCTGCGACCTAGC
TAGCGCTATCGCATCGACGCTGGATCG
ATAGCGTAGCTGCGACCTAGCDNA聚合酶DNA聚合酶DNA聚合酶當(dāng)前4頁(yè),總共54頁(yè)。PCR技術(shù)簡(jiǎn)史
?
DNA的復(fù)制?
核酸體外擴(kuò)增的設(shè)想?
聚合酶鏈反應(yīng)的發(fā)明?
1971年,Khorana提出:經(jīng)過(guò)DNA
變性,與合適引物雜交,用DNA聚
合酶延伸引物,并不斷重復(fù)該過(guò)程
便可克隆基因。?
但由于測(cè)序和引物合成的困難,以
及70年代基因工程技術(shù)的發(fā)明使克
隆基因成為可能,所以,Khorana
的設(shè)想被人們遺忘了……當(dāng)前5頁(yè),總共54頁(yè)。PCR技術(shù)簡(jiǎn)史?
DNA的復(fù)制
?
核酸體外擴(kuò)增的設(shè)想
?
聚合酶鏈反應(yīng)的發(fā)明?
1985年,美國(guó)PE-Cetus公司的Mullis等人發(fā)明
了聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)?
基本原理是在試管中模擬細(xì)胞內(nèi)的DNA復(fù)制?
最初采用E-coli
DNA聚合酶進(jìn)行PCR,由于該
酶不耐熱,使這一過(guò)程耗時(shí),費(fèi)力,且易出錯(cuò)?
耐熱DNA聚合酶的應(yīng)用使得PCR能高效率的進(jìn)
行,隨后PE-Cetus公司推出了第一臺(tái)PCR自動(dòng)
化熱循環(huán)儀?
1993年,Mullis等因此項(xiàng)技術(shù)獲諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)當(dāng)前6頁(yè),總共54頁(yè)。Kary
B.
Mullis<<The
Unusual
Origin
ofthe
Polymerase
Chain
Reaction>>1989年美國(guó)《Science》雜志列PCR
為十余項(xiàng)重大科學(xué)發(fā)明之首,比喻1989年為PCR爆炸年,Mullis榮獲1993年度諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)。當(dāng)前7頁(yè),總共54頁(yè)。Mullis開(kāi)車(chē)的時(shí)候,瞬間感覺(jué)兩排路燈就是DNA的兩條鏈,自己的車(chē)和對(duì)面開(kāi)來(lái)的車(chē)象是DNA聚合酶,面對(duì)面地合成著DNA……當(dāng)前8頁(yè),總共54頁(yè)。PCR不只是一個(gè)方法改進(jìn)Mullis的上司有句“名言”,“我們要擴(kuò)增這么多DNA樣品有什么用”;到了1991,Cetus公司以3億美元的轉(zhuǎn)讓費(fèi)將PCR相關(guān)專(zhuān)利轉(zhuǎn)讓給瑞士HoffmanLaRoche公司,并在此后的經(jīng)營(yíng)中又獲得了數(shù)億美元的分紅;Mullis于1993年獲得諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng),PCR和DNA重組技術(shù)一樣意義深遠(yuǎn)。當(dāng)前9頁(yè),總共54頁(yè)。PCR儀器的變遷三個(gè)水浴鍋,用手移動(dòng)(Mullis等人當(dāng)時(shí)用的)電加熱塊+自來(lái)水冷卻(PE,1988)電加熱塊+內(nèi)置循環(huán)液冷卻(PE,1989)三個(gè)加熱塊+機(jī)械手(Stratagene,1994)半導(dǎo)體制冷和加熱(MJ,PE,BioMetra,Eppendrof)溫度梯度,熒光檢測(cè)(如Roche的Lightcycler)風(fēng)加熱Lab-on-chip式的PCR儀(所謂的芯片PCR)中國(guó)的狀況1991年出現(xiàn)三個(gè)水浴鍋+機(jī)械手的原始PCR儀(華美,復(fù)日等)現(xiàn)在以半導(dǎo)體(Peltier板)制冷式為主(杭州博日,上海天呈,廈門(mén)安普利等)當(dāng)前10頁(yè),總共54頁(yè)。PCR儀當(dāng)前11頁(yè),總共54頁(yè)。721234522時(shí)間(min)
94
溫
度(℃)
55
1
2
3
高溫變性
低溫退火
適溫延伸重復(fù)1-3步25-30輪
目的DNA片段擴(kuò)增100萬(wàn)倍以上DNA雙螺旋DNA單鏈與引物復(fù)性形成單鏈
DNA變性子鏈延伸
DNA加倍PCR的基本原理當(dāng)前12頁(yè),總共54頁(yè)。94℃模板DNA當(dāng)前13頁(yè),總共54頁(yè)。50℃
引物1
DNA引物引物2當(dāng)前14頁(yè),總共54頁(yè)。72℃引物1引物2DNA引物Taq酶Taq酶當(dāng)前15頁(yè),總共54頁(yè)。94℃
第1輪結(jié)束
第2輪開(kāi)始當(dāng)前16頁(yè),總共54頁(yè)。50℃
?Taq
?
?
Taq
TaqTaq72℃當(dāng)前17頁(yè),總共54頁(yè)。72℃
第2輪結(jié)束當(dāng)前18頁(yè),總共54頁(yè)。當(dāng)前19頁(yè),總共54頁(yè)。當(dāng)前20頁(yè),總共54頁(yè)。PCR體系的主要組分和反應(yīng)條件
標(biāo)準(zhǔn)的PCR反應(yīng)體系4種dNTP混合物
各200umol/L引物
各10~100pmol模板DNA
0.1~2ugTaq
DNA聚合酶
2.5uMg2+
1.5mmol/L當(dāng)前21頁(yè),總共54頁(yè)。1)PCR反應(yīng)成分(1)模板單、雙鏈DNA均可。不能混有蛋白酶、核酸酶、DNA聚合酶抑制劑、DNA結(jié)合蛋白類(lèi)。一般100ng
DNA模板/100L。模板濃度過(guò)高會(huì)導(dǎo)致反應(yīng)的非特異性增加。當(dāng)前22頁(yè),總共54頁(yè)。(2)引物設(shè)計(jì):a.序列應(yīng)位于高度保守區(qū),與非擴(kuò)增區(qū)無(wú)同源序列。b.引物長(zhǎng)度以15-40
bp為宜。c.堿基盡可能隨機(jī)分布,G+C占50-60%。d.引物內(nèi)部避免形成二級(jí)結(jié)構(gòu)。e.兩引物間避免有互補(bǔ)序列。f.引物3’端為關(guān)鍵堿基;5’端無(wú)嚴(yán)格限制。當(dāng)前23頁(yè),總共54頁(yè)。
引物濃度
mol/L濃度過(guò)高易導(dǎo)致模板與引物錯(cuò)配,反應(yīng)特異性下降。(3)Taq
DNA聚合酶(thermus
aquaticus)
U/50
l酶量增加使反應(yīng)特異性下降;酶量過(guò)少影響反應(yīng)產(chǎn)量。當(dāng)前24頁(yè),總共54頁(yè)。(4)dNTPdNTP濃度取決于擴(kuò)增片段的長(zhǎng)度四種dNTP濃度應(yīng)相等濃度過(guò)高易產(chǎn)生錯(cuò)誤堿基的摻入,濃度過(guò)低則降低反應(yīng)產(chǎn)量dNTP可與Mg2+結(jié)合,使游離的Mg2+濃度下降,影響DNA聚合酶的活性。當(dāng)前25頁(yè),總共54頁(yè)。(5)
Mg2+Mg2+是DNA聚合酶的激活劑。0.5mmol/L-2.5mmol/L反應(yīng)體系。Mg2+濃度過(guò)低會(huì)使Taq酶活性喪失、PCR產(chǎn)量下降;
Mg2+過(guò)高影響反應(yīng)特異性。Mg2+可與負(fù)離子結(jié)合,所以反應(yīng)體系中dNTP、EDTA等的濃度影響反應(yīng)中游離的Mg2+濃度。當(dāng)前26頁(yè),總共54頁(yè)。2)PCR的條件(1)
變性使雙鏈DNA解鏈為單鏈94℃
20-30s(2)
退火溫度由引物長(zhǎng)度和GC含量決定。增加溫度能減少引物與模板的非特異性結(jié)合;降低溫度可增加反應(yīng)的靈敏性。當(dāng)前27頁(yè),總共54頁(yè)。(3)延伸70-75℃,延伸時(shí)間由擴(kuò)增片段長(zhǎng)度決定(4)循環(huán)次數(shù)主要取決于模版DNA的濃度一般為25-35次次數(shù)過(guò)多:擴(kuò)增效率降低錯(cuò)誤摻入率增加當(dāng)前28頁(yè),總共54頁(yè)。ParameterConcentrationTemplatepHdNTPsGelatinPrimersMg2+oncentrationEnzymeTotalvolume10
attomoles(~1×106molecules)8.4(10mMTris-Hcl)200μM(eachone)100g/ml(optional)0.5μM(eachone);(0.1—1.0μM)>0.5mM;<10mM1unit25—100μlReaction
Condition
for
a
Typical
PCR
Assay當(dāng)前29頁(yè),總共54頁(yè)。Program94℃(firststep)37—60℃(secondstep)72℃(thirdstep)RepsCycle1Cycle2—30Cycle31*1min1min1min1min1min1min1min1min10min1×29×1×Typical
PCR
Thermal
Profile*This
cycleis
normallyincludedinaPCRassay
in
order
toallow
any
“unfinished”product
frompreviousamplificationtoachieveitsfulllength當(dāng)前30頁(yè),總共54頁(yè)。
PCR動(dòng)畫(huà)1stcycle2ndcycle3rdcycle過(guò)程變性引物退火DNA復(fù)制當(dāng)前31頁(yè),總共54頁(yè)。?靈敏度高1.皮克(pg=10-12)量級(jí)擴(kuò)增到微克(ug=10-6)水平2.
能從100萬(wàn)個(gè)細(xì)胞中檢出一個(gè)靶細(xì)胞??簡(jiǎn)便、快速
1.一次性加好反應(yīng)液,2~4
小時(shí)完成擴(kuò)增
2.擴(kuò)增產(chǎn)物一般用電泳分析對(duì)標(biāo)本的純度要求低
血液、體腔液、洗嗽液、毛發(fā)、細(xì)胞、活組織等組織的粗提DNAPCR的特點(diǎn)當(dāng)前32頁(yè),總共54頁(yè)。PCR的應(yīng)用?
研究–
基因克隆,DNA測(cè)序,分析突變?
診斷–
細(xì)菌、病毒、寄生蟲(chóng)檢測(cè),診斷?
人類(lèi)基因組工程–
遺傳圖譜的構(gòu)建,DNA測(cè)序,表達(dá)圖譜?
法醫(yī)–
犯罪現(xiàn)場(chǎng)標(biāo)本分析?
腫瘤–
各種腫瘤檢測(cè)?
其他……當(dāng)前33頁(yè),總共54頁(yè)。
1)
基因克隆重組DNA質(zhì)粒DNA基因片段當(dāng)前34頁(yè),總共54頁(yè)。
2)
基因檢測(cè)內(nèi)源性病變基因A
A’正常人
病人
人病原微生物基因
正常人
(-)
病
人
(+)當(dāng)前35頁(yè),總共54頁(yè)。遺傳病的診斷地中海貧血珠蛋白鏈合成不平衡HBA1、HBA2第11號(hào)染色體上的HBB基因當(dāng)前36頁(yè),總共54頁(yè)。惡性腫瘤(癌基因或抑癌基因)PCR-RFLP(限制性核酸片段多態(tài)性)法:限制性內(nèi)切酶Ras基因當(dāng)前37頁(yè),總共54頁(yè)。突變限制性內(nèi)切酶正常突變電泳當(dāng)前38頁(yè),總共54頁(yè)。父
'父子母
親子鑒定當(dāng)前39頁(yè),總共54頁(yè)。現(xiàn)
嫌1嫌2
嫌3
犯罪現(xiàn)場(chǎng)調(diào)查當(dāng)前40頁(yè),總共54頁(yè)。1)不對(duì)稱(chēng)PCR目的:擴(kuò)增產(chǎn)生特異長(zhǎng)度的單鏈DNA。方法:采用兩種不同濃度的引物。分別稱(chēng)為限制性引物和非限制性引物,其最佳比例一般是0.01∶0.5μM,關(guān)鍵是限制性引物的絕對(duì)量。用途:制備核酸序列測(cè)定的模板制備雜交探針基因組DNA結(jié)構(gòu)功能的研究PCR的類(lèi)型限制性引物(低濃度引物)當(dāng)前41頁(yè),總共54頁(yè)。高濃度引物低濃度引物當(dāng)前42頁(yè),總共54頁(yè)。
2)反向PCR
(reverse
PCR)
是用反向的互補(bǔ)引物來(lái)擴(kuò)增兩引物以外的DNA片段對(duì)某個(gè)已知DNA片段兩側(cè)的未知序列進(jìn)行擴(kuò)增。
可對(duì)未知序列擴(kuò)增后進(jìn)行分析,如探索鄰接已知DNA片段的序列;用于僅知部分序列的全長(zhǎng)cDNA的克隆,擴(kuò)增基因文庫(kù)的插入DNA;建立基因組步移文庫(kù)。已知序列未知序列未知序列當(dāng)前43頁(yè),總共54頁(yè)。已知序列未知序列
限制酶
未知序列限制酶連接酶當(dāng)前44頁(yè),總共54頁(yè)。3)多重PCR用于檢測(cè)特定基因序列的存在或缺失。電泳引物當(dāng)前45頁(yè),總共54頁(yè)。4)LP-PCR(Labelled
primers)利用同位素、熒光素等對(duì)PCR引物進(jìn)行標(biāo)記,用以直觀地檢測(cè)目的基因。特別適合大量臨床標(biāo)本的基因診斷可同時(shí)檢測(cè)多種基因成分病毒1病毒2病毒
3病毒4當(dāng)前46頁(yè),總共54頁(yè)。標(biāo)記引物PCR觀察PCR產(chǎn)物當(dāng)前47頁(yè),總共54頁(yè)。用于擴(kuò)增已知一端序列的目的DNA。在未知序列一端加上一段多聚dG的尾巴,然后分別用多聚dC
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