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文檔簡(jiǎn)介

ICST/CI×××—2024

CCS

團(tuán)體標(biāo)準(zhǔn)

T/CIXXX—2024

船舶壓載水管理系統(tǒng)生物滅活有效

性檢測(cè)規(guī)程

Codefortestingtheeffectivenessofbiologicalinactivationinship

ballastwatermanagementsystems

(征求意見(jiàn)稿)

2024-X-X發(fā)布2024-X-X實(shí)施

中國(guó)國(guó)際科技1促進(jìn)會(huì)發(fā)布

T/CI×××—2024

船舶壓載水管理系統(tǒng)生物滅活有效性檢測(cè)規(guī)程

1范圍

本文件規(guī)定了船舶壓載水管理系統(tǒng)生物滅活性能的采樣規(guī)程、L型和S型存活生物指示性

檢測(cè)規(guī)程和詳細(xì)檢測(cè)方法、菌落總數(shù)檢測(cè)規(guī)程、耐熱大腸桿菌檢測(cè)規(guī)程、大腸埃希氏菌檢測(cè)

規(guī)程、腸球菌檢測(cè)規(guī)程和有毒霍亂弧菌檢測(cè)規(guī)程。本文件適用于船舶壓載水管理系統(tǒng)生物滅

活性能的檢測(cè)與評(píng)估。

2規(guī)范性引用文件

下列文件中的內(nèi)容通過(guò)文中的規(guī)范性引用而構(gòu)成本文件必不可少的條款。其中,注日期

的引用文件,僅該日期對(duì)應(yīng)的版本適用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括

所有的修改單)適用于本文件。

GB5750.12-2023生活飲用水標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法微生物指標(biāo)

GB19489-2008實(shí)驗(yàn)室生物安全通用要求

GB4789.38-2012食品微生物學(xué)檢驗(yàn)大腸埃希氏菌計(jì)數(shù)

GB17378.7海洋監(jiān)測(cè)規(guī)范第7部分:近海污染生態(tài)調(diào)查和生物監(jiān)測(cè)檢測(cè)方法

GB/T12763海洋調(diào)查規(guī)范第6部分:海洋生物調(diào)查

ASTMD5392-2014用兩步膜濾法分離和計(jì)數(shù)水中大腸桿菌的標(biāo)準(zhǔn)試驗(yàn)方法

JT/T1393-2021船舶壓載水指示性分析取樣與檢測(cè)要求

SN/T1239-2015國(guó)境口岸霍亂檢驗(yàn)規(guī)程

HJ1215-2021水質(zhì)浮游植物的測(cè)定濾膜顯微鏡計(jì)數(shù)法

國(guó)際海事組織2004《國(guó)際船舶壓載水和沉積物管理與控制公約》(以下簡(jiǎn)稱壓載水公

約)

國(guó)際海事組織BWM.2/Circ.70《船舶壓載水管理系統(tǒng)調(diào)試測(cè)試指南》

國(guó)際海事組織MEPC,173(58)《G2導(dǎo)則船舶壓載水取樣導(dǎo)則》

國(guó)際海事組織MEPC74/INF.18《在船舶壓載水中指示性檢測(cè)有毒有害海洋生物可用設(shè)備

總結(jié)》

美國(guó)國(guó)家衛(wèi)生基金會(huì)認(rèn)證EPA/600/R-10/146《壓載水處理技術(shù)驗(yàn)證通用協(xié)議》

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ISO6222-1999水質(zhì)可培養(yǎng)微生物的計(jì)數(shù)方法營(yíng)養(yǎng)瓊脂介質(zhì)中接種法進(jìn)行群落計(jì)數(shù)

ISO9308-1-2014水質(zhì)—大腸埃希氏菌和大腸菌群計(jì)數(shù)——第一部分低細(xì)菌背景區(qū)系

水的膜過(guò)濾法

ISO7899-2-2000水質(zhì)—腸球菌的檢測(cè)和計(jì)數(shù)第2部分:膜過(guò)濾法

ISO8199-1988水質(zhì)—微生物培養(yǎng)計(jì)數(shù)通用指南

ISO5667-3-2012水質(zhì)—取樣—第三部分:水樣的處理與保存

3術(shù)語(yǔ)和定義

SN/T1239界定的術(shù)語(yǔ)和定義適用于本文件,下列術(shù)語(yǔ)和定義適用于本標(biāo)準(zhǔn)。

3.1

船舶壓載水Ballastwater

為保持船舶具有一定吃水深度或調(diào)整船體平衡,以便保證船舶航行安全平穩(wěn),而需泵入

艙內(nèi)、在裝貨時(shí)再自艙內(nèi)排出的水體。

3.2

壓載水管理系統(tǒng)Ballastwatermanagementsystem

用于清除、殺死壓載水中的生物或(在排放前)使其失去活性的預(yù)制、商用處理系統(tǒng)。供

應(yīng)商壓載水處理產(chǎn)品的整體將用于實(shí)現(xiàn)供應(yīng)商對(duì)處理效果或運(yùn)行性能的主張,并以集成的方

式包括所有組件。

3.3

處理水Treatedballastwater

壓載水管理系統(tǒng)處理后排出的水。

3.4

環(huán)境水Ambientwater

在測(cè)試時(shí)提供給處理系統(tǒng)的水。環(huán)境水須在特定的生物密度范圍和水質(zhì)參數(shù)內(nèi),用于評(píng)

定處理設(shè)備全面運(yùn)行條件下的效能。

3.5

等動(dòng)力取樣Isokineticsamplecollection

從取樣口收集樣品的水流速度與主壓載管中的速度相對(duì)等的取樣方式。

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3.6

存活生物Viableorganisms

存活生物為有機(jī)體和活著的所有生命階段,本標(biāo)準(zhǔn)中僅指浮游生物。

3.6.1L型存活生物

是指最小尺寸≥50μm的浮游動(dòng)物。

3.6.2S型存活生物

是指最小尺寸<50μm且≥10μm的浮游生物。

3.7

浮游生物Plankton

懸浮于水中,體型微小,無(wú)運(yùn)動(dòng)能力或游動(dòng)能力很弱,不能主動(dòng)做長(zhǎng)距離運(yùn)動(dòng),只能被

動(dòng)地“隨波逐流”,主要包括浮游植物與浮游動(dòng)物。

3.8

最小尺寸Minimumsize

基于《壓載水公約》的描述,特指浮游生物的體長(zhǎng)、體寬和體高中最小的尺寸,浮游生

物的身體長(zhǎng)度、寬度和高度則是通過(guò)測(cè)量最大的部分來(lái)確定的。

L型存活生物的最小尺寸:浮游動(dòng)物的剛毛、刺、觸須等不包括在內(nèi),L型存活生物的

最小尺寸為生物的體寬部分如下圖所示。

圖1L型浮游生物最小尺寸的測(cè)定(需畫(huà)平行線顯示體長(zhǎng))

S型存活生物的最小尺寸:以單個(gè)細(xì)胞或單個(gè)體的體寬為最小尺寸,如下圖所示。

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圖2S型浮游生物的最小尺寸示意圖

3.9

脈沖-振幅-調(diào)制Pulse-Amplitude-Modulation(PAM)葉綠素?zé)晒鈾z測(cè)法

通過(guò)發(fā)射一系列微弱的光,脈沖誘導(dǎo)藻類細(xì)胞內(nèi)葉綠素發(fā)出熒光(F0)而不進(jìn)行光合作

用,之后以快速?gòu)?qiáng)光脈沖關(guān)閉所有光合細(xì)胞的電子門(mén)暫時(shí)抑制光合作用,從而使葉綠素?zé)晒?/p>

達(dá)到最大(Fm),可變熒光Fv=Fm-F0,根據(jù)Fm和F0可以計(jì)算出光合系統(tǒng)PSII的最大量子產(chǎn)量

Fv/Fm=(Fm-F0)/Fm,它反映了浮游植物的潛在最大光合能力,即藻類的生理狀態(tài)。基于這種方

法可用來(lái)指示性檢測(cè)最小尺寸≥10μm且<50μm(S型)浮游植物的活體數(shù)量。

3.10

活性熒光檢測(cè)法Activefluorescence

是將一定波長(zhǎng)的光照射到活的藻類細(xì)胞上后得到的活細(xì)胞中的葉綠素?zé)晒庑盘?hào),基于這

種方法可用來(lái)指示性檢測(cè)最小尺寸≥10μm且<50μm(S型)浮游植物的數(shù)量。

3.11

三磷酸腺苷Adenosinetriphosphate(ATP)熒光檢測(cè)法

在熒光素酶E(luciferase)和Mg2+的作用下,熒光素LH2(luciferin)與ATP發(fā)生腺

苷?;换罨?,活化后的熒光素LH2與熒光素酶E相結(jié)合,形成了熒光素—AMP復(fù)合體,并

放出焦磷酸(PPi)。該復(fù)合體被分子氧氧化,形成激發(fā)態(tài)復(fù)合物P*-E·AMP,放出CO2,當(dāng)

該復(fù)合物從激發(fā)態(tài)回到基態(tài)時(shí)發(fā)射光,并最終形成氧化蟲(chóng)熒光素P和AMP,其強(qiáng)度與生物密

度正相關(guān),基于這種方法可用來(lái)指示性檢測(cè)最小尺寸≥50μm(L型)浮游生物,最小尺寸

≥10μm且<50μm(S型)浮游生物的數(shù)量。

3.12

運(yùn)動(dòng)和熒光軌跡Motilityandfluorescenceassay(MFA)檢測(cè)法

4

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根據(jù)浮游動(dòng)物運(yùn)動(dòng)軌跡成像后進(jìn)行智能計(jì)數(shù),結(jié)合浮游植物自發(fā)熒光進(jìn)行檢測(cè),基于這

種方法來(lái)示性檢測(cè)最小尺寸≥50μm(L型)存活生物,最小尺寸≥10μm且<50μm(S

型)存活生物的數(shù)量。

3.13

指標(biāo)性微生物Indicatorbacteria

用以指示船舶壓載水衛(wèi)生狀況及安全性的指示性微生物,主要包括菌落總數(shù)、耐熱大腸

菌群、大腸埃希氏菌、腸球菌和有毒霍亂弧菌(O1和O139)。

3.14

菌落總數(shù)Aerobicplatecount

壓載水樣品經(jīng)過(guò)處理,在一定條件下(如培養(yǎng)基、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時(shí)間等)培養(yǎng)后,所

得每mL檢樣中形成的菌落總數(shù)。

3.15

耐熱大腸菌群Fecalcoliforms

是指在44.5℃下培養(yǎng)24~48h能發(fā)酵乳糖、產(chǎn)酸產(chǎn)氣的需氧和兼性厭氧革蘭氏陰性無(wú)

芽胞桿菌。

3.16

大腸埃希氏菌Escherichiacoli

又稱大腸桿菌,是廣泛存在于人和溫血?jiǎng)游锏哪c道中,需氧及兼性厭氧,44.5℃生長(zhǎng),

IMViC(靛基質(zhì)、甲基紅、VP實(shí)驗(yàn)、檸檬酸鹽)生化試驗(yàn)++--或-+--的革蘭氏陰性桿菌。

3.17

腸球菌Intestinalenterococci

一類革蘭氏陽(yáng)性球菌,兼性厭氧,無(wú)芽胞和莢膜,可分解膽汁七葉苷,是評(píng)估食品、水、

食品加工設(shè)備、食品生產(chǎn)環(huán)境等衛(wèi)生狀況的指標(biāo)菌之一。

3.18

有毒霍亂弧菌ToxicogenicVibriocholerae

革蘭氏陰性菌,菌體短小呈逗點(diǎn)狀,有單鞭毛、菌毛,部分有莢膜,共分為139個(gè)血清

群,其中O1群和O139群可引起霍亂。

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4船舶壓載水管理系統(tǒng)生物滅活性能檢測(cè)采樣規(guī)程

4.1取樣信息收集

樣品采集前應(yīng)與船方或壓載水設(shè)備生產(chǎn)商充分了解壓載水管理系統(tǒng)型號(hào)與安裝信息,如

設(shè)備主管道是否有專用取樣口,取樣口的位置、直徑大小及類型,設(shè)備操作限制參數(shù)等,相

關(guān)信息見(jiàn)附錄A-1/A-2/A-3。

4.2取樣方案制定

根據(jù)船舶和設(shè)備基本信息,制定測(cè)試方案,其內(nèi)容至少包括:檢測(cè)時(shí)間、登輪地點(diǎn)、試

航線路、試航時(shí)間、返回??康母劭凇y(cè)試艙位(標(biāo)明處理艙及對(duì)照艙)、壓載水處理設(shè)備

類型及安裝位置、檢測(cè)項(xiàng)目、取樣方式、檢測(cè)方法、計(jì)劃參與取樣和檢測(cè)的人員等,并填寫(xiě)

附錄A-1/A-2/A-3/A-4相關(guān)信息。

4.3取樣設(shè)備性能要求

4.3.1主要取樣器具組成

壓載水取樣設(shè)備應(yīng)包括管路連接單元、過(guò)濾與計(jì)量單元、樣品收集單元。

4.3.2主要取樣器具要求

取樣管路閥門(mén)建議使用隔膜閥,避免因調(diào)節(jié)流速而造成生物死亡,管路連接單元包含取

樣探頭與連接軟管;過(guò)濾與計(jì)量單元包含過(guò)濾裝置與流速流量監(jiān)控裝置,流量計(jì)需定期計(jì)量

和期間核查。

4.3.3濾網(wǎng)要求

取樣設(shè)備應(yīng)根據(jù)需要能對(duì)最小尺寸≥50μm存活生物(L型)樣品進(jìn)行收集,取樣設(shè)備

中所有接觸或接近壓載管路的部件應(yīng)具備防腐蝕性,過(guò)濾裝置濾網(wǎng)或?yàn)V膜孔徑對(duì)角線直徑應(yīng)

達(dá)到50μm,網(wǎng)孔孔徑需定期進(jìn)行計(jì)量和期間核查,每次取樣后濾網(wǎng)和管路需清洗干凈,

并進(jìn)行紫外滅菌20min。

4.4主要取樣耗材

4.4.1樣品袋:5L

4.4.2水樣瓶:1000mL

4.4.3無(wú)菌取水袋:500mL

4.4.4棕色玻璃瓶:250mL

4.4.5鹽度計(jì)精度1‰

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4.4.6溫度計(jì)精度0.1℃

4.4.7潛水泵

4.5登輪取樣前準(zhǔn)備工作

4.5.1應(yīng)與代理人員或船方人員或設(shè)備商調(diào)試工程師溝通,了解船舶運(yùn)行情況,壓載水壓載

與卸載情況,壓載水處理系統(tǒng)運(yùn)行情況,確保船上設(shè)備及安全防護(hù)措施運(yùn)作正常,按照要求

填寫(xiě)附錄A-1/A-2/A-3船舶信息,壓載水信息,壓載水設(shè)備信息。

4.5.2加強(qiáng)與碼頭經(jīng)營(yíng)部門(mén)的聯(lián)系,在作業(yè)現(xiàn)場(chǎng)發(fā)出安全指令后方可登輪進(jìn)入作業(yè)現(xiàn)場(chǎng)。

4.5.3取樣作業(yè)人數(shù)至少2人,取樣人員應(yīng)按照要求穿戴好防護(hù)裝備,穿戴整齊后方可進(jìn)入

作業(yè)現(xiàn)場(chǎng),如:安全繩、救生圈、防墜器、安全帽、護(hù)目鏡、勞保手套、聽(tīng)力護(hù)具、防護(hù)鞋、

登輪服。

4.5.4進(jìn)入特殊區(qū)域取樣時(shí),宜參考相關(guān)國(guó)際公約的要求。

4.6樣品采集

取樣人員在排放點(diǎn)附近的排放管上進(jìn)行壓載水取樣。遇不能從排放管取樣的情況下,可

采用通過(guò)測(cè)深管、人孔和排水口等方式進(jìn)行取樣。

4.6.1壓載水管理系統(tǒng)主管路取樣

4.6.1.1處理水取樣時(shí)需與船方或設(shè)備調(diào)試工程師確認(rèn)處理水艙位以及處理時(shí)間是否已經(jīng)

達(dá)到設(shè)備技術(shù)指標(biāo)要求,檢查設(shè)備處理日志,如壓載水管理系統(tǒng)出現(xiàn)常見(jiàn)錯(cuò)誤類別需進(jìn)行現(xiàn)

場(chǎng)應(yīng)急處理,類別及處理方式詳見(jiàn)附錄B;

4.6.1.2取樣人員需拍攝設(shè)備銘牌、流量計(jì)初始數(shù)值,階段性取樣體積以及取樣后總體積數(shù)

值以備電子存檔,或使用執(zhí)法記錄儀開(kāi)展取樣監(jiān)督工作;

4.6.1.3壓載水主管路取樣等動(dòng)力取樣要求

在壓載水完全發(fā)展成湍流的狀態(tài)下,在排放管內(nèi)取樣,壓載水管理系統(tǒng)主管路取樣示意

圖如圖3所示。

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圖3壓載水管理系統(tǒng)主管路取樣示意圖

取樣流速應(yīng)滿足國(guó)際海事組織MEPC,173(58)G2導(dǎo)則船舶壓載水取樣導(dǎo)則要求的等動(dòng)力

取樣,計(jì)算公式如下式所示,取樣平均流速不應(yīng)超過(guò)50L/min。

2

???

?????

Q為取樣流量,Q為壓載水主管?路排=放?流×量,D?為取樣管直徑,D為壓載水主管道排

isom?isom

放管直徑。因此,每次取樣時(shí),取樣工程師應(yīng)提前獲悉壓載水設(shè)備主管道直徑,經(jīng)過(guò)現(xiàn)場(chǎng)換

算,攜帶合適尺寸的取樣設(shè)備管路,并通過(guò)隔膜閥調(diào)整合適的取樣流速,以達(dá)到等動(dòng)力取樣

要求。

4.6.1.4壓載水處理系統(tǒng)主管道出水口附近搭建取樣設(shè)備,可根據(jù)不同尺寸壓載水處理系統(tǒng)

取樣口,采用不同規(guī)格墊片與法蘭連接排水口與取樣設(shè)備通水管路或采用同等方式連接設(shè)備

通水管路。

4.6.1.5啟動(dòng)船舶壓載水處理設(shè)備,檢查其運(yùn)行情況,通過(guò)取樣管路上隔膜閥將流量調(diào)節(jié)至

合適流速運(yùn)行3-5min,清洗排放管路。

4.6.1.6待流量計(jì)歸零后,拍照取證,打開(kāi)壓載水處理系統(tǒng)采樣口閥門(mén),正式取樣,在取樣

過(guò)程中,階段性從取樣管路中取具有代表性的≥10μm和<50μm(S型)生物樣品5-10L,

微生物樣品500mL,理化指標(biāo)樣品250mL,至少分3次取完S型生物樣品及微生物樣品。

4.6.1.7當(dāng)處理水取樣達(dá)到1000L后,關(guān)閉設(shè)備等動(dòng)力采樣口閥門(mén),并拍照流量計(jì)取證;

如處理水取不到1000L,則需在附錄A取樣表格中進(jìn)行情況說(shuō)明。

4.6.1.8環(huán)境水取樣可通過(guò)調(diào)換艙室在對(duì)照艙通過(guò)設(shè)備主管路排放口進(jìn)行取樣,需更換取樣

濾網(wǎng),如隨航取樣,則可通過(guò)舷邊使用隔膜泵進(jìn)行富集取樣。

4.6.1.9環(huán)境水取樣過(guò)程參考處理水,需更換濾網(wǎng),取樣體積達(dá)到100L后,關(guān)閉設(shè)備等動(dòng)

力采樣口閥門(mén),并拍照流量計(jì)取證。

4.6.2人孔取樣

4.6.2.1適用對(duì)象

(1)此方法適用于未安裝壓載水管理系統(tǒng)或系統(tǒng)出現(xiàn)故障,在壓載水頂邊艙和邊艙滿載

或較高水位時(shí)的樣品采集;

(2)壓載水艙人孔中取樣僅用于壓載水在艙內(nèi)或之前進(jìn)行了壓載水處理的情況;

(3)若壓載水處理中的任何過(guò)程是在壓載水排放期間進(jìn)行的,不應(yīng)在壓載水艙人孔中取

樣;

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(4)盡可能靠近排放管路的排放點(diǎn)進(jìn)行取樣。

4.6.2.2采集程序

(1)由船方人員負(fù)責(zé)確認(rèn)并打開(kāi)位于甲板上的人孔蓋;

(2)人孔附近搭建取樣裝備,使用潛水泵連接取樣裝備,潛水泵放入人孔后,泵的吸入

管應(yīng)降低到不同深度采集不同水深樣品,取樣流程參考4.6.1。

4.6.3測(cè)深孔/空氣管中取樣

4.6.3.1適用對(duì)象

(1)此方法適用于未安裝壓載水管理系統(tǒng)或系統(tǒng)出現(xiàn)故障,壓載水頂邊艙和邊艙樣品采

集,自測(cè)量管處采集方法也適用于壓載水底邊艙和底艙的樣品采集;

(2)確保壓載水在測(cè)深管/空氣管內(nèi)外充分混合;

(3)船舶記錄簿記錄置換了壓載水時(shí),應(yīng)謹(jǐn)慎使用測(cè)深管/空氣管取樣;

(4)非多孔測(cè)深管在置換過(guò)壓載水的情況下,管中的壓載水可能會(huì)沒(méi)有受到置換的影響,

導(dǎo)致無(wú)法滿足代表性取樣的要求。

4.6.3.2采集程序

(1)由船方人員打開(kāi)測(cè)量管/空氣管上蓋,用測(cè)量尺測(cè)定水深和水面高度;

(2)使用合適的潛水泵從測(cè)深空/空氣管中抽取壓載水樣品;如液面在操作部位以下10m

深及以下,不適合用負(fù)壓泵;

(3)測(cè)深孔/空氣管附近搭建取樣裝備,使用潛水泵連接取樣裝備,潛水泵放入人孔后,

泵的吸入管應(yīng)降低到不同深度采集不同水深樣品,取樣流程參考4.6.1。

4.6.4排水口取樣

4.6.4.1適用對(duì)象

此方法適用于壓載水頂邊艙有手動(dòng)排水口且便于采樣時(shí)的樣品采集,自測(cè)量管處采集方

法也適用于壓載水底邊艙和底艙的樣品采集。

4.6.4.2采集程序

(1)由船方人員打開(kāi)壓載水艙頂邊艙手動(dòng)排水閥門(mén),排水3-5min。

(2)用采樣桶自甲板上墜下或自岸上送至排水口處下方接水。

4.7樣品保存、運(yùn)送

4.7.1樣品封存

9

T/CI×××—2024

采集樣品直接注入樣品瓶,根據(jù)檢測(cè)項(xiàng)目需求進(jìn)行必要現(xiàn)場(chǎng)預(yù)處理,貼標(biāo)簽,封口,樣

品標(biāo)簽需包括:船舶名稱、IMO號(hào)、樣品類別、取樣方式、取樣日期、取樣體積、檢測(cè)項(xiàng)目

等要素。

4.7.2樣品現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)

現(xiàn)場(chǎng)可利用鹽度計(jì)、溫度計(jì)等指示性檢測(cè)設(shè)備對(duì)樣品的溫度、鹽度進(jìn)行檢測(cè),相關(guān)結(jié)果

填入附錄A-5。

4.7.3樣品運(yùn)輸

將樣品封存放入取樣包中,并由取樣人員快遞或?qū)\囉?4h內(nèi)低溫(4℃±2℃)送達(dá)

實(shí)驗(yàn)室開(kāi)展檢測(cè),除有毒霍亂弧菌與理化樣品以外,其他樣品需存放在保溫箱或車載冰箱中。

5L型和S型存活生物指示性檢測(cè)規(guī)程

5.1檢測(cè)方法

指示性方法可選擇附錄C中的方法或根據(jù)實(shí)際的需要選擇其他合適的方法。

5.2指示性檢測(cè)設(shè)備要求

指示性檢測(cè)設(shè)備宜具備出廠檢測(cè)報(bào)告,設(shè)備使用說(shuō)明書(shū),設(shè)備精度與誤差分析報(bào)告,歷

史檢測(cè)數(shù)據(jù)報(bào)告,詳細(xì)檢測(cè)數(shù)據(jù)偏離分析報(bào)告,第三方產(chǎn)品檢測(cè)報(bào)告。

5.3S型存活生物指示性檢測(cè)

5.3.1PAM分析法

基于PAM分析方法,對(duì)壓載水中≥10μm且<50μm(S型)浮游植物進(jìn)行指示性檢測(cè)

分析,至少檢測(cè)3次及以上,檢測(cè)設(shè)備或推薦方法參見(jiàn)附錄C。

5.3.2活性熒光檢測(cè)法

基于活性熒光檢測(cè)法,對(duì)壓載水中≥10μm且<50μm(S型)浮游植物進(jìn)行指示性檢

測(cè)分析,至少檢測(cè)3次及以上,檢測(cè)設(shè)備或推薦方法參見(jiàn)附錄C。

5.4L型和S型存活生物指示性檢測(cè)

5.4.1ATP分析法

基于ATP分析方法,對(duì)壓載水中L型和S型存活生物進(jìn)行指示性檢測(cè)分析,L型生物檢

測(cè)量不少于500mL,S型生物檢測(cè)量不少于200mL,至少檢測(cè)3次及以上,方法標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)

附錄C。

5.4.2MFA分析法

10

T/CI×××—2024

基于MFA分析方法,對(duì)壓載水中L型和S型存活生物進(jìn)行指示性檢測(cè)分析,L型生物檢

測(cè)量不少于600mL,S型生物檢測(cè)量不少于200mL,檢測(cè)1次,方法標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄C。

5.5指示性檢測(cè)結(jié)果判定

《國(guó)際船舶壓載水與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

5.5.1PAM分析法

基于PAM分析法對(duì)S型生物的檢測(cè),結(jié)果為PASS或者FAIL,檢測(cè)3次,以2次同樣結(jié)

果為最終記錄,如2次及以上為PASS,則判定S型生物符合《國(guó)際船舶壓載水與沉積物控

制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn),如2次及以上為FAIL,需開(kāi)展顯微鏡詳細(xì)檢測(cè),如果詳細(xì)檢測(cè)依

然超標(biāo),則判定S型生物不符合《國(guó)際船舶壓載水與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn),D-2

排放標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

5.5.2活性熒光檢測(cè)法

基于活性熒光檢測(cè)法對(duì)S型生物的檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果為RiskFail或者RiskHigh或者

RiskLow,檢測(cè)3次,以2次同樣結(jié)果為最終記錄,如2次及以上為RiskFail或者RiskHigh,

需開(kāi)展顯微鏡詳細(xì)檢測(cè),如果詳細(xì)檢測(cè)依然超標(biāo),則判定S型生物不符合《國(guó)際船舶壓載水

與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn),D-2排放標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

5.5.3ATP分析法

基于ATP分析法,對(duì)壓載水中L型和S型存活生物進(jìn)行指示性檢測(cè)分析,檢測(cè)結(jié)果為

MostLikelyCompliant或者SignalClosetoLimit或者M(jìn)ostLikelynotCompliant,

樣品檢測(cè)3次,以3次平均結(jié)果為最終記錄,如結(jié)果為SignalClosetoLimit或者M(jìn)ost

LikelynotCompliant,則需開(kāi)展顯微鏡詳細(xì)檢測(cè),如果詳細(xì)檢測(cè)依然超標(biāo),則判定L型和

S型存活生物不符合《國(guó)際船舶壓載水與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn);如3次平均結(jié)

果為MostLikelyCompliant,則判定L型和S型存活生物符合《國(guó)際船舶壓載水與沉積物

控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn),排放標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

5.5.4MFA分析法

基于MFA分析法對(duì)壓載水中L型和S型存活生物進(jìn)行指示性檢測(cè)分析,檢測(cè)結(jié)果為Very

LowRisk或者LowRisk或者HighRisk,檢測(cè)1次,LowRisk或者HighRisk,則需開(kāi)展

顯微鏡詳細(xì)檢測(cè),如果詳細(xì)檢測(cè)依然超標(biāo),則判定L型和S型存活生物不符合《國(guó)際船舶壓

載水與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn);如檢測(cè)過(guò)VeryLowRisk,則判定L型和S型存

活生物符合《壓載水公約》D-2標(biāo)準(zhǔn),排放標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

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T/CI×××—2024

5.5.5復(fù)驗(yàn)

因船舶壓載水中存活生物可能隨著時(shí)間的推移進(jìn)行不斷繁殖、再生或死亡,因此其數(shù)量

一直是動(dòng)態(tài)變化的,壓載水樣品不接受復(fù)驗(yàn)。

5.6結(jié)果記錄

原始檢測(cè)記錄應(yīng)包括樣品編號(hào)、樣品名稱、檢測(cè)日期和時(shí)間、檢測(cè)方法、儀器設(shè)備、檢

測(cè)結(jié)果、檢測(cè)人、復(fù)核日期、復(fù)核人等內(nèi)容,指示性檢測(cè)結(jié)果均需保留電子圖片存檔,以備

復(fù)查溯源。

5.7質(zhì)量控制

定期每季度進(jìn)行陽(yáng)性及陰性對(duì)照試驗(yàn)。將培養(yǎng)的浮游生物制成100-200cells/mL的懸

浮液,鏡檢后對(duì)指示性檢測(cè)設(shè)備按照操作程序進(jìn)行陽(yáng)性試驗(yàn)。陰性對(duì)照則使用純凈水進(jìn)行,

如陰性對(duì)照或陽(yáng)性對(duì)照試驗(yàn)結(jié)果不符合要求,則應(yīng)查明原因后重新調(diào)試設(shè)備。6L型與S型

存活生物顯微鏡詳細(xì)檢測(cè)規(guī)程

6L型存活生物詳細(xì)檢測(cè)規(guī)程

6.1檢測(cè)原理

直接觀察法:通過(guò)顯微鏡觀察L型生物,當(dāng)生物體的某部分被嚴(yán)重破壞時(shí),該生物體被

判定為不可存活;對(duì)于形態(tài)完整但是不動(dòng)的浮游動(dòng)物,可以觀察器官活動(dòng)(如心跳)判斷其

存活/死亡;如不能觀察器官活動(dòng),則可用解剖針輕輕戳動(dòng),看其是否有反應(yīng),如無(wú)反應(yīng)則

判斷為死亡,記錄活體數(shù)量的方法。

差減法:通過(guò)顯微鏡觀察L型生物,當(dāng)生物體的某部分被嚴(yán)重破壞時(shí),該生物體被判定

為不可存活;對(duì)于形態(tài)完整但是不動(dòng)的浮游動(dòng)物,可以觀察器官活動(dòng)(如心跳)判斷其存活

/死亡;如不能觀察器官活動(dòng),則可用解剖針輕輕戳動(dòng),看其是否有反應(yīng),如無(wú)反應(yīng)則判斷

為死亡。差減法為先計(jì)數(shù)死亡個(gè)體,再使用滴管加幾滴魯哥氏試劑到計(jì)數(shù)框內(nèi),將樣品固定,

再計(jì)數(shù)全體死亡個(gè)體數(shù),兩個(gè)計(jì)數(shù)相減的數(shù)量為活體數(shù)量的個(gè)數(shù)。

6.1.1主要設(shè)備、器具

(1)倒置顯微鏡或體視顯微鏡(物鏡4×、10×、20×、40×;目鏡1×)

(2)浮游動(dòng)物計(jì)數(shù)框(80mm×100mm,22mL)

(3)計(jì)數(shù)器

(4)電動(dòng)加樣管:量程20mL

(5)燒杯

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6.1.2主要試劑及其配置

6.1.2.1試劑

碘化鉀(KI,分析純),碘(I2,分析純)

6.1.2.2配置

魯哥氏試劑:6g碘化鉀(KI)溶于少量水中(10mL-20mL),待其完全溶解后,加

入4g碘(I2)充分搖動(dòng),待碘完全溶解后定容到100mL。

6.1.3L型存活生物活體計(jì)數(shù)

6.1.3.1準(zhǔn)備工作

L型存活生物樣品送達(dá)實(shí)驗(yàn)室后,用量筒計(jì)量樣品瓶中壓載水濃縮后的體積(V1),每

次取20mL樣品作為一個(gè)子樣品,根據(jù)表1數(shù)量水平選擇不同的檢測(cè)方法,根據(jù)樣品應(yīng)在取

樣后24h內(nèi)開(kāi)展檢測(cè)工作。

6.1.3.2樣品初篩

可先觀察一個(gè)浮游生物計(jì)數(shù)框的活體生物數(shù)量,預(yù)估L型活體生物的數(shù)量,如活體生物

個(gè)體低于2個(gè)則為低數(shù)量水平,2-20個(gè)為中數(shù)量水平,超過(guò)20個(gè)則為高數(shù)量水平,低數(shù)量

水平推薦計(jì)數(shù)片數(shù)為10片,中數(shù)量水平為5片,高數(shù)量水平則為3片,如表1所示:

表1L型存活生物推薦計(jì)數(shù)片數(shù)及方法

水平推薦計(jì)數(shù)片數(shù)推薦計(jì)數(shù)方法

高數(shù)量水平(>100inds./m3)3片差減法/直接觀察法

中數(shù)量水平(10inds./m3-100inds./m3)5片差減法/直接觀察法

低數(shù)量水平(<10inds./m3)10片差減法/直接觀察法

6.1.3.3樣品檢測(cè)

(1)直接觀察法

A.將瓶中樣品輕輕上下顛倒若干次搖勻;

B.迅速用電動(dòng)定量加樣管取20mL樣品注入浮游動(dòng)物計(jì)數(shù)框內(nèi),在倒置或體視顯微鏡

下計(jì)數(shù)存活的數(shù)量(nL1),檢測(cè)浮游動(dòng)物計(jì)數(shù)框移動(dòng)方式如圖4所示;

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圖4浮游動(dòng)物計(jì)數(shù)框在顯微鏡視野下的移動(dòng)方式示意圖

C.當(dāng)生物體的某部分被嚴(yán)重破壞時(shí),該生物體被判定為不存活;對(duì)于形態(tài)完整但是不

動(dòng)的浮游動(dòng)物,可以觀察器官活動(dòng)(如心跳)判斷其存活/死亡;如不能觀察器官活動(dòng),則

可用解剖針輕輕戳動(dòng),看其是否有反應(yīng),如無(wú)反應(yīng)則判斷為死亡;

D.每個(gè)樣品平均單片存活生物個(gè)體數(shù)按如下計(jì)算公式來(lái)計(jì)算。

計(jì)算公式:?jiǎn)纹婊钌飩€(gè)數(shù)平均數(shù)為NL=(NL1+NL2+NL3+....NLm)/m;

NL為平均單片L型存活生物個(gè)體數(shù),單位為inds./片;NL1,NL2,NL3,NLm為第1片,第2

片,第3片,....第m片上L型存活生物個(gè)體數(shù),單位為inds.;m為計(jì)數(shù)片數(shù);單片體積

數(shù)為20mL。

(2)差減法

A.將瓶中樣品輕輕上下顛倒若干次搖勻;

B.用電動(dòng)加樣管取20mL瓶中樣品注入浮游動(dòng)物計(jì)數(shù)框內(nèi),在倒置或體視顯微鏡下計(jì)

數(shù)已死亡的L型生物(Nd(Dead)),檢測(cè)存活生物框轉(zhuǎn)動(dòng)如圖4所示;

C.當(dāng)生物體的某部分被嚴(yán)重破壞時(shí),該生物體被判定為不存活;對(duì)于形態(tài)完整但是不

動(dòng)的浮游動(dòng)物,可以觀察器官活動(dòng)(如有心跳)判斷存活;如不能觀察器官活動(dòng),則可用浮

游動(dòng)物解剖針輕輕戳動(dòng),看其是否有反應(yīng),如無(wú)反應(yīng)則判斷為死亡;

D.先計(jì)數(shù)死亡個(gè)體Nd,再使用滴管加幾滴魯哥氏試劑到計(jì)數(shù)框內(nèi),將樣品固定,再按

照如下計(jì)算公式,計(jì)數(shù)全體Nt(Total)個(gè)體數(shù);

計(jì)算公式:?jiǎn)纹婊钌飩€(gè)體數(shù)NL=Nt(Total)-Nd(Dead);

單片存活生物平均個(gè)數(shù)NL,參考計(jì)算公式2:

單片存活生物個(gè)數(shù)平均數(shù)為NL=(NL1+NL2+NL3+....NLm)/m;

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NL為平均單片L型存活生物個(gè)體數(shù),單位為inds./片;NL1,NL2,NL3,NLm為第1片,第2

片,第3片,....第m片上L型存活生物個(gè)體數(shù),單位為inds.;m為計(jì)數(shù)片數(shù);單片體積

數(shù)為20mL。

注:第三片計(jì)算結(jié)果和前兩片的平均數(shù)之差如不大于其均數(shù)的±20%,其均數(shù)視為有效

結(jié)果,否則必須再測(cè)一片,直至三片數(shù)值與前兩片平均數(shù)之差不超過(guò)平均數(shù)的20%為止,即

可視為有效平均計(jì)數(shù)結(jié)果。

6.1.3.4計(jì)算

3

每m壓載水樣品中L型存活生物個(gè)體數(shù)量DL可參考如下公式計(jì)算:

計(jì)算公式:

DL(inds./m3)=(NL×V1)/(V2×V3)

式中:NL為每個(gè)樣品平均單片存活生物個(gè)體數(shù)(inds./片);V1為濃縮樣體積(mL);

3

V2為計(jì)數(shù)體積(20mL);V3為采樣量(m)。

6.2S型存活生物詳細(xì)檢測(cè)規(guī)程

6.2.1檢測(cè)原理

雙熒光染色法(CMFDA/FDA),其中FDA是熒光素二乙酸酯,英文全稱是Fluorescein

Diacetate,CMFDA是5-氯甲酸熒光素酯是FDA的氯甲基衍生物,英文全稱

5-chloromethy-lfluoresceindiacetate,這兩種是可自由透過(guò)活細(xì)胞膜對(duì)細(xì)胞進(jìn)行示蹤

的熒光染料。具細(xì)胞膜滲透性,無(wú)色,不具有熒光發(fā)光性。當(dāng)通過(guò)被動(dòng)運(yùn)輸穿透細(xì)胞膜進(jìn)入

活細(xì)胞后,CMFDA中的親脂性基團(tuán)可被胞漿內(nèi)非特異性酯酶水解,生成5-氯甲基熒光素

(5-chloromethylfluorescein);5-氯甲基熒光素可發(fā)出綠色熒光,因帶電荷而不能自由

穿透細(xì)胞膜,并利用自身氯甲基與細(xì)胞內(nèi)蛋白和多肽中的谷胱甘肽在谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶作

用下生成加合物,能完好地保留在胞內(nèi)。經(jīng)CMFDA/FDA標(biāo)記的細(xì)胞,在465nm-495nm波段

下可激發(fā)穩(wěn)定的熒光,穩(wěn)定標(biāo)記的時(shí)間可達(dá)數(shù)天(至少3d),可用于S型細(xì)胞的活體計(jì)數(shù)。

6.2.2主要設(shè)備、器具

(1)正置或倒置熒光顯微鏡(可激發(fā)465nm-495nm波段)

(2)浮游植物計(jì)數(shù)框(50mm×20mm×1mm,1mL)

(3)計(jì)數(shù)器

(4)移液槍:量程1mL,10μL

(5)燒杯:500mL

15

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(6)離心管:1.5mL

6.2.3主要試劑及其配置

6.2.3.1試劑

熒光素二乙酸酯(FDA),5-氯甲酸熒光素酯(CMFDA),二甲基亞砜(DMSO)

6.2.3.2CMFDA的配制

(1)將50μg的CMFDA,加入430μL的二甲基亞砜(DMSO)并渦旋混勻,配制成

濃度為250μM的CMFDA存儲(chǔ)液,避光;

(2)通過(guò)移液槍,將存儲(chǔ)液等分成100μL每份,保存在1.5mL的離心管中;

(3)每管貼上標(biāo)簽,注明復(fù)溶日期和濃度,-20℃,避光保存;

(4)每次用完后仍需重新-20℃,避光保存。

6.2.3.3FDA的配制

(1)取100mg的FDA溶于4.8mL的DMSO中,配制成濃度為50mM的FDA準(zhǔn)備液;

(2)取10μL的50mMFDA準(zhǔn)備液,溶于990μL的二甲基亞砜DMSO中,制成濃

度為500μM的FDA儲(chǔ)存液;

(3)通過(guò)移液槍,將存儲(chǔ)液等分成100μL每份,保存在1.5mL的離心管中;每管

貼上標(biāo)簽,注明復(fù)溶日期和濃度,-20℃避光保存。

(4)每次用完后仍需重新保存在-20℃避光保存。

6.2.4S型存活生物計(jì)數(shù)

6.2.4.1準(zhǔn)備工作

S型存活生物樣品送達(dá)實(shí)驗(yàn)室后,采用CMFDA和FDA雙熒光染料進(jìn)行染色,并使用1mL

浮游植物計(jì)數(shù)框在熒光顯微鏡激發(fā)光465-495nm下進(jìn)行染色細(xì)胞計(jì)數(shù),樣品應(yīng)在取樣后24

h內(nèi)開(kāi)展檢測(cè)工作。

預(yù)估樣品密度水平,選擇生物分布較為平均的視野進(jìn)行計(jì)數(shù),視野中計(jì)數(shù)10個(gè)格子,

如活體細(xì)胞總數(shù)小于10,則為低密度水平;如計(jì)數(shù)10-100個(gè)活體細(xì)胞總數(shù),則為中密度水

平,大于100個(gè)活體細(xì)胞的為高密度水平,參考表2開(kāi)展推薦計(jì)數(shù)條數(shù)計(jì)算。

表2S型存活生物推薦浮游植物框計(jì)數(shù)方法

S型存活樣品預(yù)估密度水平推薦計(jì)數(shù)條數(shù)

高密度水平(>103cells/mL)3條法計(jì)數(shù)(2、5、8條)

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中密度水平(102cells/mL-103cells/mL)5條法計(jì)數(shù)(2、4、6、8、10條)

低密度水平(<102cells/mL)全片計(jì)數(shù)

6.2.4.2檢測(cè)

(1)將水袋中S型生物樣品輕輕顛倒,再倒入500mL燒杯中,用1000μL移液槍吸取

S型尺寸樣品980μL于1.5mLEP管中,分別再加入10μL的500μM的FDA工作液和

10μL250μM的CMFDA工作液,使FDA的終濃度為5μM,CMFDA的終濃度為2.5μM,

避光染色10min;

(2)將染色后樣品輕輕搖勻,用移液槍將樣品加入1mL計(jì)數(shù)框內(nèi),在激發(fā)波長(zhǎng)為465

nm-495nm的熒光顯微鏡下,4倍或10倍物鏡下分別計(jì)數(shù)被FDA和CMFDA著色的S型尺寸活

體細(xì)胞數(shù),被染色的生物體、運(yùn)動(dòng)的生物體或被染色同時(shí)運(yùn)動(dòng)的生物體都被視為存活生物,

并用顯微鏡軟件測(cè)量存活生物細(xì)胞的最小尺寸,如圖5所示;

圖5雙熒光染色后顯微鏡視野下活體細(xì)胞示例圖

(3)染色后樣品應(yīng)在20min內(nèi)檢測(cè)完畢,以防熒光信號(hào)減弱;參考HJ1215水質(zhì)浮游

植物的測(cè)定濾膜顯微鏡計(jì)數(shù)法,檢測(cè)時(shí)注意視野范圍內(nèi)細(xì)胞參照?qǐng)D5Whipple視野計(jì)數(shù)約定

規(guī)則,即:視野中處于下邊界及右邊界線的細(xì)胞計(jì)入總數(shù),處于上邊界及左邊界線的細(xì)胞不

計(jì)入總數(shù),如圖6所示。若出現(xiàn)絲狀體等較大個(gè)體顯著穿過(guò)兩個(gè)或多個(gè)格子的邊界時(shí),應(yīng)在

低倍鏡下單獨(dú)計(jì)數(shù),再計(jì)入總數(shù);

圖6Whipple視野計(jì)數(shù)約定規(guī)則示意圖

17

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(4)若單個(gè)視野中生物體過(guò)多,參考表2計(jì)數(shù)方法,可采用長(zhǎng)條計(jì)數(shù)法,選取兩相鄰刻

度從計(jì)數(shù)框左邊一直計(jì)數(shù)到計(jì)數(shù)框右邊稱為一個(gè)長(zhǎng)條。如樣品細(xì)胞數(shù)為高密度水平,則計(jì)數(shù)

3條,即第2、5、8條,單片細(xì)胞密度為3條計(jì)數(shù)數(shù)量除以計(jì)數(shù)條數(shù);若樣品細(xì)胞數(shù)為中密

度水平,則計(jì)數(shù)五條,即第2、4、6、8、10,單片細(xì)胞密度為5條計(jì)數(shù)數(shù)量除以計(jì)數(shù)條數(shù);

若生物體密度為低密度水平,則應(yīng)全片計(jì)數(shù),破損細(xì)胞不計(jì)數(shù)。計(jì)數(shù)時(shí)宜緩慢移動(dòng)顯微鏡載

物臺(tái),如圖7所示,一般檢測(cè)片數(shù)為3片。

圖7顯微鏡視野在浮游植物框下移動(dòng)示意圖

(5)對(duì)于S型存活生物每mL細(xì)胞密度DS,參考如下計(jì)算公式:

計(jì)算公式:DS=(NS1+NS2+NS3)/3

式中:NS1為第1片計(jì)數(shù)細(xì)胞密度(cells/mL);NS2為第2片計(jì)數(shù)細(xì)胞密度(cells/mL);

NS3為第3片計(jì)數(shù)細(xì)胞密度(cells/mL)。

注:第三片計(jì)算結(jié)果和前兩片的平均數(shù)之差如不大于其均數(shù)的±20%,其均數(shù)視為有效

結(jié)果,否則必須再測(cè)一片,直至三片數(shù)值與前兩片平均數(shù)之差不超過(guò)均數(shù)的20%為止,即可

視為有效平均計(jì)數(shù)結(jié)果。

6.3原始記錄

原始檢測(cè)記錄應(yīng)包括樣品編號(hào)、樣品名稱、檢測(cè)日期和時(shí)間、檢測(cè)方法、儀器設(shè)備、檢

測(cè)結(jié)果、檢測(cè)人、復(fù)核日期、復(fù)核人等內(nèi)容,如樣品檢測(cè)不合格,則需對(duì)存活生物保存至少

10張帶標(biāo)尺圖片,保存的照片應(yīng)帶有系統(tǒng)自帶的標(biāo)尺和日期,以供溯源。

6.4結(jié)果報(bào)告

數(shù)量/細(xì)胞計(jì)數(shù)≤10個(gè)時(shí),以實(shí)際數(shù)量報(bào)告;數(shù)量/細(xì)胞計(jì)數(shù)>10個(gè)且≤100個(gè)時(shí),以

整數(shù)報(bào)告;如>于100個(gè)時(shí),將第3位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,取前2位數(shù)字,

后面用0代替位數(shù),也可用10的指數(shù)形式來(lái)表示,按“四舍五入”原則修約后,采用兩位

有效數(shù)字。

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6.5結(jié)果判定

6.5.1最小尺寸≥50μm(L型)存活生物結(jié)果不符合附錄ED-2排放標(biāo)準(zhǔn),則判定該壓載

水不合格,按照相應(yīng)法律、法規(guī)、部門(mén)規(guī)章等進(jìn)行處置。

6.5.2最小尺寸<50μm且≥10μm(S型)存活生物結(jié)果不符合附錄ED-2排放標(biāo)準(zhǔn),則

判定為該壓載水不合格,按照相應(yīng)法律、法規(guī)、部門(mén)規(guī)章等進(jìn)行處置。

6.5.3《國(guó)際船舶壓載水與沉積物控制與管理公約》D-2標(biāo)準(zhǔn)參見(jiàn)附錄E。

6.6復(fù)驗(yàn)

因存活生物樣品24h內(nèi)檢驗(yàn)完畢,因此當(dāng)實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)結(jié)果中的某一項(xiàng)檢驗(yàn)結(jié)果不符合

檢驗(yàn)依據(jù)的要求時(shí),樣品不接受復(fù)驗(yàn)。

7菌落總數(shù)檢測(cè)規(guī)程

7.1檢驗(yàn)原理

將待測(cè)樣品原液或經(jīng)適當(dāng)稀釋之后,其中的微生物充分分散成單個(gè)細(xì)胞,取一定量的稀

釋樣液涂布到平板上,經(jīng)過(guò)指定的溫度和時(shí)間培養(yǎng),由每個(gè)單細(xì)胞生長(zhǎng)繁殖而形成肉眼可見(jiàn)

的菌落,即一個(gè)單菌落應(yīng)代表原樣品中的一個(gè)單細(xì)胞;統(tǒng)計(jì)菌落數(shù),根據(jù)其稀釋倍數(shù)和取樣

接種量即可換算出樣品中的菌落總數(shù)。

7.2設(shè)備和材料

電子天平、抽濾裝置、0.45μm無(wú)菌濾膜、鑷子、量筒、恒溫培養(yǎng)箱、接種針、接種

環(huán)、酒精燈、培養(yǎng)皿等。

7.3培養(yǎng)基和試劑

7.3.1營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(g/L)

組分質(zhì)量

蛋白胨10.0g

牛肉膏3.0g

氯化鈉5.0g

瓊脂15.0-20.0g

將上述成分或商品化粉末,用1000mL去離子蒸餾水重懸,攪拌均勻,經(jīng)121℃高壓蒸

汽滅菌20min,冷卻至45-50°C倒入無(wú)菌培養(yǎng)皿中。培養(yǎng)基最終pH值應(yīng)為7.2±0.2,在

4℃避光條件下保存,兩周有效。

7.3.2無(wú)菌水:取適量實(shí)驗(yàn)用水,經(jīng)121℃高壓蒸汽滅菌20min,備用。

7.3.310%Na2S2O3:稱取15.7g硫代硫酸鈉,定容100mL水中,滅菌。

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7.4檢驗(yàn)程序

7.4.1水樣前處理

若電解原理的壓載水處理設(shè)備產(chǎn)生的樣品,則水樣含有活性氯成分,需在收到樣品后根

據(jù)樣品體積加入10%濃度Na2S2O3溶液,以除去活性氯對(duì)細(xì)菌的抑制作用(每125mL容積加

入0.1mL的Na2S2O3溶液,若500mL水樣則加入0.4mL的Na2S2O3溶液),在24h以內(nèi)處

理采集樣品。

7.4.2梯度稀釋

使用無(wú)菌容器進(jìn)行稀釋,設(shè)置2-3個(gè)梯度,每個(gè)梯度2-3個(gè)平行。根據(jù)不同類別水樣壓

載地點(diǎn),樣品稀釋度可以參考表3,梯度稀釋可使用50mL原液加入450mL無(wú)菌水中。

表3樣品稀釋度參考表

樣品類型樣品狀態(tài)110-110-210-3

處理前▲▲▲

公海水

處理后▲▲▲

處理前▲▲▲

港口水

處理后▲▲▲

7.4.3接種

以無(wú)菌操作方式用1mL滅菌移液槍吸取充分混勻的樣品或稀釋樣品1mL,注入滅菌平

皿中,傾注15-20mL冷卻到44-47℃的營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基,并立即旋搖平皿,使樣品或稀釋

樣品與培養(yǎng)基充分混勻,每個(gè)樣品或稀釋樣品傾注2個(gè)平皿。

7.4.4培養(yǎng)

待平皿內(nèi)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基冷卻凝固后,翻轉(zhuǎn)平皿,使底面向上(避免因表面水分凝結(jié)

而影響細(xì)菌均勻生長(zhǎng)),其中一組在36℃±2℃條件下,恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)44±4h,另一

組是22℃±2℃培養(yǎng)68±4h后觀察結(jié)果。

7.4.5空白對(duì)照

用無(wú)菌水做實(shí)驗(yàn)室空白測(cè)定,培養(yǎng)后平皿上不得有菌落生長(zhǎng),否則,該次樣品測(cè)定結(jié)果

無(wú)效,應(yīng)查明原因后重新測(cè)定。

7.5計(jì)數(shù)

7.5.1計(jì)數(shù)規(guī)則

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作平皿菌落計(jì)數(shù)時(shí),可用眼睛直接觀察,必要時(shí)使用放大鏡檢查,以防遺漏。在記下各

平皿的菌落數(shù)后,應(yīng)求出不同稀釋度的平均菌落數(shù),供下一步計(jì)算時(shí)應(yīng)用。平皿上有較大片

狀菌落超過(guò)平皿一半時(shí),該平皿不參加計(jì)數(shù)。片狀菌落不到平皿的一半,而其余一半菌落分

布又很均勻時(shí),將此分布均勻的菌落計(jì)數(shù)。

片狀菌落不到平皿的一半,而其余一半菌落分布又很均勻時(shí),將此分布均勻的菌落計(jì)數(shù),

并乘以2代表全皿菌落總數(shù)。

外觀(形態(tài)或顏色)相似,距離相近卻不相觸的菌落,只要它們之間的距離不小于最小

菌落的直徑,予以計(jì)數(shù)。緊密接觸而外觀相異的菌落,予以計(jì)數(shù)。

若未能及時(shí)觀察,可5±3℃溫度保存,48h內(nèi)計(jì)數(shù)。

7.5.2不同稀釋度的選擇及報(bào)告方式

(1)首先選擇平均菌落數(shù)在30-399之間者進(jìn)行計(jì)算,若只有一個(gè)稀釋度的平均菌落數(shù)符

合此范圍時(shí),則將該菌落乘以稀釋倍數(shù)報(bào)告之(見(jiàn)表4中實(shí)例1)。

(2)若有兩個(gè)稀釋度,其生長(zhǎng)的菌落數(shù)均在30-300之間,則視二者之比值來(lái)決定,若其

比值小于2應(yīng)報(bào)告兩者的平均數(shù)(如表4中實(shí)例2)。若大于2則報(bào)告其中稀釋度較小的菌

落總數(shù)(如表4中實(shí)例3)。若等于2亦報(bào)告其中稀釋度較小的菌落數(shù)(見(jiàn)表4中實(shí)例4)。

(3)若所有稀釋度的平均菌落數(shù)均大于300,則應(yīng)以按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀

釋倍數(shù)報(bào)告之(見(jiàn)表4中實(shí)例5)。

(4)若所有稀釋度的平均菌落數(shù)均小于30,則應(yīng)以按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀釋

倍數(shù)報(bào)告之(見(jiàn)表4中實(shí)例6)。

(5)若所有稀釋度的平均菌落數(shù)均不在30-300之間,則應(yīng)以最接近30或300的平均菌

落乘以稀釋倍數(shù)報(bào)告之(見(jiàn)表4中實(shí)例7)。

(6)若所有稀釋度的平板上均無(wú)菌落生長(zhǎng),則以未檢出報(bào)告之。

(7)如果所有平板上都有菌落密布,不要用“多不可計(jì)”報(bào)告,而應(yīng)在稀釋度最大的平

板上,任意數(shù)其中2個(gè)平板1cm2中的菌落數(shù),除2求出每cm2內(nèi)平均菌落數(shù),乘以皿底面

積63.6cm2,再乘以其稀釋倍數(shù)作報(bào)告。

(8)菌落計(jì)數(shù)的報(bào)告菌落數(shù)在100以內(nèi)時(shí)按實(shí)有數(shù)報(bào)告,大于100時(shí),采用兩位有效數(shù)

字,在兩位有效數(shù)字后面的數(shù)值,以四舍五入方法計(jì)算,為了縮短數(shù)字后面的零數(shù)也可用

10的指數(shù)來(lái)表示(見(jiàn)表4報(bào)告方式欄)。

表4稀釋度選擇及菌落總數(shù)報(bào)告方式

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實(shí)不同稀釋度的平均菌落數(shù)兩個(gè)稀釋度菌落總數(shù)/報(bào)告方式(CFU/mL)

例10-110-210-3菌落數(shù)之比(CFU/mL)

1136516420——1640016000或1.6×104

22760295461.63775038000或3.8×104

32890271602.22710027000或2.7×104

4150308215001500或1.5×103

5多不可計(jì)1650513——5130051000或5.1×104

627115——270270或2.7×102

7多不可計(jì)305123020031000或3.1×104

8耐熱大腸桿菌檢測(cè)規(guī)程

8.1檢測(cè)原理

耐熱大腸桿菌Thermotolerantcoliforms又稱糞大腸菌群(FecalColiforms),44.5℃

培養(yǎng)24h,能在mTEC擇性培養(yǎng)基上生長(zhǎng),并形成黃色菌落的腸桿菌科細(xì)菌。

8.2設(shè)備和耗材

電子天平、抽濾裝置、0.45μm無(wú)菌濾膜、鑷子、量筒、恒溫培養(yǎng)箱、接種針、接種

環(huán)、酒精燈等。

8.3培養(yǎng)基和試劑配置

(1)mTEC培養(yǎng)基(g/L)

組分含量

乳糖10.0g

氯化鈉7.5g

月示蛋白胨5.0g

磷酸氫二鉀3.3g

酵母提取物3.0g

X-Gluc0.5g

SDS0.2g

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脫氧膽酸鈉0.1g

瓊脂15.0g

將上述成分或商業(yè)化產(chǎn)品粉末稱取

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