SDS-PAGE電泳試驗步驟

1、垂直板聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質(zhì)一.實驗目的學習SDS-聚丙烯跌胺凝膠電泳法(SDS-PAGE)測定蛋白質(zhì)的分子量的原理和基本操作技術。二、 實驗原理蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì)，在一定的PH條件下解離而帶電荷。當溶液的pH大于蛋白質(zhì)的等電點(pl)時，蛋白 質(zhì)本身帶負電，在電場中將向正極移動；當溶液的pH小于蛋白質(zhì)的等電點吋，蛋白質(zhì)帶正電，在電場中將向負 極移動；蛋白質(zhì)在特定電場中移動 的速度取決于其本身所帶的凈電荷的多少蛋白質(zhì)顆粒的大小和分子形狀、電 場強度等。聚丙烯酰胺礙膠是由一定量的丙烯酰胺和雙丙烯酰胺聚合而成的三維網(wǎng)狀孔結構。本實驗釆用不連續(xù)凝膠 系統(tǒng)，調(diào)整雙丙烯酰胺用量的多少，可制成不同孔

2、徑的兩層凝膠；這樣，當含有不同分子量的蛋白質(zhì)溶液通過這 兩層凝膠時，受阻滯的程度不同而表現(xiàn)出不同的遷移率。由于上層膠的孔徑較大，不同大小的蛋白質(zhì)分子在通 過大孔膠時，受到的阻滯基本相同，因此以相同的速率移動；當進入小孔膠時，分子董大的蛋白質(zhì)移動速度減慢， 因而在兩層凝膠的界面處，樣品被壓縮成很窄的區(qū)帶。這就是常說的濃縮效應和分子篩效應。同時，在制備上層 膠(濃縮膠)和下層膠(分離膠)時，釆用兩種緩沖體系；上層膠PH二一，下層膠pH=； Tris-HCI緩沖液中的Tris用于維持溶液的電中性及pH,是緩沖配對離子：CI-是前導離子。在時，緩沖液中的Gly為尾隨離子，而在卩日二 吋，Gly的解離度

3、增加：這樣濃縮膠和分離 膠之間PH的不連續(xù)性，控制了慢離子的解離度，進而達到控制其有 效遷移率之目的。不同蛋白質(zhì)具有不同的等電點，在進入分離膠后，各種蛋白質(zhì)由于所帶的靜電荷不 同，而有 不同的遷移率。由于在聚丙烯酰胺凝膠電泳中存在的濃縮效應，分子拜效應及電荷效應，使不同的蛋白質(zhì)在同一 電場中達到有效的分離。如果在聚丙烯酰胺;疑膠中加入一定濃度的十二烷基硫酸鈉(SDS),由于SDS帶 有大董的負電荷，且這種陰 離子表面活性劑能使蛋白質(zhì)變性，特別是在強還原劑如疏基乙醇存在下，蛋白質(zhì)分子內(nèi)的二硫鍵被還原，肽鏈完 全伸展，使蛋白質(zhì)分子與SDS充分結合，形成帶負電性的蛋白質(zhì)一SDS復合物：此時，蛋白質(zhì)分

4、子上所帶的負 電荷董遠遠超過蛋白質(zhì)分子原有的電荷量，掩蓋了不同蛋白質(zhì)間所帶電荷上的差異。蛋白質(zhì)分子量愈小，在電場 中移動得愈快；反之，愈慢。蛋白質(zhì)的分子董與電泳遷移率之間的尖系是：M產(chǎn)K(10)logMr=LogKb Rn,式中M,-蛋白質(zhì)的分子量；logK截距：b斜率：R.相對遷移率。實驗證明，蛋白質(zhì)分子量在15,000-200,000的范國內(nèi)，電泳遷移率與分子量的對數(shù)之間呈線性尖系。蛋 白質(zhì)的相對遷移率卜蛋白質(zhì)樣品的遷移距離/染料(渙酚藍)遷移距離。這樣，在同一電場中進行電泳，把標準 蛋白質(zhì)的相對遷移率與相應的蛋白質(zhì)分子董對數(shù)作圖，由未知蛋白的相對遷移率可從標準曲線上求出它的分子 量。SD

5、S-聚丙烯脫胺凝膠電泳(SDS-PAGE)法測定蛋白質(zhì)的分子量具有簡便、快速、t復性好的優(yōu)點，是目祈一般實驗室常用的測定蛋白質(zhì)分子量的方法。三、試劑及主要器材1.主要試劑1)標準蛋白混合液內(nèi)含：兔碼酸化酶B(Mw 97, 400),牛血淸蛋白(Mv/ 66, 200),兔肌動蛋白(Mw 43, 000),牛磷酸肝酶(MWv31,000)和雞蛋清溶菌酶(Mw 14.400)2) 30%凝膠貯備液：丙烯酰胺(Ac)29. 2g,亞甲基雙丙烯酰胺(Bis) 0. 8g,加雙蒸水至WOmLo外包錫紙，4C冰箱保存，30天內(nèi)使用。3)分離膠緩沖液/L) : Tris 18. 17g，加雙蒸水溶解,6mo

6、l/L HC I調(diào)，定容WOmLo 4C冰箱保存4)濃縮膠緩沖液/L) : Tris 6. 06g加水溶解，6mol/L HCI調(diào)，并定容到WOmLo 49冰箱保存5)電極緩沖液:SDS lg, Tris 3g. Gly 14.4g?加雙蒸水溶解并定容到WOOnto 4C冰箱保存。6) 10%SDS,室溫保存刀質(zhì)量濃度10%過硫酸枝(新鮮配制)8)上樣緩沖液：/L Tis-HCI，甘油2mL, 10%SDS 2mL,B_勵基乙醇1mL,%渙酚藍，加蒸鐳水定溶至10mLo9)%考馬斯亮藍R -250染邑液：0. 25g考馬斯亮藍R250,加入91ml50%甲醇.9m I冰翳酸10)脫色液：50m

7、l甲醇，75ml冰醋酸與875ml雙蒸水混合11)未知分子董的蛋白質(zhì)樣S(1mg/mL)2.實驗器材DDYCZ-24D垂直板電泳槽(北京市六一儀器廠)2)電泳儀3)長滴管及微量加樣器4)燒杯(250mL、500m1).董簡(500mL、250m1).培養(yǎng)皿(15cm15cm)5)注射器等四.實驗操作1-裝板將密封用硅膠框放在平玻璃上，然后將凹型玻璃與平玻璃重疊，將兩塊玻璃立是來使底端接觸桌面，用 手將兩塊玻璃夾住放入電泳槽內(nèi)，然后插入斜插板到適中程度，即可滾膠。2.凝膠的聚合分離膠和濃縮膠的制備：按下表中溶液的順序及比例，配置10%的分離膠和的濃縮膠。試劑名稱10%的分離膠5%的濃縮膠Acr/

8、Bis 30%/ml分離膠緩沖液0()/ml濃縮膠緩沖液()010%SDS/ml5010%過硫酸餃/ul雙蒸水/ml25TEMED/ul55按上表各液加入混勻后配制成分離膠后.將凝膠液沿凝膠腔的長?，敯宓膬?nèi)面緩 緩用滴管滴入，小心不要 產(chǎn)生乞泡。將膠液加到距短玻璃板上沿2cm處為止，約5mL。然后用細滴管或注射器仔細注入少量水，約。室 溫放置聚合30-40mino待分離膠聚合后，用濾紙條輕輕吸去分離膠表面的水分，按上表制備濃縮膠。用長滴管小心加到分離膠的 上面，插入樣品模子（梳子）：待濃縮膠聚合后，小心拔出樣品模子。3.蛋白質(zhì)樣品的處理若標準蛋白質(zhì)或欲分離的蛋白質(zhì)樣品是固體，稱取Img的樣品溶

9、解于ImL /L鹽酸煖沖液或蒸憎水中；若 樣品是液體，要測定蛋白質(zhì)濃度，按/mL溶液比例，取蛋白質(zhì)樣液與樣品處理液等體積混勻。本實驗所用樣 品為1520 g的標準蛋白樣品溶液，放置在的離心管中，加入15-20 I的樣品處理液。在100C水浴中處理2mint冷卻至室溫后備用。吸取未知分子量的蛋白質(zhì)樣品20 I,按照標準蛋白的處理方法進行處理。4.加樣SDS-聚丙烯酰胺凝膠垂直板型電泳的加樣方法用手夾住兩塊玻璃板，上提斜插板使其松開，然后取下玻璃膠室去掉密封用硅膠框，注意在上述過程中 手始終給玻璃膠室一個夾緊力，再將玻璃膠室凹面朝里置入電泳槽，插入斜板，將緩沖液加至內(nèi)槽玻璃凹面以 上，外槽緩沖液加

10、到距平板玻璃上沿3mm處即可，注意避免在電泳槽內(nèi)出現(xiàn)氣泡。加樣時可用加樣器斜靠在提手邊緣的凹槽內(nèi)，以準確定位加樣位置，或用微量注射器依次在各樣品槽內(nèi) 加樣，各加1015 I（含蛋白質(zhì)1015g），稀溶液可加2030 I（還要根據(jù)膠的厚度靈活掌握）。5.電泳加樣完畢，蓋好上蓋，連接電泳儀，打開電泳儀開尖后，樣品進膠前電流控制在1520mA.大約1520min:樣品中的渙酚藍指示劑到達分離膠之后，電流升到3045mA,電泳過程保持電流穩(wěn)定。 當渙酚藍指示 劑遷移到距前沿12cm處即停止電泳，約小時。如室溫爲打開電泳槽循環(huán)水，降低電泳溫廈。6.染色、脫色電泳結束后，尖掉電源，取出玻璃板，在長短兩塊玻

11、璃板下角空隙內(nèi)用刀輕輕撬動，即將膠面與一塊玻 璃板分開，然后輕輕將膠片托起， 指示劑區(qū)帶中心插入銅絲作為標志， 放入大培養(yǎng)皿中染色， 使用的考馬斯 亮藍染液染邑24h,必 要時可過夜。棄去染色液用蒸餡水把膠面漂洗幾次，然后加入脫邑液，進行擴散脫邑，經(jīng)常換脫色液，直至蛋白質(zhì)帶 清晰為止。7.結果處理D測量脫色后凝膠板的長度和每個蛋白質(zhì)樣品移動距離 （即蛋白質(zhì)帶中心到加樣孔的距離） ， 測量指示染料 遷移的距離。2）按以下公式計算蛋白質(zhì)樣品的相對遷移率（Rm）相對遷移率二樣品遷移距離（cm）/染料遷移距離（cm）?3）標準曲線的制作：以各標準蛋白質(zhì)相對遷移率為橫坐標，蛋白質(zhì)分子董的對數(shù)為縱坐標在半對數(shù)坐標紙上 做圖，得到一條標準曲線。4）測定蛋白質(zhì)樣品的分子量：根據(jù)待測蛋白質(zhì)樣品的相對遷移率，從標準曲線上查得該蛋白質(zhì)的分子量。五、思考題/.聚丙烯酸胺盤狀凝膠電泳的幾個不連續(xù)性是什么2電泳時的三個物理效應是什么是怎樣造成的3電泳后上下槽緩沖液可否混合后再使用為什么4.上樣緩沖液中加入甘