魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展_第1頁
魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展_第2頁
魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展_第3頁
魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展_第4頁
魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展_第5頁
已閱讀5頁,還剩10頁未讀 繼續(xù)免費(fèi)閱讀

付費(fèi)下載

下載本文檔

版權(quán)說明:本文檔由用戶提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請進(jìn)行舉報或認(rèn)領(lǐng)

文檔簡介

1、魚類樹突狀細(xì)胞研究進(jìn)展陳孝煊*§收稿日期:2018-02-04 修回日期:資助項(xiàng)目:國家自然科學(xué)基金(31672683)通信作者:陳孝煊,Email: chenxx§共同第一作者,李思思§,周成翀,吳志新(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院,湖北省水生動物病害防控工程技術(shù)研究中心,淡水水產(chǎn)健康養(yǎng)殖湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,水產(chǎn)養(yǎng)殖國家級實(shí)驗(yàn)教學(xué)示范中心(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)),湖北 武漢 430070)摘要:樹突狀細(xì)胞(DCs)是目前已知的體內(nèi)功能最強(qiáng)的抗原遞呈細(xì)胞,是唯一能夠激活初始T淋巴細(xì)胞反應(yīng)的細(xì)胞,在先天性免疫、適應(yīng)性免疫以及維持自身免疫耐受方面具有重要的作用,因此一直是免疫學(xué)研究的

2、重要領(lǐng)域。本文簡要綜述了DCs的類型及其在動物體內(nèi)的功能、各類DCs的細(xì)胞標(biāo)記??偨Y(jié)了魚類DCs的分離、純化方法和形態(tài)學(xué)觀察方法;現(xiàn)有研究表明,魚類DCs具有吞噬細(xì)菌、刺激T細(xì)胞增殖、誘導(dǎo)CD4+T細(xì)胞的活化、表達(dá)DCs的標(biāo)記基因、被Toll樣受體的配體激活、遷移能力、引起混合淋巴細(xì)胞反應(yīng)等生物學(xué)功能;不同魚類DCs的分子標(biāo)記并不完全一樣;魚類的頭腎、腎、鰓、皮膚、胸腺、脾、腸等均有DCs的分布。目前,對魚類DCs的研究雖然取得了一定進(jìn)展,但仍有許多重要問題需要解決:魚類DCs目前缺乏明確的細(xì)胞標(biāo)記,加強(qiáng)這方面的研究有助于提高魚類DCs的分離、體內(nèi)分布與功能的研究水平;加強(qiáng)和完善魚類DCs的分

3、離、培養(yǎng)技術(shù)的研究,掌握各種魚類DCs的分離培養(yǎng)方法;加強(qiáng)魚類DCs在抗原遞呈中的功能研究,對深入魚類免疫機(jī)理研究,合理設(shè)計和應(yīng)用疫苗,具有重要的理論指導(dǎo)意義。關(guān)鍵詞:魚類;樹突狀細(xì)胞;形態(tài);分布;細(xì)胞標(biāo)記;功能中圖分類號: 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:1 DCs的發(fā)現(xiàn)與分類1.1 DCs的發(fā)現(xiàn)樹突狀細(xì)胞(dendritic cell, DCs)是目前已知的體內(nèi)功能最強(qiáng)的抗原遞呈細(xì)胞,是唯一能夠激活初始T淋巴細(xì)胞反應(yīng)的細(xì)胞1-2。據(jù)報道,最早發(fā)現(xiàn)的一類DCs是朗格漢斯細(xì)胞(Langerhans cell,LCs)。1868年,Paul Langerhans3 發(fā)現(xiàn)了人皮膚中一種常駐的樹枝狀形態(tài)的細(xì)胞并命名為L

4、Cs。LCs長期以來被誤認(rèn)為是一種神經(jīng)細(xì)胞,直到Steinman4 發(fā)現(xiàn)了一種獨(dú)特的細(xì)胞類型并進(jìn)行了后續(xù)的相關(guān)研究,才確定LCs可作為定居在皮膚中的抗原遞呈細(xì)胞。1973年,Steinman 和 Cohn5在體外培養(yǎng)小鼠脾臟細(xì)胞時發(fā)現(xiàn)了一群形態(tài)呈樹枝狀的細(xì)胞,并命名為DCs。后來Voohis6在人外周血液中亦發(fā)現(xiàn)這種細(xì)胞。20世紀(jì)90年代中期,DCs在免疫學(xué)中的重要性被逐漸認(rèn)識。有研究認(rèn)為,小鼠淋巴器官DCs根據(jù)其是否表達(dá)CD8,分為兩個亞型,具有不同的免疫功能7。隨后,有研究發(fā)現(xiàn)在非淋巴組織中功能表型與淋巴組織中CD8+ DCs相同的細(xì)胞,但不表達(dá)CD8,而表達(dá)整合素CD1038。此外,DC

5、s家族還被發(fā)現(xiàn)有另一類特征類似于漿細(xì)胞的細(xì)胞群,在病毒感染時,會產(chǎn)生大量的干擾素-(INF-),而且還能分化為經(jīng)典的DCs,以抗原特異性的方式活化初始型T細(xì)胞9。自從在人類和小鼠中發(fā)現(xiàn)了DCs并進(jìn)行形態(tài)和功能的研究之后,人們陸續(xù)在鳥類、爬行類、兩棲類以及魚類中發(fā)現(xiàn)DCs的存在,這些細(xì)胞與哺乳動物DCs形態(tài)、分子標(biāo)記及功能相同或相似10-14。 1.2 DCs的分類及功能 DCs來源于造血干細(xì)胞(hematopoietic stem cell, HSC),局部造血微環(huán)境對其發(fā)育起著重要的作用,如FMS樣酪氨酸激酶3配體(Flt3L)、粒巨噬細(xì)胞集落刺激因子(GM-CSF)、巨噬細(xì)胞集落刺激因子(

6、M-CSF)、型干擾素(INF-)等細(xì)胞因子。在這些不同細(xì)胞因子的刺激下,逐步由HSC分化發(fā)育為不同種類的DCs并分布到身體的各部位15-17。根據(jù)DCs的表型、功能及分化來源等有不同的分類方法。根據(jù)成熟程度來劃分根據(jù)細(xì)胞成熟度,DCs可以分為未成熟DCs(immature DCs, imDCs)和成熟DCs(mature DCs, mDCs)兩類。兩種DCs的形態(tài)、細(xì)胞表面標(biāo)記物和免疫學(xué)特性不同。穩(wěn)態(tài)條件下,體內(nèi)絕大多數(shù)DCs處于未成熟狀態(tài),未成熟DCs具有較強(qiáng)的抗原攝取及處理能力,其細(xì)胞表面低表達(dá)CD40、CD80、CD86等共刺激分子和主要組織相容性復(fù)合體II類分子(MHC),不能有效遞

7、呈抗原來激活T淋巴細(xì)胞,從而導(dǎo)致免疫耐受18。未成熟DCs誘導(dǎo)免疫耐受的機(jī)制可能有激活T細(xì)胞凋亡、誘導(dǎo)T細(xì)胞免疫無能以及誘導(dǎo)調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cell, Treg)的產(chǎn)生等19,因此未成熟DCs又被稱為“耐受性DCs”(toterogenic dendritic cells)。成熟DCs通過細(xì)胞表面的抗原肽/MHC分子復(fù)合物將抗原遞呈給初始T細(xì)胞,從而刺激初始T細(xì)胞分化為針對該種抗原的特異性細(xì)胞毒性T細(xì)胞,促進(jìn)其分化增殖而發(fā)揮免疫效應(yīng)20,調(diào)節(jié)Thl/Th2的發(fā)育,在免疫監(jiān)視中發(fā)揮重要的作用21。因此,DCs的抗原攝取和傳遞功能在機(jī)體先天性免疫、適應(yīng)性免疫和維持自身組織免

8、疫耐受的過程中起著非常關(guān)鍵的作用22。根據(jù)分化來源途徑來劃分根據(jù)分化來源,DCs主要分為髓樣DCs(myeloid DCs, mDCs)和漿細(xì)胞樣DCs(plasmacytoid DCs, pDCs)1。mDCs又稱為傳統(tǒng)DCs(conventional DCs, cDCs),cDCs按照T細(xì)胞分化的方向進(jìn)一步分為誘導(dǎo)Th0向Th1分化的cDC1s和向Th2分化的cDC2s23。DCs來源于骨髓HSC,先分化為骨髓樣和淋巴樣前體細(xì)胞,骨髓樣前體細(xì)胞再分化為單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和DCs前體細(xì)胞24-25,DCs前體細(xì)胞進(jìn)一步分化為單核細(xì)胞、少量的巨噬細(xì)胞和cDCs前體細(xì)胞(CDP)26-27,最后

9、CDP再分化為DCs分支前體細(xì)胞,例如cDC1s和cDC2s前體細(xì)胞28。cDC1s在小鼠中表型為CD8+CD103+,在人體內(nèi)表型為BDCsA3+(CD141+);cDC2s在小鼠中表型為CD11b+CD4+CD8-,在人體內(nèi)表型為BDCA1+(CD1c+)23。CD1c+mDCs高表達(dá)一些活化分子以及Toll樣受體18(TLR18),能夠分泌多種細(xì)胞因子,具有較強(qiáng)的攝取抗原的能力,并且產(chǎn)生免疫應(yīng)答29。CD141+mDCs 交叉遞呈病毒抗原的能力比其他DCs亞群強(qiáng),研究者推測這可能與其高表達(dá)C型凝集素9家族A成員(CLEC9A)有關(guān),CLEC9A有利于病毒感染后壞死細(xì)胞抗原的處理30。pD

10、Cs在小鼠中表型為B220+mPDCA1+Siglec-h+;在人體內(nèi)表型為BDCA4+BDCA2+23,pDCs可以通過表面的TLR7和TLR9識別病原體,分泌大量的INF-,產(chǎn)生免疫應(yīng)答31。根據(jù)細(xì)胞學(xué)和生化性質(zhì)來劃分根據(jù)細(xì)胞學(xué)特征和生化特性,DCs可分為常駐性DCs(resident DCs)和移動性DCs(migratory DCs)。常駐性DCs存在于次級淋巴器官中,穩(wěn)態(tài)下,常駐性DCs呈現(xiàn)出不成熟DC的表型并且低表達(dá)一些共刺激分子。移動性 DCs主要分布在不同的非淋巴組織,該亞群 DCs可進(jìn)一步劃分間質(zhì)性 DCs、LCs和外周血 DCs等,當(dāng)其受到抗原刺激后移動性DCs能回到淋巴結(jié)

11、定居 32-33。其中,LCs主要分布于表皮和胃腸道上皮,為未成熟DCs,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)含特征性結(jié)構(gòu)-Birbeck顆粒。LCs另一特征性的標(biāo)記是表達(dá)C型凝集素Langerin/CD207,其他細(xì)胞標(biāo)記包括上皮細(xì)胞黏附分子EpCAM、F4/80、E-cadherin、DEC205/CD205和CD11b34。2 DCs的標(biāo)記DCs是異質(zhì)性很高的細(xì)胞類群,由多種功能、活性迥異的亞群組成35。DCs目前沒有公認(rèn)的、統(tǒng)一的特異性標(biāo)記,不同的細(xì)胞亞型都有其特異性的標(biāo)記物。人DCs相對特異性的標(biāo)記為CD1a、CD11c和CD83。小鼠DCs相對特異性的標(biāo)記為NLDCs145和33D1。Coventry等36認(rèn)

12、為,CD1a主要表達(dá)于人胸腺細(xì)胞、DCs(包括LCs),是鑒定人外周血與骨髓中DCs的最好標(biāo)記。Prechtel等37研究發(fā)現(xiàn),CD83是DCs成熟的標(biāo)記,體外培養(yǎng)的DCs在早期不表達(dá)CD83分子,當(dāng)其成熟時才表達(dá)CD83分子,成熟DCs攝取抗原的能力降低而其激活T細(xì)胞的功能則增強(qiáng)。一些研究發(fā)現(xiàn),cDCs都表達(dá)CD11c和MHCII,但不同的亞型都有其特異性的標(biāo)記38-39。在脾臟和淋巴結(jié)中,cDC1s表達(dá)CD8、CD24和XCR1,而cDC2s表達(dá)CD4和Sirp40-41。非淋巴組織中,cDCs均表達(dá)CD24,區(qū)別于表達(dá)CD64的巨噬細(xì)胞42-44。cDC1s表達(dá)CD103與XCR1,而c

13、DC2s表達(dá)CD11b與Sirp。Guilliams等45發(fā)現(xiàn)一種簡單的標(biāo)記分類:cDCs(CD11C+MHC+CD26+ CD64- F4/80-)、cDC1s(XCR+)以及cDC2s(Sirp+)。pDCs也表達(dá)CD11c和MHCII,此外還表達(dá)B220、Siglec-H和Bst246-47。目前已發(fā)現(xiàn)的 DCs 膜表面分子主要有吞噬相關(guān)受體,包括 FcR、FcR、TLR、補(bǔ)體受體、甘露糖受體;抗原遞呈分子,包括MHCI/II分子、CD1 分子;共刺激分子 ,包括CD80、CD86;黏附分子,包括CD40、CD54、1/2 整合素家族等;細(xì)胞因子受體,包括粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子受體

14、(granulocyte-macrophage colonystimulating factor receptor,GM-CSFR)、白介素-1 受體(interleukin-1 receptor,IL-1R)、IL-10R、IL-4R1。3 魚類DCs與哺乳動物相比,魚類的免疫器官缺乏骨髓和淋巴結(jié),但魚類的多種器官(組織)中均發(fā)現(xiàn)有樹突狀細(xì)胞(或類樹突狀細(xì)胞)分布。已有研究表明,DCs 在哺乳動物和魚類中的功能和表型是保守的,魚類的 DCs 有經(jīng)典 DCs 的形態(tài)、相似的功能;不同魚類 DCs 的分子標(biāo)記也不盡相同。3.1 魚類DCs的分離與鑒定魚類DCs的分離與富集培養(yǎng)對魚類DCs的研究,

15、離不開DCs的分離培養(yǎng)培養(yǎng)技術(shù),目前有關(guān)學(xué)者采用的分離方法主要是機(jī)械法和酶消化法。Bassity 等11在對虹鱒(Oncorhynchus mykiss)DCs的研究中,即采用了這兩種方法:機(jī)械法:虹鱒用過量的MS-222麻醉,尾靜脈采血后,無菌條件下取頭腎、脾臟、體腎的前部分置于L-15培養(yǎng)基中,用無菌注射器的活塞碾壓組織并用L-15培養(yǎng)基沖洗使組織中的細(xì)胞通過70m的細(xì)胞篩獲得單細(xì)胞懸液;用L-15培養(yǎng)基調(diào)整活細(xì)胞數(shù)為6x106個細(xì)胞/ml,置于25cm2或75cm2培養(yǎng)瓶中,室溫培養(yǎng)730 d,期間收集非貼壁細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞出現(xiàn)樹突狀的形態(tài)時,用Nycoprep/One-step monoc

16、ytes(Accurate chemical, Westbury, NY)分離液進(jìn)一步富集純化得到類DCs細(xì)胞。從外周血分離DCs的方法則是:從尾靜脈取血用肝素處理后,用含有肝素的磷酸鹽緩沖液稀釋4倍,室溫靜置20min,將富含白細(xì)胞的血漿置于Nycoprep1.077(Axis Shield, Oslo, Norway)分離液上,離心后收集白細(xì)胞,用L-15培養(yǎng)基重懸、調(diào)整細(xì)胞數(shù)為5x106 個細(xì)胞/ml,置于25cm2培養(yǎng)瓶中室溫培養(yǎng),2 h后棄非貼壁細(xì)胞,培養(yǎng)過夜后,DCs失去其貼壁性而懸浮在L-15培養(yǎng)液中。酶消化法:無菌條件下,從麻醉的虹鱒中取出脾臟,用膠原酶A處理獲得單細(xì)胞懸液,置

17、于Nycoprep (Axis Shield, Oslo, Norway)分離液上,離心后收集白細(xì)胞;用L-15培養(yǎng)基重懸、調(diào)整細(xì)胞數(shù)為6x106 個細(xì)胞/ml,置于6孔板中,室溫培養(yǎng),2 h后棄非貼壁細(xì)胞,培養(yǎng)過夜后,DCs失去其貼壁性而懸浮在L-15培養(yǎng)液中。Zoccola等13在對尖吻鱸(Lates calcarifer)的研究中,通過機(jī)械法分離得到DCs,但富集純化方法與Bassity等人的方法稍有不同:魚體麻醉致死,尾靜脈取血后于無菌條件下取脾臟和頭腎,置于L-15培養(yǎng)基中,用1ml無菌注射器的活塞碾壓組織并用L-15培養(yǎng)基沖洗使細(xì)胞通過100m的細(xì)胞篩獲得單細(xì)胞懸液;用L-15培養(yǎng)

18、基調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1x107個細(xì)胞/ml,置于25cm2或75cm2培養(yǎng)瓶中,28培養(yǎng)5-14d;期間收集非貼壁細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞具有樹突狀的形態(tài)時,利用不連續(xù)密度梯度Percoll分離液(d = 1.058 g/mL 和 d = 1.048g/mL)進(jìn)一步富集純化得到DCs細(xì)胞。此外,還可以利用DCs的特性以及通過熒光標(biāo)記的方法分離DCs。利用頭腎中的細(xì)胞對花生凝集素(PNA)的親和力的差異,結(jié)合流式細(xì)胞分選技術(shù),Lugo-Villarino 等10從斑馬魚(Danio rerio)的頭腎中分離得到PNAhi 細(xì)胞,并證實(shí)這些細(xì)胞為DCs。Wittamer等48在雙轉(zhuǎn)基因斑馬魚的頭腎中分離出mhc2d

19、ab:GFPhi, cd45:DsRedhi的單核吞噬細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)其中DCs有一定的比例。魚類DCs的形態(tài)通過Wright-Giemsa染色的方法,Lugo-Villarino 等10在斑馬魚中發(fā)現(xiàn)具有DCs獨(dú)特形態(tài)的細(xì)胞,細(xì)胞胞體向外伸出多個突起,這些突起在長度、寬度、形態(tài)和數(shù)目上都不同,胞體形態(tài)不規(guī)則,細(xì)胞核呈橢圓形或腎形,整體呈現(xiàn)星形或細(xì)長的細(xì)胞形態(tài)。其他多種染色方法也顯示了典型DCs的特性,例如酸性磷酸酶染色顯示,DCs細(xì)胞核周圍分布有較小的陽性顆粒;-醋酸萘酯酶染色顯示,DCs染色較弱,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)有黑色沉淀。對分離得到DCs進(jìn)行超微結(jié)構(gòu)觀察,透射電鏡結(jié)果顯示,DCs從胞體向外伸出突起,細(xì)

20、胞核常為較大的、彎曲的形態(tài),且核膜周圍分布著染色質(zhì),細(xì)胞質(zhì)的電子密度較低且含有線粒體、溶酶體、多泡體等細(xì)胞器。此外,在皮膚中分離的DCs發(fā)現(xiàn)有“網(wǎng)球拍”狀顆粒,類似于哺乳動物L(fēng)Cs中的Birbeck顆粒。Bassity 等11從虹鱒脾臟和頭腎分離培養(yǎng)2周后的DCs,在光鏡下觀察到DCs出現(xiàn)分枝狀突起。Wright-Giemsa染色顯示,細(xì)胞形態(tài)不規(guī)則,核呈小裂片形狀,其中一部分細(xì)胞的細(xì)胞核呈三葉草型或花瓣型。在透射電鏡下,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞有不同程度的突起,細(xì)胞核常分為2葉或3葉,周圍分布有染色質(zhì),細(xì)胞質(zhì)中有內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體、線粒體等細(xì)胞器,但未發(fā)現(xiàn)“網(wǎng)球拍”狀的 Birbeck顆粒。近年來的研究發(fā)現(xiàn),

21、在硬骨魚類的脾臟和頭腎中存在類似哺乳動物L(fēng)Cs的一類細(xì)胞。Lovy等49在鯉形目(Cypriniformes)的鯉(Cyprinus carpio)、狗魚目(Esociformes)的白斑狗魚(Esox lucius)、鮭形目(Salmoniformes)的大西洋鮭(Salmo salar)、鰈形目(Pleuronectiformes)的大西洋庸鰈(Hippoglossus hippoglossus)等多種魚類中發(fā)現(xiàn)類LCs,具有典型的“網(wǎng)球拍”狀的Birbeck顆粒,且圍繞中心粒周圍分布,但不同物種的Birbeck顆粒結(jié)構(gòu)有差別。3.2 魚類DCs的功能Lugo-Villarino 等10發(fā)

22、現(xiàn),斑馬魚DCs除了具有典型的DCs形態(tài)外,還具有吞噬細(xì)菌的能力,高表達(dá)與DCs相關(guān)的基因,例如il-12p40、csf1r和 iclp1, 而且PNAhi DCs具有刺激T細(xì)胞增殖的能力,同時DCs可誘導(dǎo)抗原特異性CD4+T細(xì)胞的活化50。Bassity 等11發(fā)現(xiàn),在虹鱒中分離得到的DCs,除了具有刺激T淋巴細(xì)胞增殖能力外,還具有一系列類似哺乳動物DCs的功能,例如表達(dá)DCs的一些標(biāo)記基因,能夠吞噬小的顆粒,能夠被TLR的配體激活,在體內(nèi)具有遷移能力等。在尖吻鱸中的研究中,發(fā)現(xiàn)肽聚糖、脂多糖以及海豚鏈球菌(Streptococcus iniae)都能夠誘導(dǎo)DCs的遷移,與脂多糖相比,肽聚糖

23、的誘導(dǎo)作用更為明顯,DCs能夠吞噬細(xì)菌和熒光微球以及刺激T淋巴細(xì)胞的增殖13。在青鳉(Oryzias latipes)中,類DCs也能引起強(qiáng)烈的混合淋巴細(xì)胞反應(yīng)(mixed lymphocyte reaction, MLR)51。3.3 魚類DCs的表面標(biāo)記越來越多的研究表明,魚類的DCs在激活B細(xì)胞和T細(xì)胞的功能上是保守的。由于DCs具有異質(zhì)性,DCs的鑒定要依賴多個細(xì)胞標(biāo)記的表達(dá)52。在哺乳動物中,膜結(jié)合蛋白CD83是成熟DCs的膜標(biāo)記分子,膜結(jié)合蛋白CD83分子量為40-45KD,屬于免疫球蛋白超家族成員,由胞外區(qū)、跨膜區(qū)和胞內(nèi)區(qū)組成37。未成熟DCs表面表達(dá)低水平的共刺激分子及 MHC

24、II 類分子,而高表達(dá)一系列受體,如TLR、C 型凝集素等。DCs的表型與功能相適應(yīng),高表達(dá)的受體有利于未成熟細(xì)胞識別、攝取抗原相關(guān)的物質(zhì)。一旦未成熟DCs受到炎性刺激,則會向成熟DCs轉(zhuǎn)化,其中共刺激分子及 MHCII 表達(dá)水平顯著提高,其意義在于提供T 細(xì)胞活化的信號,如T細(xì)胞受體與MHC-抗原復(fù)合體結(jié)合傳遞信號,T細(xì)胞型CD28與CD80/CD86 結(jié)合傳遞信號,從而啟動獲得性免疫應(yīng)答53-54。在硬骨魚類中,對于DCs的分子標(biāo)記還不確定。在虹鱒中,分離培養(yǎng)的DCs可表達(dá)TLR-3、TLR-5、TLR-9、TLR-20、TLR-22、TLR-22L、B7R、B7H1、B7H3、B7H4、

25、IL12p40、CXCR4、CCR7、MHCII、CD83、CD209等DCs標(biāo)記基因;DCs在四種TLR配體(imiquimod, Poly I:C, ssRNA, flagellin)的混合物刺激下,CD83發(fā)生顯著性上調(diào)表達(dá)11。在尖吻鱸中,發(fā)現(xiàn)了一種潛在的DCs標(biāo)記-DCs-SCRIPT,在肽聚糖和脂多糖的刺激下,頭腎和脾臟中的DCs-SCRIPT都出現(xiàn)了不同程度的上調(diào)表達(dá)13。有研究表明,CD80/86、CD83、CD209以及MHCII共定位在斑馬魚DCs的細(xì)胞膜上,而且在脂多糖和血藍(lán)蛋白的刺激下,以上四種分子均出現(xiàn)顯著性上調(diào)表達(dá)50。3.4 魚類DCs在體內(nèi)的分布和哺乳動物相似,

26、DCs在魚體內(nèi)的數(shù)量很少6,但從不同組織均可分離得到一定純度的DCs。在虹鱒、尖吻鱸的頭腎和脾臟以及外周血中都分離培養(yǎng)得到了不同數(shù)量的DCs11, 13。此外,通過綠色熒光蛋白標(biāo)記MHC(mhc2dab:GFP)和紅色熒光蛋白標(biāo)記CD45(cd45:DsRed)的方法,結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)分離并研究了單核細(xì)胞和DCs在轉(zhuǎn)基因斑馬魚體內(nèi)的特性,發(fā)現(xiàn)體內(nèi)多數(shù)器官都有DCs的分布;DCs占單核吞噬細(xì)胞的比例在各器官中分別為:皮膚(15%)、胸腺(10%)、腎(6%)、脾(5%)、腸(3%)48。Granja等55在虹鱒皮膚中發(fā)現(xiàn)了MHCII+、CD8+ DCs樣細(xì)胞,約占白細(xì)胞的1.2%,且表現(xiàn)出與哺乳動

27、物DCs相似的功能與表型。Lovy等12在孢子蟲感染的大鱗大麻哈魚(Oncorhynchus tshawytscha)的鰓中,發(fā)現(xiàn)了LCs。隨后,在大西洋鮭(Salmo salar)、虹鱒(Oncorhynchus mykiss)、美洲紅點(diǎn)鮭(Salvelinus fontinalis)以及多種輻鰭亞綱魚類的頭腎及脾臟中發(fā)現(xiàn)了LCs49, 56。最近,Kordon等人在斑點(diǎn)叉尾鮰(Ictalurus punctatus)的頭腎、脾臟、鰓中也發(fā)現(xiàn)了類LCs57。4 總結(jié)與展望哺乳動物DCs研究已較深入。近年來,在越來越多的魚類中也發(fā)現(xiàn)了DCs,研究發(fā)現(xiàn),魚類DCs在功能和表型上與哺乳動物具有很多

28、共性,但是仍然有很多問題亟待解決,例如DCs的細(xì)胞標(biāo)記,加強(qiáng)這方面的研究有助于提高魚類DCs的分離、DC類型及在體內(nèi)分布與功能的研究水平; DCs的分離、培養(yǎng)技術(shù); DCs在抗原遞呈中的功能研究,以及DCs在魚體中發(fā)揮功能的場所與調(diào)節(jié)機(jī)制等。隨著技術(shù)的進(jìn)步和研究的深入,魚類DCs的生物學(xué)特性以及DCs免疫調(diào)節(jié)的機(jī)制等問題將逐漸被解決,這對深入魚類免疫機(jī)理研究,合理設(shè)計和應(yīng)用疫苗,具有重要的理論指導(dǎo)意義。參考文獻(xiàn):1 Steinman R M. Decisions about dendritic cells: past, present, and futureJ. The AnnualRevie

29、w of Immunology, 2012, 30:1-22.2 Collin M, McGovern N, Haniffa M. Human dendritic cell subsetsJ. Immunology, 2013, 140(1):22-30.3 Jolles S. Paul LangerhansJ. Journal of Clinical Pathology, 2002, 55(4):243.4 Schuler G, Romani N, Steinman R M. A comparison of murine epidermal Langerhans cells with spl

30、een dendritic cellsJ. Journal of Investigative Dermatology, 1985, 85(S1):99s-106s.5 Steinman R M, Cohn Z A. Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice: I. morphology, quantitation, tissue distributionJ. The Journal of Experimental Medicine, 1973, 137(5):1142-1162.6 Voo

31、rhis W V, Hair L S, Steinman R M, et al. Human dendritic cells. Enrichment and characterization from peripheral bloodJ. Journal of Experimental Medicine, 1982, 155(4):1172-1187.7 Shortman K, Heath W R. The CD8+ dendritic cell subsetJ. Immunological Reviews, 2010, 234:18-31. 8 Helft J, Ginhoux F, Bog

32、unovic M, et al. Origin and functional heterogeneity of non-lymphoid tissue dendritic cells in miceJ. Immunological Reviews, 2010, 234:55-75.9 Colonna M, Trinchieri G, Liu Y J. Plasmacytoid dendritic cells in immunityJ. Nature Immunology, 2004, 5(12):1219-1226.10 Lugo-Villarino G, Balla K M, Stachur

33、a D L, et al. Identification of dendritic antigen-presenting cells in the zebrafishJ. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(36):15850-15855.11 Bassity E, Clark T G. Functional identification of dendritic cells in the teleost model, rainbow trout (

34、Oncorhynchus mykiss)J. PLoS One, 2012, 7(3):e33196.12 Lovy J, Wright G M, Speare D J. Morphological presentation of a dendritic-like cell within the gills of chinook salmon infected with Loma salmonaeJ. Developmental Comparative Immunology, 2006, 30(3):259-263.13 Zoccola E, Delamare-Deboutteville J,

35、 Barnes A C. Identification of Barramundi (Lates calcarifer) DCs-SCRIPT, a specific molecular marker for dendritic cells in fishJ. PLoS One, 2015, 10(7):e0132687.14 Miranda de Carvalho C, Bonnefont-Rebeix C, Rigal D, et al. "Dendritic cells in different animal species: an overview"J. Patho

36、logie Biologie (Paris), 2006, 54(2):85-93.15 Iwasaki H, Akashi K. Myeloid lineage commitment from the hematopoietic stem cellJ. Immunity, 2007, 26(6):726-740.16 Ramos M I, Tak P P, Lebre M C. Fms-like tyrosine kinase 3 ligand-dependent dendritic cells in autoimmune inflammationJ. Autoimmunity Review

37、s, 2014, 13(2):117-124.17 Ushach I, Zlotnik A. Biological role of granulocyte macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) and macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) on cells of the myeloid lineageJ. Journal of Leukocyte Biology, 2016, 100(3):481-489.18 Yamazaki S, Patel M, Harper A, et al. E

38、ffective expansion of alloantigen-specific Foxp3+ CD25+ CD4+ regulatory T cells by dendritic cells during the mixed leukocyte reactionJ. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2006, 103(8):2758-2763.19 Mahnke K, Johnson T S, Ring S, et al. Tolerogenic dendri

39、tic cells and regulatory T cells: a two-way relationshipJ. Journal of Dermatological Science, 2007, 46(3):159-167.20 Dhodapkar M V, Bhardwaj N. Active immunization of humans with dendritic cellsJ. Journal of Clinical Immunology, 2000, 20(3):167-174.21 Kelsall B L, Biron C A, Sharma O, et al. Dendrit

40、ic cells at the host-pathogen interfaceJ. Nature Immunology, 2002, 3(8):699-702.22 Swiatczak B, Rescigno M. How the interplay between antigen presenting cells and microbiota tunes host immune responses in the gutJ. Seminars in Immunology, 2012, 24(1):43-49.23 Guilliams M, Ginhoux F, Jakubzick C, et

41、al. Dendritic cells, monocytes and macrophages: a unified nomenclature based on ontogenyJ. Nature Reviews Immunology, 2014, 14(8):571-578.24 Fogg D K, Sibon C, Miled C, et al. A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cellsJ. Science, 2006, 311(5757):83-87.25 Auffray

42、 C, Fogg D K, Narni-Mancinelli E, et al. CX3CR1+ CD115+ CD135+ common macrophage/DCs precursors and the role of CX3CR1 in their response to inflammationJ. The Journal of Experimental Medicine, 2009, 206(3):595-606.26 Onai N, Obata-Onai A, Schmid M A, et al. Identification of clonogenic common Flt3+M

43、-CSFR+ plasmacytoid and conventional dendritic cell progenitors in mouse bone marrowJ. Nature Immunology, 2007, 8(11):1207-1216.27 Naik S H, Sathe P, Park H Y, et al. Development of plasmacytoid and conventional dendritic cell subtypes from single precursor cells derived in vitro and in vivoJ. Natur

44、e Immunology, 2007, 8(11):1217-1226.28 Grajalesreyes G E, Iwata A, Albring J, et al. Batf3 maintains Irf8 autoactivation for commitment of a CD8+ cDCs clonogenic progenitorJ. Nature Immunology, 2015, 16(7):708-717.29 Yu ChunI, Becker C, Wang Y, et al. Human CD1c(+) dendritic cells drive the differen

45、tiation of CD103(+) CD8(+) mucosal effector T cells via the cytokine TGF-J. Immunity, 2013, 38(4):818-830.30 Franz P L, Mariolina S, Emmanuel G, et al. Characterization of human DNGR-1+BDCsA3+leukocytes as putative equivalents of mouse CD8+ dendritic cellsJ. Journal of Experimental Medicine, 2010, 2

46、07(6):1261.31 Liu Y J. IPC: professional type 1 interferon-producing cells and plasmacytoid dendritic cell precursorsJ. The Annual Review of Immunology, 2005, 23:275-306.32 Ju X, Clark G, Hart D N. Review of human DCs subtypesJ. Methods in Molecular Biology, 2010, 595(595):3.33 Jacobs B, Wuttke M, P

47、apewalis C, et al. Dendritic cell subtypes and in vitro generation of dendritic cellsJ. Hormone and Metabolic Research, 2008, 40(2):99-107.34 Romani N, Clausen B E, Stoitzner P. Langerhans cells and more: langerin-expressing dendritic cell subsets in the skinJ. Immunological Reviews, 2010, 234:120-1

48、41.35 Merad M, Manz M G. Dendritic cell homeostasisJ. Blood, 2009, 113(15):3418-3427.36 Coventry B J, Austyn J M, Chryssidis S, et al. Identification and isolation of CD1a positive putative tumour infiltrating dendritic cells in human breast cancerJ. Advances in Experimental Medicine & Biology,

49、1997, 417:571-577.37 Prechtel A T, Steinkasserer A. CD83: an update on functions and prospects of the maturation marker of dendritic cellsJ. Archives of Dermatological Research, 2007, 299(2):59-69.38 Steinman R M, Kaplan G, Witmer M D, et al. Identification of a novel cell type in peripheral lymphoi

50、d organs of mice. V. Purification of spleen dendritic cells, new surface markers, and maintenance in vitroJ. Journal of Experimental Medicine, 1979, 149(1):1-16.39 Metlay J P, Witmer-Pack M D, Agger R, et al. The distinct leukocyte integrins of spleen dendritic cells as identified with new hamster m

51、onoclonal anti-bodiesJ. Journal of Experimental Medicine, 1990, 171(5):1753-1771.40 Mildner A, Jung S. Development and function of dendritic cell subsetsJ. Immunity, 2014, 40(5):642-656.41 Murphy T L, Grajales-Reyes G E, Wu X, et al. Transcriptional control of dendritic cell developmentJ. The Annual

52、 Review of Immunology, 2016, 34:93-119.42 Schlitzer A, McGovern N, Teo P, et al. IRF4 transcription factor-dependent CD11b+ dendritic cells in human and mouse control mucosal IL-17 cytokine responsesJ. Immunity, 2013, 38(5):970-983.43 Plantinga M, Guilliams M, Vanheerswynghels M, Deswarte K, et al.

53、Conventional and monocyte-derived CD11b(+) dendritic cells initiate and maintain T helper 2 cell-mediated immunity to house dust mite allergenJ. Immunity, 2013, 38(2):322-335.44 Langlet C, Tamoutounour S, Henri S, et al. CD64 expression distinguishes monocyte-derived and conventional dendritic cells

54、 and reveals their distinct role during intramuscular immunizationJ. The Journal of Immunology, 2012, 188(4):1751-1760.45 Guilliams M, Dutertre C A, Scott C L, et al. Unsupervised high-dimensional analysis aligns dendritic cells across tissues and speciesJ. Immunity, 2016, 45(3):669-684.46 Blasius A

55、 L, Giurisato E, Cella M, et al. Bone marrow stromal cell antigen 2 Is a specific marker of type I IFN-producing cells in the naive mouse, but a promiscuous cell surface antigen following IFN stimulationJ. The Journal of Immunology, 2006, 177(5):3260-3265.47 Zhang J, Raper A, Sugita N, et al. Charac

56、terization of siglec-H as a novel endocytic receptor expressed on murine plasmacytoid dendritic cell precursorsJ. Blood, 2006, 107(9):3600-3608.48 Wittamer V, Bertrand J Y, Gutschow P W, et al. Characterization of the mononuclear phagocyte system in zebrafishJ. Blood, 2011, 117(26):7126-7135.49 Lovy

57、 J, Wright G M, Speare D J, et al. Comparative ultrastructure of Langerhans-like cells in spleens of ray-finned fishes (Actinopterygii)J. Journal of Morphology, 2010, 271(10):1229-1239.50 Shao T, Zhu L Y, Nie L, et al. Characterization of surface phenotypic molecules of teleost dendritic cellsJ. Developmental Comparative Immunology, 2015, 49(1):38-43.51 Aghaallaei N, Bajoghli B, Schwarz H, et al. Characterization of mononuclear phagocytic cells in medaka fish transgenic for a cxcr3a:gfp reporterJ. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Uni

溫馨提示

  • 1. 本站所有資源如無特殊說明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請下載最新的WinRAR軟件解壓。
  • 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶所有。
  • 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁內(nèi)容里面會有圖紙預(yù)覽,若沒有圖紙預(yù)覽就沒有圖紙。
  • 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
  • 5. 人人文庫網(wǎng)僅提供信息存儲空間,僅對用戶上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護(hù)處理,對用戶上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對任何下載內(nèi)容負(fù)責(zé)。
  • 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當(dāng)內(nèi)容,請與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
  • 7. 本站不保證下載資源的準(zhǔn)確性、安全性和完整性, 同時也不承擔(dān)用戶因使用這些下載資源對自己和他人造成任何形式的傷害或損失。

評論

0/150

提交評論