


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文檔簡介
第六章基因的轉(zhuǎn)移與重組體的篩選和鑒定第1頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一一、粘性末端的連接DNA連接酶把相互靠近的5’端磷酸與3’-OH連到一起單酶切、雙酶切第一節(jié)DNA的體外重組DNA的體外重組:將目的基因與載體連接,這種重新組合的DNA稱為重組DNA。第2頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(一)直接連接T4DNA連接酶雖然能連接平末端,但效率很低,只有粘性末端的1~10%。5’5’5’5’3’3’3’3’-OH-OH-P-PP-P-HO-HO-5’3’-OH-PP-HO-5’3’二、平末端(bluntend)的連接第3頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(1)同聚加尾法(二)人工加尾形成“粘性末端”DNA末端轉(zhuǎn)移酶能在沒有模板的情況下給DNA的3’-OH端加上脫氧核苷酸。①原理:分別給載體和插入片斷加上互補(bǔ)的核苷酸。②加尾-堿基互補(bǔ)第4頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一④缺點(diǎn):③優(yōu)點(diǎn):能把任何片段連接起來操作繁瑣;外源片段難以回收;同聚物尾巴影響外源基因表達(dá)。非酶切位點(diǎn)第5頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(2)銜接物(linker)連接Linker:用化學(xué)合成法合成的一段10-12bp的,具有一個或數(shù)個限制性內(nèi)切酶識別位點(diǎn)的平末端雙鏈寡核苷酸GGAATTCCCCTTAAGGEcoRIlinker:(二)人工加尾形成“粘性末端”第6頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(1)多核苷酸激酶處理(2)T4連接酶連接(3)限制性內(nèi)切酶消化(4)目的片段與載體連接第7頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(二)人工加尾形成“粘性末端”(3)DNA接頭(adapter)連接法①adapter一頭平末端、另一頭粘性末端(某種酶切位點(diǎn)序列)Blunt-endedDNA5’p-GATCCCGG-OH3’3’HO-GGCC-p5’BamHIadapterP--P5‘p-GATCCCGG-GGCC--CCGG-GGCCCTAG-P5’第8頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一接頭與接頭以粘末端連接,影響與DNA片段的連接②優(yōu)點(diǎn):連上后就能用。③缺點(diǎn):先用小牛腸堿性磷酸酶(CIP)處理接頭,水解掉其5’端的磷酸,防止自我連接。④防止自我連接5‘p-GATCCCGG-
GGCC-CCGGGGCCCTAG-p5’第9頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一Blunt-endedDNA5’p-GATCCCGG-3’
GGCC-p5’BamHIadapterP--P
5’HO-GATCCCGG-GGCC
CCGG-GGCCCTAG-OH5’5’HO-GATCCCGG3’GGCC-OH5’nick缺口nick缺口HO--OHCIP處理T4ligase雖然有缺口,但仍然能與DNA片斷連接T4多核苷酸激酶處理使5’磷酸化第10頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一三、PCR產(chǎn)物的連接1.在引物的5’端設(shè)計(jì)酶切位點(diǎn)符合載體的多克隆位點(diǎn);(1)設(shè)計(jì)原則(2)帶酶切位點(diǎn)的引物的結(jié)構(gòu)3’端15~20bp與模板互補(bǔ);5’端內(nèi)切酶識別序列+保護(hù)堿基避免與所擴(kuò)增的DNA片斷內(nèi)部酶切位點(diǎn)重復(fù)。第11頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一帶酶切位點(diǎn)的PCR產(chǎn)物GCAGAATTC
PCR產(chǎn)物5’--3’CCTAGGCGC
PCR產(chǎn)物-5’3’-CGTCTTAAGGGATCCGCGEcoRI位點(diǎn)BamHI位點(diǎn)AATTC
PCR產(chǎn)物5’--3’CCTAG
PCR產(chǎn)物-5’3’-GGEcoRIBamHI兩頭各有一個粘性末端!第12頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一AAdNTPTTdTTPTaqDNA聚合酶載體PCR產(chǎn)物TATA三、PCR產(chǎn)物的連接2.與T載體直接連接第13頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一第二節(jié)重組體導(dǎo)入受體細(xì)胞一、重組DNA導(dǎo)入大腸桿菌(一)轉(zhuǎn)化(transformation)大腸桿菌捕獲質(zhì)粒DNA的過程。(三)轉(zhuǎn)染(transfection)受體菌直接捕獲噬菌體DNA的過程。(二)轉(zhuǎn)導(dǎo)(transduction)借助噬菌體把外源DNA導(dǎo)入細(xì)菌的過程。第14頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一二、重組DNA導(dǎo)入真核細(xì)胞(一)導(dǎo)入酵母細(xì)胞原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化堿金屬離子介導(dǎo)的完整細(xì)胞轉(zhuǎn)化PEG1000轉(zhuǎn)化法電擊法(二)導(dǎo)入植物細(xì)胞(三)導(dǎo)入動物細(xì)胞第15頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一1.利用原生質(zhì)體進(jìn)行轉(zhuǎn)化
酵母原生質(zhì)體感受態(tài)酶去壁CaCl2
PEG插入外源基因的載體共轉(zhuǎn)化:將兩個以上的基因同時導(dǎo)入感受態(tài)細(xì)胞的方法轉(zhuǎn)化轉(zhuǎn)化細(xì)胞達(dá)原生質(zhì)體總數(shù)的1%~2%,轉(zhuǎn)化率受再生率影響共轉(zhuǎn)化的原生質(zhì)體占轉(zhuǎn)化子總數(shù)的25%~33%第16頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一
酵母0.1mol/LLiCl處理感受態(tài)2.堿金屬離子介導(dǎo)的完整細(xì)胞轉(zhuǎn)化插入外源基因的載體40%PEG4000熱激涂布選擇性平板,篩選轉(zhuǎn)化子
吸收線性DNA能力明顯大于環(huán)狀DNA,兩者相差80倍轉(zhuǎn)化率:103個
/g
DNA;共轉(zhuǎn)化現(xiàn)象極少第17頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一4.電擊轉(zhuǎn)化(1)適于原生質(zhì)體和完整細(xì)胞(2)轉(zhuǎn)化率高,105個/gDNA(3)單鏈轉(zhuǎn)化率高于雙鏈單鏈含有酵母復(fù)制子可轉(zhuǎn)化為雙鏈并復(fù)制,無復(fù)制子可同源整合到受體菌染色體上缺點(diǎn):需要特定儀器,成本較高3.PEG1000轉(zhuǎn)化PEG處理酵母細(xì)胞,可獲得類感受態(tài),用于轉(zhuǎn)化第18頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一二、重組DNA導(dǎo)入真核細(xì)胞(一)導(dǎo)入酵母細(xì)胞載體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化(農(nóng)桿菌介導(dǎo))DNA直接導(dǎo)入(基因搶法、電擊法等)種質(zhì)系統(tǒng)法(花粉管通道法等)(二)導(dǎo)入植物細(xì)胞(三)導(dǎo)入動物細(xì)胞第19頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一(二)導(dǎo)入植物細(xì)胞1.農(nóng)桿菌介導(dǎo)的Ti質(zhì)粒遺傳轉(zhuǎn)化方法將目的基因插入到載體的T-DNA區(qū),形成重組DNA將重組DNA轉(zhuǎn)入含有Vir致病基因的農(nóng)桿菌通過農(nóng)桿菌侵染植物外植體將含有外源目的基因的T-DNA整合到植物細(xì)胞基因組中,獲得轉(zhuǎn)基因植株第20頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一在飼養(yǎng)平皿的濾紙上培養(yǎng)2天葉盤法的具體操作第21頁,共24頁,2023年,2月20日,星期一又稱生物彈擊法、微彈轟擊法,借助高速金屬微粒將DNA分子引入活細(xì)胞的轉(zhuǎn)化技術(shù)。DNA1.2m鎢彈頭吸附金屬微粒加速,進(jìn)入受體細(xì)胞基因槍裝入
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