提取基因組和原理

關(guān)于提取基因組和原理第1頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月破膜：釋放出目的核酸分子分離：通過酶、有機(jī)溶劑、調(diào)節(jié)pH值、離心等手段得到粗制品純化：去除雜質(zhì)，純化目的核酸。三個(gè)過程：

破膜、分離、純化第2頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月ULtraPureTMgDNA快速抽提試劑盒在高鹽狀態(tài)下，DNA純化樹脂ULtraPureTM專一性地吸附DNA;在低鹽或水溶液狀態(tài)下,DNA被洗脫下來第3頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月二、試劑純化樹脂（于GN結(jié)合液中）GN結(jié)合液漂洗液離心純化柱（空柱子）無水乙醇TE緩沖液：Tris-HCl（pH7.6)Tris:三羥甲基氨基甲烷EDTA（pH8.0)乙二胺四乙酸第4頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月三、操作過程1、混勻全血，1ml樹脂中加0.5ml全血,顛倒混勻5-6次。室溫下溫育3分鐘，其間顛倒混勻1次，5，000rpm離心3秒，棄上清。2、加入1mlGN結(jié)合液，懸浮上述樹脂，顛倒混勻，5，000rpm離心3秒，棄上清。3、取0.5ml漂洗液漂洗樹脂兩次,顛倒混勻，5，000rpm離心3秒，棄上清。第5頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月如果樹脂仍然呈黃色或褐色，重復(fù)3步1-2次。4、加入0.8ml無水乙醇,懸浮樹脂,裝入離心純化柱,13,000rpm離心1分鐘,倒掉乙醇,再離心1分鐘,盡量除盡乙醇。5、將純化柱套入一個(gè)干凈的1.5ml離心管中，加100μlTE于純化樹脂上（不能粘在管壁上），室溫下放置3分鐘，13,000rpm離心2分鐘。第6頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月6、收集離心管中洗脫下來的gDNA，取2μl電泳（1%瓊脂糖，120V，20分鐘）檢測。其余-20℃保存?zhèn)溆?。注意：離心時(shí)保持平衡。7、紫外分光光度計(jì)測量核算的濃度及純度。（測A260與A280值）第7頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月實(shí)驗(yàn)前注意事項(xiàng):1、所有微量離心管(eppdorf)、槍頭（tip）必須高壓滅菌。2、微量移液器的使用：看清刻度、輕旋、輕放。3、取不同的試劑、樣品須更換tip。4、純化樹脂（于GN結(jié)合液中）為灰褐色粉狀物質(zhì)，靜置時(shí)沉淀于瓶底，使用時(shí)要充分混勻。5、室溫低于25℃時(shí)，純化樹脂與GN結(jié)合液可能出現(xiàn)結(jié)晶或鹽析，請(qǐng)務(wù)必預(yù)熱，完全溶解后使用。第8頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月QuickGeneMini80與DNA全血試劑盒

一、樣本抽提前儀器安裝準(zhǔn)備1正確安裝好各個(gè)儀器配件，接上電源。2把試劑盒內(nèi)的廢液管、收集管和帶膜的套管放在儀器配件的正確位置上二、DBS試劑盒第一次使用前準(zhǔn)備工作1向EDB干粉中添加3.3ml無菌水，混勻室溫靜置30min2向WDB緩沖液中加入160ml無水乙醇第9頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月

三、樣本處理及血液基因組DNA純化

1.取一新的15ml或50ml離心管，依次加入300mlEDB溶液、2ml全血、2.5mlLDB溶液

2.上下顛倒混勻10次，>2500rpm渦旋震蕩15sec

3.56℃水浴5min

4.加入2.5ml無水乙醇

5.上下顛倒混勻10次，>2500rpm渦旋震蕩15sec

6.將處理過的全血倒入QuickGene-610L的帶膜的套管內(nèi)

7.上機(jī)，第一次抽提選擇模式“DNAWHOLEBLOOD”，按“start”開始

8.第二次抽提選擇模式“INSOLUTIONA”

第10頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月四、測DNA濃度與純度五、將抽提好的DNA立即使用或保存于-20℃冰箱中，按實(shí)驗(yàn)室說明丟棄其他管子。第11頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR原理第12頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR定義:polymerasechainreaction，聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng).簡單的說，PCR就是利用TaqDNA聚合酶對(duì)特定基因做體外或試管內(nèi)(InVitro)的大量合成?；旧纤抢煤铣桑模危恋腡aqDNA聚合酶進(jìn)行專一性的連鎖復(fù)制.目前常用的技術(shù),可以將一段基因復(fù)制為原來的一百億至一千億倍。第13頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR的要件一、基本原理PCR技術(shù)是利用DNA聚合酶在體外條件下,催化一對(duì)引物之間特異DNA片段合成的基因擴(kuò)增技術(shù)。包括三個(gè)基本過程：第14頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月

DNA的變性(denaturation)：

在某些理化因素作用下，DNA分子內(nèi)堿基對(duì)之間的氫鍵斷裂，使規(guī)則有序的雙螺旋結(jié)構(gòu)變?yōu)椴灰?guī)則無序的單鏈線團(tuán)樣結(jié)構(gòu)的過程。第15頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月第16頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月解鏈溫度（融解溫度，Tm）

(meltingtemperature)： 使50%的DNA發(fā)生變性時(shí)的環(huán)境溫度。

DNA的變性從開始解鏈到完全解鏈?zhǔn)窃谝粋€(gè)相當(dāng)窄的溫度內(nèi)完成的。第17頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月第18頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月增色效應(yīng)：

DNA變性后對(duì)260nm紫外光收增加的現(xiàn)象。第19頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月DNA的復(fù)性（renaturation)：

在適當(dāng)條件下，變性DNA的兩條互補(bǔ)鏈可再恢復(fù)成天然的雙螺旋結(jié)構(gòu)的過程。

熱變性的DNA經(jīng)緩慢冷卻后即可復(fù)性，此過程稱為退火(annealing)。第20頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月第21頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月減色效應(yīng)：變性DNA復(fù)性后對(duì)260nm紫外光吸收減少的現(xiàn)象。第22頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月1.常用的變性方法：

①熱變性

②酸堿變性

③化學(xué)試劑變性

第23頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月2.影響復(fù)性的因素

①序列簡單的分子復(fù)性快，如poly(dT)和poly(dA)識(shí)別快②DNA片段愈大，擴(kuò)散速度愈低，復(fù)性慢③離子強(qiáng)度↑→有利于復(fù)性④DNA濃度↑→復(fù)性↑

Tm值的估算①<20bpTm=4（G+C）+2（A+T）②>20bpTm=69.3+0.41(G+C)%③ Tm=81.5℃+16.6lgM+0.41（G+C）% -500/n-0.61×（甲酰胺%）

第24頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR的基本成分：1熱穩(wěn)定DNA聚合酶：催化模板依賴的DNA合成。熱穩(wěn)定DNA聚合酶的選擇：主要依據(jù)合成大片段DNA產(chǎn)物需要的保真度、效率及合成能力而決定。常規(guī)PCR，TaqDNA聚合酶是常用酶。2一對(duì)引導(dǎo)DNA合成的寡核苷酸引物：設(shè)計(jì)目的：獲得高產(chǎn)率的目的擴(kuò)增物，抑制非特異序列的擴(kuò)增。第25頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月3脫氧核苷三磷酸（dNTP）：標(biāo)準(zhǔn)PCR反應(yīng)體系中包含4中等摩爾濃度的脫氧核苷三磷酸。4二價(jià)陽離子：常用鎂離子用于激活，適當(dāng)增加鎂離子可減少非特異性引導(dǎo)。5維持PH值的緩沖液：室溫下標(biāo)準(zhǔn)緩沖液的PH值為8.3~8.8之間，72℃時(shí)反應(yīng)體系的PH值下降1個(gè)多單位，PH值接近7.2。第26頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月6一價(jià)陽離子：標(biāo)準(zhǔn)PCR緩沖液內(nèi)包含有50mmol/LKCl，適于大于500bp長度的DNA片段。提高KCl濃度在70~100mmol/L，適于較短的DNA片段。7模板DNA：當(dāng)使用高分子量的DNA（>10kb）做模板時(shí)，如用限制性內(nèi)切酶先行消化（此酶不應(yīng)切割靶序列）則擴(kuò)增效果更好。第27頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月基本PCR中寡核苷酸引物的設(shè)計(jì)原則：A堿基組成：G+C含量應(yīng)在40%和60%之間，4種堿基在引物中分配均勻—沒有多聚嘌呤或多聚嘧啶的序列，并且沒有二核苷酸重復(fù)序列。B長度：引物中與模板互補(bǔ)的區(qū)域應(yīng)該為18~25個(gè)核苷酸長度。上下游引物的長度差別不能大于3bp。C不能有大于3bp的反向重復(fù)序列或自身互補(bǔ)序列存在。這種序列可形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)，如果這種結(jié)構(gòu)在PCR條件下穩(wěn)定，它會(huì)非常有效地阻止寡核苷酸和靶DNA之間的復(fù)性。第28頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月D解鏈溫度（Tm）：兩個(gè)引物的Tm值相差不能大于5℃，擴(kuò)增產(chǎn)物的Tm值與引物的Tm值相差不能大于10℃。保證擴(kuò)增產(chǎn)物在每個(gè)PCR循環(huán)可有效變性。E3`末端：3`末端堿基最好是G或C，但不應(yīng)是NNCG或NNGC。因?yàn)槟┒薌C含量高可促進(jìn)發(fā)夾結(jié)構(gòu)的形成，還可能產(chǎn)生引物二聚體。F上下游引物的互補(bǔ)性：一個(gè)引物的3`末端序列不允許結(jié)合到另一個(gè)引物的任何位點(diǎn)上，避免引物二聚體的形成和擴(kuò)增。第29頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR溫度條件的設(shè)計(jì)：1模板的熱變性溫度和時(shí)間：雙鏈DNA模板的變性溫度由其G+C含量決定。DNA分子越長，兩條鏈完全分開所需的時(shí)間也越長。應(yīng)用TaqDNA聚合酶時(shí)，變性一般在94~95℃下，這是TaqDNA聚合酶進(jìn)行30或以上PCR循環(huán)而活力不致受到過多損失所能耐受的極限溫度。第30頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月2引物和模板DNA的復(fù)性：復(fù)性溫度過高，寡核苷酸引物不能與模板很好復(fù)性，擴(kuò)增效率降低；復(fù)性溫度太低，非特異性DNA片段擴(kuò)增增加。3寡核苷酸引物的延伸：常在熱穩(wěn)定DNA聚合酶的催化DNA合成的最適溫度下進(jìn)行。對(duì)TaqDNA聚合酶來說最適溫度是72~78℃。第31頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR反應(yīng)特點(diǎn)特異性強(qiáng)靈敏度高簡便、快速對(duì)標(biāo)本的純度要求低第32頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月特異性強(qiáng)關(guān)鍵：引物與模板的正確結(jié)合引物與模板的結(jié)合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對(duì)原則的合成反應(yīng)的忠實(shí)性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應(yīng)中模板與引物的結(jié)合（復(fù)性）可以在較高的溫度下進(jìn)行，結(jié)合的特異性大大增加，被擴(kuò)增的靶基因片段也就能保持很高的正確度。再通過選擇特異性和保守性高的靶基因區(qū)，其特異性程度就更高第33頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR反應(yīng)的特異性決定因素引物與模板DNA特異正確的結(jié)合；堿基配對(duì)原則；TaqDNA聚合酶合成反應(yīng)的忠實(shí)性；靶基因的特異性與保守性

第34頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月靈敏度高PCR產(chǎn)物的生成量是以指數(shù)方式增加的，能將皮克(pg=10-12)量級(jí)的起始待測模板擴(kuò)增到微克(ug=10-6)水平從100萬個(gè)細(xì)胞中檢出一個(gè)靶細(xì)胞在病毒的檢測中，PCR的靈敏度可達(dá)3個(gè)RFU(空斑形成單位)在細(xì)菌學(xué)中最小檢出率為3個(gè)細(xì)菌第35頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月簡便、快速PCR反應(yīng)用耐高溫的TaqDNA聚合酶，一次性地將反應(yīng)液加好后，即在DNA擴(kuò)增液和水浴鍋上進(jìn)行變性-退火-延伸反應(yīng)，一般在2~4小時(shí)完成擴(kuò)增反應(yīng)。擴(kuò)增產(chǎn)物一般用電泳分析，不一定要用同位素，無放射性污染、易推廣

第36頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月對(duì)標(biāo)本的純度要求低不需分離病毒或細(xì)菌及培養(yǎng)細(xì)胞，DNA粗制品及總RNA均可作為擴(kuò)增模板可直接用臨床標(biāo)本如血液、體腔液、洗嗽液、毛發(fā)、細(xì)胞、活組織等粗制的DNA擴(kuò)增檢測第37頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月熱啟動(dòng)PCRTouch-downPCRRT-PCR兼并引物PCR巢氏PCR反向PCR不對(duì)稱PCR原位PCR連接酶鏈反應(yīng)RACE-PCRAFLP免疫-PCR(immuno-PCR)MSP甲基化特異PCR第38頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月1）不對(duì)稱PCR

目的：擴(kuò)增產(chǎn)生特異長度的單鏈DNA。方法：采用兩種不同濃度的引物。分別稱為限制性引物和非限制性引物,其最佳比例一般是0.01∶0.5μM,關(guān)鍵是限制性引物的絕對(duì)量。用途：制備核酸序列測定的模板；制備雜交探針；基因組DNA結(jié)構(gòu)功能的研究

PCR的類型第39頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月

高濃度引物低濃度引物第40頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月2)反向PCR(reversePCR)

用反向的互補(bǔ)引物來擴(kuò)增兩引物以外的DNA片段，對(duì)某個(gè)已知DNA片段兩側(cè)的未知序列進(jìn)行擴(kuò)增。

未知序列未知序列已知序列第41頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月已知序列未知序列未知序列限制酶限制酶連接酶第42頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月3）多重PCR（復(fù)合PCR）用于檢測特定基因序列的存在或缺失。第43頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月電泳引物12341234第44頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月4）LP-PCR（Labelledprimers)利用同位素、熒光素等對(duì)ＰＣＲ引物進(jìn)行標(biāo)記,用以直觀地檢測目的基因。特別適合大量臨床標(biāo)本的基因診斷可同時(shí)檢測多種基因成分第45頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月標(biāo)記引物ＰＣＲ觀察PCR產(chǎn)物第46頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月5）錨定PCR（anchoredPCR,A-PCR）

錨定PCR首先合成第一鏈cDNA,然后再添加一同聚物尾（polydG),與同聚物尾配對(duì)的3’錨定引物（帶有限制性內(nèi)切位點(diǎn)polydC)一起作PCR擴(kuò)增第47頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月cDNA末端核酸轉(zhuǎn)移酶3’GG…GG5’CC…CC錨定引物3’GG…GG5’CC…CC3’GG…GGCC…CC第48頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月6）PCR固相分析法模板生物素化引物PCR擴(kuò)增探針親和固相介質(zhì)檢測探針信號(hào)可用于基因芯片的制作第49頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月7）原位ＰＣＲ原位聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（InStillPCR,Is－PCR）是由Haase等于1990年首創(chuàng)。它是利用完整的細(xì)胞作為一個(gè)微小的反應(yīng)體系來擴(kuò)增細(xì)胞內(nèi)的目的片段,在不破壞細(xì)胞的前提下,利用一些特定的檢測手段來檢測細(xì)胞內(nèi)的擴(kuò)增產(chǎn)物。直接用細(xì)胞涂片或石蠟包埋組織切片在單個(gè)細(xì)胞中進(jìn)行ＰＣＲ擴(kuò)增。可進(jìn)行細(xì)胞內(nèi)定位和檢測病理切片中含量較少的靶序列。第50頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月操作步驟1.細(xì)胞或組織固定：細(xì)胞經(jīng)固定和乙醇通透化處理后便適于一般PCR試劑（包括引物和Taq酶）進(jìn)入2.PCR擴(kuò)增細(xì)胞內(nèi)目的片段3.原位雜交檢測擴(kuò)增產(chǎn)物A.陽性對(duì)照B.陰性對(duì)照C.原位檢測mRNA表達(dá)第51頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月8）ＲＴ－ＰＣＲ逆轉(zhuǎn)錄酶ＤＮＡ聚合酶mRNAcDNA雜化雙鏈PCR擴(kuò)增第52頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月9)熒光定量PCR（real-timePCR)

通過熒光染料或熒光標(biāo)記的特異性的探針,對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行標(biāo)記跟蹤,實(shí)時(shí)在線監(jiān)控反應(yīng)過程,結(jié)合相應(yīng)的軟件可以對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析,計(jì)算待測樣品的初始模板量。內(nèi)摻式染料 SYBRGreenI序列特異性探針 Taqman MolecularBeacons DualProbes(FRET)引物特異性探針

Amplifluor(Intergen)第53頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月5’3’5’3’SGSGSGSGSGExcitationEmissionSYBR-GreenI

第54頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀梯度PCR儀普通PCR儀第55頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月PCR的運(yùn)用

PCR除了是一個(gè)診斷工具外，更重要的是它有廣泛的運(yùn)用。PCR本身可直接用來鑒定特定基因的存在與否，也可以用來偵測基因是否有異常(Genemutation,deletion,andrearrangement…)。例如，在醫(yī)學(xué)上對(duì)遺傳疾病或腫瘤癌癥的診斷及預(yù)后的評(píng)估；對(duì)細(xì)菌、病毒及霉菌感染的診斷。它也可成為一個(gè)生產(chǎn)線進(jìn)而大量復(fù)制特定的基因進(jìn)行基因密碼的讀取(DNAsequencing)及其它的運(yùn)用。第56頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月舉凡對(duì)生物標(biāo)本及法醫(yī)學(xué)上的樣本鑒定，從單一毛發(fā)、一只精蟲或一滴血液、唾液來找出兇手。也可以做DNA指紋(Fingerprints)比對(duì)幫助親子關(guān)系的鑒定。PCR更可以用于器官移植組織兼容性HLA的分析。另外在演化上的分析，經(jīng)由PCR的運(yùn)用也產(chǎn)生重大的進(jìn)展。近來，在生物醫(yī)學(xué)的研究上，特別是細(xì)胞間訊息的傳遞分子，諸如介白質(zhì)(Interleukines)及各種生長因子(Growthfactors)基因的表現(xiàn)都可用PCR來進(jìn)行質(zhì)與量的分析。第57頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月凝膠電泳依據(jù)制備凝膠的材料，凝膠電泳可被分成兩個(gè)亞類：瓊脂糖凝膠電泳和聚丙烯酰胺凝膠電泳。相比之下，瓊脂糖凝膠在分離度上比聚丙烯酰胺差一些，而在分離范圍上優(yōu)于聚丙烯酰胺。一般，瓊脂糖凝膠適用于分離大小在0.2～50kb范圍內(nèi)的DNA片段。

第58頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月瓊脂糖凝膠電泳一、基本原理：核酸分子是兩性解離分子，在高于其等電點(diǎn)的電泳緩沖液中（pH8.0-8.3)，其堿基不解離，而磷酸全部解離，核酸分子帶負(fù)電荷，向正極移動(dòng)。不同大小和構(gòu)象的核酸分子所帶電荷量大致相同。在自由泳動(dòng)時(shí)難以分開，采用瓊脂糖凝膠作為電泳支持介質(zhì)，發(fā)揮分子篩功能，使得分子大小和構(gòu)象不同的核酸分子的遷移率出現(xiàn)較大差異，從而達(dá)到分離目的。第59頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月二、主要試劑瓊脂糖6X上樣緩沖液（loadingbuffer）10mg/ml溴已錠(EB)10倍濃縮的TBE電泳緩沖液配方如下:Tris

108g

EDTA

9.3g

硼酸55g用蒸餾水定容至1000mL，調(diào)節(jié)pH為8.0～8.2備用，使用時(shí)需稀釋10倍第60頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月表1-1瓊脂糖凝膠濃度與分離DNA分子大小的范圍瓊脂糖凝膠濃度(%)線型DNA分子的分離范圍(千堿基對(duì)，kb)0.35～600.61～200.70.8～100.90.5～71.20.9～61.50.2～42.00.1～3第61頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月電泳緩沖液是電泳場中的導(dǎo)體，它的種類、pH值及離子強(qiáng)度直接影響電泳的效率。常用的有Tris-醋酸（TAE）、Tris-硼酸（TBE）Tris-磷酸（TPE）。第62頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月6X上樣緩沖液（Loadingbuffer）組成：0.25%溴酚藍(lán)、

0.25%二甲苯青、40%蔗糖作用：能夠增加樣品密度，確保DNA均勻沉入加樣孔內(nèi)；能夠在電泳中形成肉眼可見的藍(lán)紫色和藍(lán)色指示帶，從而幫助預(yù)測核酸電泳的速度和位置；能夠使樣品呈現(xiàn)藍(lán)紫色，使加樣操作更方便。

第63頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月溴化乙錠（EB）（染色劑）核酸電泳后，需要染色才能在紫外線下觀察到帶型。溴化乙錠(EB)是一種熒光染料，有劇毒，因此操作時(shí)要非常小心。EB可嵌入DNA雙鏈的堿基之間，在紫外線激發(fā)下能發(fā)出橙紅色熒光，見光易分解,棕色瓶保存于4℃,使用終濃度0.5μg/mL。第64頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月三、操作步驟1、選擇合適的水平式電泳儀，調(diào)節(jié)電泳槽平面至水平，檢查穩(wěn)壓電源與正負(fù)極的線路。2、用透明膠帶紙將tank兩端封好，選擇孔徑大小適合的梳板，垂直架于tank的一端。3、制備瓊脂糖凝膠，稱取適量瓊脂糖，溶解在0.5XTBE中,置微波爐中加熱,均勻溶解瓊脂糖。第65頁，課件共72頁，創(chuàng)作于2023年2月4、加入EB（0.5μg/mL），搖勻，待凝膠冷卻至50℃左右，倒入tank中，室溫下冷卻凝固。避滅產(chǎn)生氣泡。5、撕去兩端的透明膠帶紙，將tank和凝膠一起放入電泳槽內(nèi)。在電泳槽