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PAGEPAGE3實(shí)驗(yàn)二瓊脂糖凝膠電泳實(shí)驗(yàn)一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康膶W(xué)習(xí)瓊脂糖凝膠電泳的基本原理;
(2)掌握使用水平式電泳儀的方法;
(3)學(xué)習(xí)在含有甲醛的凝膠上進(jìn)行RNA電泳的方法。二、實(shí)驗(yàn)原理瓊脂糖凝膠電泳是基因工程實(shí)驗(yàn)室中分離鑒定核酸的常規(guī)方法。核酸是兩性電解質(zhì),其等電點(diǎn)為pH2-2.5,在常規(guī)的電泳緩沖液中(pH約8.5),核酸分子帶負(fù)電荷,在電場(chǎng)中向正極移動(dòng)。核酸分子在瓊脂糖凝膠中泳動(dòng)時(shí),具有電荷效應(yīng)和分子篩效應(yīng),但主要為分子篩效應(yīng)。三、試劑與器材(一)材料
電泳儀、水平電泳槽、樣品梳子、瓊脂糖等
(二)試劑
1、50×TAE(1000mL):242gTris,57.1mL冰醋酸,18.6gEDTA。
2、EB溶液:100mL水中加入1g溴化乙啶,磁力攪拌數(shù)小時(shí)以確保其完全溶解,分裝,室溫避光保存。
3、DNA加樣緩沖液:0.25%溴酚藍(lán),0.25%二甲苯青,50%甘油(w/v)。
①增加樣品比重,以確保DNA均勻沉入加樣孔內(nèi)。
②形成肉眼可見的指示帶,預(yù)測(cè)核酸電泳的速度和位置。
③使樣品呈色,使加樣操作更方便。四、操作方法(一)常規(guī)的水平式瓊脂糖電泳
制備瓊脂糖凝膠:按照被分離DNA分子的大小,決定凝膠中瓊脂糖的百分含量;一般情況下,可參考下表:
瓊脂糖的含量(%)分離線狀DNA分子的有效范圍(Kb)
0.360-5
0.620-1
0.710-0.8
0.97-0.5
1.26-0.4
1.54-0.2
2.03-0.11.凝膠制備制備0.8%瓊脂糖凝膠。稱取適量瓊脂糖加入20mL0.5×TBE,加熱至瓊脂糖全部熔化,冷卻至50-60℃時(shí),加入EB至終濃度0.5μg/mL。緩慢倒入膠板,待膠凝固后拔出梳子。
注:膠板的制備:將膠槽置于制膠板上,插上樣品梳子,注意觀察梳子齒下緣應(yīng)與膠槽底面保持1mm左右的間隙,待膠溶液冷卻至502.加樣取10μlDNA樣液與2μl上樣buffeer混勻,用微量移液器小心加入樣品槽。
注:點(diǎn)樣板或薄膜上混合DNA樣品和上樣緩沖液,上樣緩沖液的最終稀釋倍數(shù)應(yīng)不小于1X。用10μL微量移液器分別將樣品加入膠板的樣品小槽內(nèi),每加完一個(gè)樣品,應(yīng)更換一個(gè)加樣頭,以防污染,加樣時(shí)勿碰壞樣品孔周圍的凝膠面。(注意:加樣前要先記下加樣的順序和點(diǎn)樣量)。
3.電泳:電泳接通電源,切記靠近加樣孔的一端為負(fù),電壓為1~5V/cm(長(zhǎng)度以兩個(gè)電極之間的距離計(jì)算),待溴酚蘭移動(dòng)到一定位置,停止電泳。注:加樣后的凝膠板立即通電進(jìn)行電泳,DNA的遷移速度與電壓成正比,最高電壓不超過5V/cm。當(dāng)瓊脂糖濃度低于0.5%,電泳溫度不能太高。樣品由負(fù)極(黑色)向正極(紅色)方向移動(dòng)。電壓升高,瓊脂糖凝膠的有效分離范圍降低。當(dāng)溴酚藍(lán)移動(dòng)到距離膠板下沿約1cm處時(shí),停止電泳。
4.觀察和拍照:電泳完畢,取出凝膠。在波長(zhǎng)為254nm的紫外燈下觀察染色后的或已加有EB的電泳膠板。DNA存在處顯示出肉眼可辨的桔紅色熒光條帶。于凝膠成像系統(tǒng)中拍照并保存之。注:EB是強(qiáng)誘變劑并有中等毒性,易揮發(fā),配制和使用時(shí)都應(yīng)戴手套,并且不要把EB灑到桌面或地面上。凡是沾污了EB的容器或物品必須經(jīng)專門處理后才能清洗或丟棄。簡(jiǎn)單處理方法為:加入大量的水進(jìn)行稀釋(達(dá)到0.5mg/mL以下),然后加入0.2倍體積新鮮配制的5%次磷酸(由50%次磷酸配制而成)和0.12倍體積新鮮配制的0.5mol/L的亞硝酸鈉,混勻,放置1天后,加入過量的1mol/L碳酸氫鈉。如此處理后的EB的誘變活性可降至原來的1/200左右。
(2)由于EB會(huì)嵌入到堆積的堿基對(duì)之間并拉長(zhǎng)線狀和帶缺口的環(huán)狀DNA,使DNA遷移率降低。因此,如果要準(zhǔn)確地測(cè)定DNA的分子量,應(yīng)該采用跑完電泳后再用0.5μg/ml的EB溶液浸泡染色的方法。
六、思考題1、附上電泳結(jié)果的圖片并進(jìn)行正確的標(biāo)注(如下圖)
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