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ICS13.060.99DB21水質(zhì)底棲動(dòng)物鑒定DNA條形碼法WaterQuality—IdentificationofMacrobenthos—DNABarcoding2023-08-30發(fā)布遼寧省市場(chǎng)監(jiān)督管理局發(fā)布DB21/T3794—2023 2規(guī)范性引用文件 3術(shù)語(yǔ)和定義 4縮略語(yǔ) 5方法原理 6試劑和材料 7儀器和設(shè)備 8樣品 9分析步驟 10結(jié)果計(jì)算 11質(zhì)量保證與質(zhì)量控制 12廢物處理 13注意事項(xiàng) 附錄A(資料性)序列搜索與比對(duì) 9附錄B(資料性)進(jìn)化樹的構(gòu)建與遺傳距離的計(jì)算 11 DB21/T3794—2023本文件按照GB/T1.1-2020《標(biāo)準(zhǔn)化工作導(dǎo)則第1部分:標(biāo)準(zhǔn)化文件的結(jié)構(gòu)和起草規(guī)則》的規(guī)定起草。請(qǐng)注意本文件的某些內(nèi)容可能涉及專利。本文件的發(fā)布機(jī)構(gòu)不承擔(dān)識(shí)別專利的責(zé)任。本文件由遼寧省生態(tài)環(huán)境廳提出并歸口。本文件起草單位:遼寧省生態(tài)環(huán)境監(jiān)測(cè)中心。本文件主要起草人:丁振軍、李楊、姜永偉、王星蒙、問青春、王秋麗、張爽、胥學(xué)鵬、張崢、盧雁。本文件為首次發(fā)布。本文件發(fā)布實(shí)施后,任何單位和個(gè)人如有問題和意見建議,均可以通過來電和來函等方式進(jìn)行反饋,我們將及時(shí)答復(fù)并認(rèn)真處理,根據(jù)實(shí)際情況依法進(jìn)行評(píng)估及復(fù)審。歸口管理部門通訊地址:遼寧省生態(tài)環(huán)境廳(遼寧省沈陽(yáng)市渾南區(qū)雙園路30甲聯(lián)系電話文件起草單位通訊地址:遼寧省生態(tài)環(huán)境監(jiān)測(cè)中心(遼寧省沈陽(yáng)市渾南區(qū)雙園路30甲-3聯(lián)系電話1DB21/T3794—2023水質(zhì)底棲動(dòng)物鑒定DNA條形碼法警告:EB溶液具有遺傳毒性,操作時(shí)應(yīng)按規(guī)定要求佩戴防護(hù)器具,避免接觸皮膚和衣物。本文件規(guī)定了利用DNA條形碼技術(shù)鑒定底棲動(dòng)物的方法。本文件適用于河流、湖泊和水庫(kù)中底棲動(dòng)物的鑒定。2規(guī)范性引用文件下列文件中的內(nèi)容通過文中的規(guī)范性引用而構(gòu)成本文件必不可少的條款。其中,注日期的引用文件,僅該日期對(duì)應(yīng)的版本適用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。GB/T30989高通量基因測(cè)序技術(shù)規(guī)程HJ710.8生物多樣性觀測(cè)技術(shù)導(dǎo)則淡水底棲大型無脊椎動(dòng)物T/CSES81淡水生物監(jiān)測(cè)環(huán)境DNA宏條形碼法3術(shù)語(yǔ)和定義下列術(shù)語(yǔ)和定義適用于本文件。3.1底棲動(dòng)物macrobenthos指生活史的全部或至少一個(gè)時(shí)期棲息于水體底部或底部基質(zhì)中的不能通過0.5mm(40目)孔徑網(wǎng)篩的無脊椎動(dòng)物。[來源:HJ710.8-2014,3.2,有修改]3.2細(xì)胞色素c氧化酶亞基IcytochromecoxidasesubunitI,COI后生動(dòng)物線粒體基因組上的線粒體細(xì)胞色素c氧化酶亞基I對(duì)應(yīng)的DNA序列。[來源:T/CSES81-2023,3.7,有修改]3.3引物primer在DNA復(fù)制過程中,結(jié)合于模板鏈上并作為復(fù)制延伸的起始位點(diǎn)和/或終止位點(diǎn)的,具有一定長(zhǎng)度和順序的寡核苷酸鏈。[來源:GB/T30989-2014,3.11]3.4退火annealing模板雙鏈DNA經(jīng)熱變性、雙螺旋解開成單鏈后,通過緩慢冷卻到特定溫度,使引物與該模板DNA2DB21/T3794—2023單鏈重新配對(duì),形成新的雙鏈分子的過程稱為退火。3.5聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)polymerasechainreaction,PCR模板DNA先經(jīng)高溫變性為單鏈,在DNA聚合酶和適宜的溫度下,兩條引物分別與模板DNA兩條鏈上的一段互補(bǔ)序列發(fā)生退火,接著在DNA聚合酶的催化下以四種dNTP為底物,使退火引物得以延伸,如此反復(fù)變性、退火和DNA合成這一循環(huán),使位于兩段已知序列之間的DNA片段呈幾何倍數(shù)擴(kuò)增。[來源:GB/T30989-2014,3.14]3.6降落PCRtouchdownPCR,TDPCR一種退火溫度逐漸降低的多循環(huán)PCR反應(yīng)程序。由于前期退火溫度高,引物結(jié)合難度增大,錯(cuò)配幾率降低,目的片段的產(chǎn)率較低但準(zhǔn)確率較高。后期隨著退火溫度的降低,前期積累的正確目的片段會(huì)被大幅擴(kuò)增,使最終產(chǎn)物中目的片段的特異性大幅提高。3.7序列比對(duì)sequencealignment指運(yùn)用特定的算法檢測(cè)兩個(gè)或多個(gè)序列之間的相似性,用于發(fā)現(xiàn)生物序列中的功能、結(jié)構(gòu)和進(jìn)化的信息。3.8遺傳距離geneticdistance遺傳距離指不同的種群或種之間的基因差異的程度,并以數(shù)值進(jìn)行度量。3.9生物大分子序列比對(duì)搜索工具BasicLocalAlignmentSearchTool,BLAST一種基于局部比對(duì)算法的搜索工具,可將輸入的核酸或蛋白質(zhì)序列與數(shù)據(jù)庫(kù)中的已知序列進(jìn)行比對(duì),獲得序列相似度等信息,從而判斷序列的來源或進(jìn)化關(guān)系。3.10分子進(jìn)化遺傳分析工具M(jìn)olecularEvolutionaryGeneticsAnalysis,MEGA一種用于分析物種親緣關(guān)系、分子功能、遺傳進(jìn)化等的工具??梢詫?shí)現(xiàn)序列比對(duì)和調(diào)參建樹等功能。4縮略語(yǔ)下列縮略語(yǔ)適用于本文件。EB——溴化乙錠(Ethidiumbromide)DNA——脫氧核糖核酸(deoxyribonucleicacid)COI——細(xì)胞色素氧化酶亞基I(cytochromecoxidasesubunitI)PCR——聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerasechainreaction)BLAST——生物大分子序列比對(duì)搜索工具(BasicLocalAlignmentSearchTool)MEGA——分子進(jìn)化遺傳分析工具(MolecularEvolutionaryGeneticsAnalysis)DB21/T3794—20235方法原理酚作為蛋白質(zhì)變性劑使蛋白質(zhì)變性,SDS將細(xì)胞裂解,蛋白酶K消化蛋白質(zhì)成多肽,使DNA從蛋白質(zhì)中游離出來。DNA易溶于水,不溶于有機(jī)溶劑,離心后有機(jī)相在下層,DNA存在于上層水相中,蛋白質(zhì)則沉淀于兩相之間,從而分離得到總DNA。PCR反應(yīng)可特異性的擴(kuò)增正向引物和反向引物間的序列,經(jīng)35次循環(huán),目標(biāo)COI序列可被擴(kuò)增約235倍。與DNA結(jié)合的EB會(huì)被紫外光激發(fā)發(fā)出強(qiáng)烈的橙紅色熒光,比未結(jié)合的EB熒光強(qiáng)度高幾十倍,從而擴(kuò)增的COI序列可被檢測(cè)到。獲得的COI序列經(jīng)測(cè)序在NCBI或BOLD等公共數(shù)據(jù)庫(kù)中搜索相似序列。將測(cè)序結(jié)果與搜索得到的序列一起繪制NJ進(jìn)化樹并計(jì)算遺傳距離,一般遺傳距離小于0.02cM的認(rèn)為是同一種。DNA條形碼法鑒定底棲動(dòng)物流程圖見圖1。 圖1DNA條形碼鑒定底棲動(dòng)物流程圖6試劑和材料6.1無菌水:去離子水121℃滅菌。6.2無水乙醇(C2H6O)。6.370%乙醇。6.4乙二胺四乙酸二鈉(Na2EDTA,C10H14N2O8Na2·2H2O)。6.5三羥甲基氨基甲烷(Tris,C4H11NO3)。6.6十二烷基硫酸鈉(SDS,C12H25SO4Na)。6.710%SDS溶液:稱取SDS10g,加入約60mL去離子水,加熱溶解,用濃鹽酸調(diào)節(jié)pH至7.2,去離子水定容至100mL,常溫備用。6.8三氯甲烷(CHCl3)。6.9Tris飽和酚溶液(pH7.7~8.1,市售)。6.10蛋白酶K溶液:400U/mL(市售)。6.11EB儲(chǔ)存液:10mg/mL(市售)。6.12EB工作液:吸取10μLEB儲(chǔ)存液加入200mL去離子水中,混勻,終濃度為0.5μg/mL。6.13瓊脂糖(標(biāo)準(zhǔn)熔點(diǎn))。4DB21/T3794—20236.141%瓊脂糖凝膠:稱取0.3g瓊脂糖,加入30mL去離子水,微波爐加熱至恰好全部熔化,立即倒入制膠槽中,插入制膠梳,臨用現(xiàn)制。可根據(jù)制膠槽大小適當(dāng)調(diào)整瓊脂糖凝膠的制備量。6.151×TE緩沖液:pH緩沖范圍7.5~8.5(市售)。6.1650×TAE緩沖液(市售)。6.171×TAE緩沖液:取20mL50×TAE緩沖液,去離子水定容至1L,常溫備用。pH緩沖范圍7.8~8.8。6.186×蔗糖凝膠上樣緩沖液:含溴酚藍(lán)、EDTA(市售)。6.192×TaqPCRMix預(yù)混液:含TaqDNA聚合酶、dNTP、MgCl2、PCR緩沖液和溴酚藍(lán)(市售)。6.20DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)(含上樣緩沖液,市售100bp~2000bp,包含6條單一DNA條帶,分別為:100bp、250bp、500bp、750bp、1000bp、2000bp。6.21PCR引物:LCO1490(GGTCAACAAATCATAAAGATATTGGHCO2198(TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA)。7儀器和設(shè)備7.1天平:準(zhǔn)確到0.001g。7.2干式恒溫器:56℃可調(diào)。7.3PCR儀:PCR反應(yīng)程序可編輯。7.4水平電泳儀:電壓100V可調(diào)。7.5離心機(jī):12000r/min可調(diào)。7.6凝膠成像儀:具有紫外成像功能。8樣品8.1樣品采集底棲動(dòng)物的采集按照HJ710.8相關(guān)規(guī)定執(zhí)行。8.2樣品保存底棲動(dòng)物樣品采集后,用無水乙醇沖洗干凈,保存于無水乙醇中,冷凍條件下可長(zhǎng)期保存?,F(xiàn)場(chǎng)無冷凍條件的,應(yīng)4℃冷藏保存并盡快送到實(shí)驗(yàn)室轉(zhuǎn)為冷凍保存,冷藏條件保存不應(yīng)超過3天,以防DNA發(fā)生分解。9分析步驟9.1總DNA的提取組織樣本宜取自底棲動(dòng)物肌肉部位,該部位線粒體豐富,易于獲得較好的擴(kuò)增效果??蛇x取底棲動(dòng)5DB21/T3794—2023物個(gè)體腿部或胸部組織,如底棲動(dòng)物個(gè)體較?。ㄈ鐡u蚊幼蟲可將整個(gè)個(gè)體放入EP管中進(jìn)行總DNA提取。取約25mg組織樣本,用無水乙醇反復(fù)清洗數(shù)次,濾紙吸干,放入1.5mLEP管中,加入500μLTE緩沖液(6.15100μL10%SDS溶液(6.720μL蛋白酶K(6.1056℃恒溫2h~4h至完全消化,消化前期應(yīng)不時(shí)搖晃EP管,使管內(nèi)溶液混勻。消化完成后,加入Tris飽和酚(6.9)600μL,混勻10min,12000r/min離心10min。取上清液加入1/2體積的三氯甲烷(6.8)、1/2體積的Tris飽和酚,混勻10min,12000r/min離心10min。取上清液加入相同體積的三氯甲烷,混勻10min,12000r/min離心10min。取上清液加入2倍體積的預(yù)冷至4℃的無水乙醇,-20℃沉淀1h~2h,12000r/min離心10min,小心倒掉上清液。使用預(yù)冷至4℃的70%乙醇400μL清洗雜質(zhì),輕微搖晃1min,12000r/min離心2min,棄去上清液。再次使用預(yù)冷的70%乙醇400μL清洗雜質(zhì),12000r/體積的三氯甲烷、-20℃沉淀存圖2總DNA提取流程圖也可使用市售試劑盒提取總DNA,具體操作步驟參照試劑盒使用說明書。建議優(yōu)先選用市售試劑盒提取。9.2總DNA的電泳檢測(cè)提取的總DNA應(yīng)進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),以判斷總DNA提取情況。1%瓊脂糖凝膠(6.14)制備完成后連同制膠槽一同放入電泳槽TAE緩沖液中,上樣孔放置于電泳儀6DB21/T3794—2023負(fù)極方向,并使緩沖液液面略微超過凝膠上表面。吸取2.5μLDNA分子量標(biāo)準(zhǔn)(6.20)小心加入到第一個(gè)上樣孔中;總DNA樣品和6×蔗糖凝膠上樣緩沖液(6.18)按5:1混合均勻,吸取2.5μL混合后的樣品加入空上樣孔中。計(jì)算電泳槽正負(fù)極間的距離,調(diào)節(jié)電泳儀,使電壓不超過5V/cm~8V/cm。開始電泳,當(dāng)溴酚藍(lán)染料條帶移動(dòng)至凝膠約2/3位置時(shí),電泳結(jié)束。9.3EB染色將結(jié)束電泳的瓊脂糖凝膠從制膠槽中取出,放入EB染色液(6.12)中,使EB染色液沒過凝膠,染色30min。取出后清水漂洗兩次。注:也可使用其他染料替代EB,具體使用方法參見相關(guān)試劑說明書。9.4總DNA的凝膠成像將染色并漂洗后的凝膠放入凝膠成像儀中,紫外成像拍照,與DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)對(duì)比,提取的總DNA大小一般大于2000bp。9.5PCR擴(kuò)增此階段共30次循環(huán);再以45℃為退火溫度循環(huán)5次。整個(gè)PCR過程共計(jì)35次循環(huán)。PCR反應(yīng)體系和PCR反應(yīng)程序見表1和表2。表1PCR反應(yīng)體系12324257DB21/T3794—2023表2PCR反應(yīng)程序54——9.6擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物按步驟9.2進(jìn)行電泳檢測(cè)。9.7EB染色擴(kuò)增產(chǎn)物電泳結(jié)束后按步驟9.3進(jìn)行EB染色。9.8PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的凝膠成像染色并漂洗后的凝膠按步驟9.4進(jìn)行PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的凝膠成像分析。9.9測(cè)序擴(kuò)增的COI序列可委托專業(yè)測(cè)序公司進(jìn)行基因測(cè)序,測(cè)序結(jié)果文件為fasta格式。10結(jié)果計(jì)算10.1序列搜索與比對(duì)測(cè)試樣品的測(cè)序結(jié)果在NCBI等國(guó)際公共數(shù)據(jù)庫(kù)中BLAST搜索相似序列,一般要求相似性大于95%,將搜索得到的一條或多條相似序列與測(cè)序結(jié)果一起在MEGA等軟件中進(jìn)行序列比對(duì)(附錄A)。10.2繪制NJ進(jìn)化樹并計(jì)算遺傳距離比對(duì)完成后的結(jié)果使用Kimura2-parameter(K2P)模型,自展值(Bootstrap)不低于1000,繪制NJ進(jìn)化樹,計(jì)算遺傳距離(附錄B)。10.3結(jié)果判讀若進(jìn)化樹上測(cè)試樣品與搜索得到的序列聚為一支,且遺傳距離小于0.02cM,即可判定測(cè)試樣品與該序列為同一物種。11質(zhì)量保證與質(zhì)量控制11.1實(shí)驗(yàn)前的分類鑒定每次實(shí)驗(yàn)前應(yīng)先對(duì)物種進(jìn)行目或科的簡(jiǎn)單分類鑒定。11.2平行樣的測(cè)定每次實(shí)驗(yàn)需開展平行雙樣測(cè)試,兩次鑒定結(jié)果需完全相同,否則應(yīng)查找原因并重新測(cè)試。8DB21/T3794—202312廢物處理對(duì)于廢棄的EB溶液可做如下處理:對(duì)于EB含量大于0.5mg/mL的溶液,將EB溶液用水稀釋至濃度低于0.5mg/mL。加入一倍體積的0.5mol/LKMnO4,混勻,再加入等量的2.5mol/L鹽酸,混勻,置室溫?cái)?shù)小時(shí)。加入一倍體積的2.5mol/LNaOH,混勻后按有毒有害廢物處理。對(duì)于EB含量小于0.5mg/mL的溶液,按1mg/mL的量加入活性炭,不時(shí)輕搖混勻,室溫放置1小時(shí)。用濾紙過濾并將活性碳與濾紙密封后按有毒有害廢物處理。13注意事項(xiàng)EB具有毒性,實(shí)驗(yàn)室內(nèi)應(yīng)劃分清潔區(qū)與EB污染區(qū)。實(shí)驗(yàn)時(shí)應(yīng)帶好手套等防護(hù)措施,若沾染EB后應(yīng)使用大量清水清洗。9(資料性)序列搜索與比對(duì)A.1序列搜索序列搜索在NCBI網(wǎng)站(/)上進(jìn)行,選擇“Resources—DNA&RNA—BLAST(BasicLocalAl入到序列搜索界面。在搜索框中輸入需要搜索的測(cè)序結(jié)果序列,點(diǎn)擊“BLAST”搜索相似序列(圖A.2),以“.fasta”格式下載搜索結(jié)果列表(圖A.3)中相似度最高的序列進(jìn)行比對(duì)。輸入需要搜索的序列圖A.2BLAST搜索序列界面?AboolosphonalatawoucherH112_1cochroneoidasesubuntlone,prldsm?AbousohonisatawouhecHi851ctochcmeox09stont?AbotosphoniktavoucherH_1141cyochromacu?Aboosphonisbtawoutherh11122cbcromeosesturilgeAboglossichoria.120312039Aboglssichonia.1192119293%Aboglschonia.1153115383%Aboglossphoria.115311539Abooossenria.1147114793%Abogbssetoria.114211429Aboglosschonia.114211429Aboglbssghonia.1090108085%0098.18%6600098.18%6800097.88%660口ABoolossphonisatlataKoreewouchecH_110.5cwchrneAbdbssphonisatfataKoreawoucterH_113.4cshronauidasesbunlome.psrisodsmiochordisAboolbsschria107510758%口Aboolossphoniase1MyanmarwoucherHs582crtochomeoxdasestunitoene.parnalcs.mtochondiaAboobssoria.97097083%0093.19%660?AbofosphoniaspMFD16Gos2gitochcmeaxdsnstunitICongn,patatcdtsmdoctondis?AbooossphonispscllsawacherG22tothiorecasidasestuniuCOnorelasmiocthonrsAbooosehria.85285289%0089.79%874AbossphonispsoalsawouwcherH1crocromeondasesturitLCOnoreperteleds.miotordredAbog?BatracobdelapaludosawoucherSOKN016gytochromecoxcLnMN393284.1MN393277.1MN295414.1回Feedback MN393256.1回Feedback選擇“AlignbyClustalW”進(jìn)行序列比對(duì),比對(duì)結(jié)果(圖A.4)另存為“.meg”格式進(jìn)行進(jìn)化樹的構(gòu)(資料性)B.1進(jìn)化樹的構(gòu)建選用“Bootstrapmethod”,自展值至少為1000次,模型選擇“Kimura2-parametermodel”(圖B.1),點(diǎn)擊“OK”開始構(gòu)建進(jìn)化樹。構(gòu)建的進(jìn)化樹如種類過多矩形樹無法全部顯示,可選用圓形樹展示(圖MX:AnalysisPreferencOptionStatisticalMethod→NeighborjoSubstitutionsType→GeneticCodeTable→NotApplicModel/Method→Kimura2-parametermdTransitions+TransGammaParameter→NotApplicPattemamongLineages→Same(HomGaps/MissingDataTreatment→SiteCoverageCutoff(9%)→NotApplNumberofThreads→7圖B.1使用K2P模型構(gòu)建NJ進(jìn)化樹的設(shè)置界面點(diǎn)擊“ComputePairwiseDistances”,同樣選用“Bootstrapmethod”,自展值至少為1000次,56<DB21/T3794—2023參考文獻(xiàn)[1]HJ710.8-2014,生物多樣性觀測(cè)技術(shù)導(dǎo)則淡水底棲大型無脊椎動(dòng)物[S].[2
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