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文檔簡介
1、- -實驗七 聚合酶鏈反響PCR技術(shù)體外擴增 DNA目的1、學習 PCR 反響的根本原理和實驗技術(shù)。2、了解引物設計的一般要求。原理聚合酶鏈反響 polymerase chain reaction, PCR 是體外酶促合成 DNA 片段的一種技術(shù)。利用 PCR 技術(shù)可在數(shù)小時之內(nèi)大量擴增目的基因或 DNA 片段,以用于基因工程操作。PCR 進展的根本條件:DNA 模板在 RT-PCR 中模板是 RNA ;引物;dNTPdATP、dTTP、dGTP、dCTPTaq DNA 聚合酶PCR 循環(huán)由三個步驟組成:變性 使模板 DNA 解離成單鏈;退火 使引物與模板 DNA 所需擴增序列結(jié)合;延伸 DN
2、A 聚合酶利用 dNTP 合成與模板堿基序列互補的 DNA 鏈。每一個循環(huán)的產(chǎn)物可作為下一個循環(huán)的模板,通過 30 個左右循環(huán)后,目的片段的擴增可達 106 倍。引物設計:要保證 PCR 反響能準確,特異,有效的對引物 DNA 進展擴增,通常引物設計要遵循以下原那么:引物長度:1525 個核苷酸;CG 含量為 40%60%;Tm 值為 55Tm=4C+G+2A+T計算;引物與非特異配對位點的配對率小于 70%;引物自身配對形成的莖環(huán)構(gòu)造,莖的堿基對小于 3,兩條引物間配對堿基數(shù)小于 5 個。由于影響引物的設計的因素比較多,所以常常利用計算機來輔助設計。本實驗以實驗一中提取的質(zhì)粒 DNA 為模板
3、, 進展 PCR 擴增, 大量得到目的 DNA 片段。試劑與器材一、試劑1、 Taq DNA 聚合酶 2、 10×反響緩沖液含 25mmol MgCl23、 dNTP 4、 引物P1、P25、 溴乙啶染色液(EB): 10mg/ml 溴乙啶。 注意:該試劑具致癌作用,用時要小心。6、 點樣緩沖液 Loading buffer10× :0.25%溴酚藍,40%甘油。二、器材1、 PCR 擴增儀 2、 電泳儀 3、 臺式離心機4、 紫外分析儀 5、 恒溫水浴 6、 凝膠成像系統(tǒng)操作步驟一、PCR 擴增1、按下表參加試劑,并小心混勻。模板為實驗一中提取的質(zhì)粒 DNA。試劑 體積
4、50ulddH2O 35ul10 x buffer 5ul10×dNTP 5ulPrimer P1 1ulPrimer P2 1ul模板 2ulTaq 酶2.5U 1.0ul2、設置 PCR 程序: 94 180s 94 45s35 cycles: 55 45s 72 60s 72 600s3、運行 PCR 程序二、PCR 產(chǎn)物鑒定反響完畢后,取 20ul PCR 產(chǎn)物進展 1.2%瓊脂糖電泳分析。實驗八 RNA 提取與純化一、目的掌握 RNA 提取的根本技術(shù),了解 RNA 提取過程中的各種本卷須知。二、原理RNA 提取是分子生物學實驗中難度較大的實驗技術(shù)。RNA 提取和 DNA 提
5、取有類似的地方, 因為它們都是核酸, 都具有較好的水溶性。 提取 RNA首先破碎細胞,然后用提取液將 RNA 溶出,反復抽提去除蛋白質(zhì),參加乙醇沉淀 RNA,將 RNA沉淀溶解備用。那么如何區(qū)分 DNA 和 RNA 分開?DNA 和 RNA 的溶解性不同,DNA 在 1M 的鹽溶液中具有最好的溶解度,而 RNA 在 0.14M 的鹽溶液中具有最好的溶解度,所以可以利用它們的溶解性將它們進展區(qū)分。另外,RNA 的分子量一般比較小,而 DNA 分子很大且和蛋白結(jié)合成復合體,所以 DNA 更容易隨蛋白沉淀,而 RNA 具有較好的溶解性。RNA 提取的另一個關(guān)鍵問題就是如何抑制或去除環(huán)境中 RNA 酶
6、。所有的玻璃、陶瓷和鐵器具在 180×6 h 以上。所有的塑料器皿用 0.1的 DEPC 水 37過夜浸泡,然后濕熱滅菌80烘干備用。配制溶液所需的水也要用 DEPC 處理過的水,而配置 Tris 相關(guān)的緩沖液時Tris 會與 DEPC 發(fā)生反響,應防止用 DEPC 處理。另外操作過程中應戴手套。判斷 RNA 的質(zhì)量主要有兩個標準,一是純度,二是完整性是否被降解 。RNA 的純度可以通過分光光度計進展測定的 A260A280 值來判斷。RNA 的完整性主要通過電泳分析來說明,未降解的總 RNA 電泳時在凝膠中會出現(xiàn) 18S 和 28SrRNA 對應的條帶如果有 DNA 污染那么在 R
7、NA 后會發(fā)現(xiàn)基因組 DNA 對應的條帶 。RNA 電泳系統(tǒng)也要嚴格對 RNA 酶進展處理。如果用普通瓊脂糖凝膠電泳,那么用盡量減少電泳時間。三、試劑與器材一試劑1、暗培養(yǎng) 7 天的小麥苗,用前光照誘導 3 h2、DEPC3、DEPC 處理的 ddH2O4、RNA 提取液: 每 1000 毫升中含有Tris 6.06 克 (最終濃度為 50 mM )LiCl 6.03 克 (LiCl -H2O 9.06 克) (最終濃度為 150 mM )EDTA0.5 M 10 毫升 (最終濃度為 5 mM )SDS 50 克 (最終濃度為 5 % )5、8 M Li Cl:33.92 克 Li Cl 溶于
8、 100 ml DEPC 處理的 ddH2O6、 水飽和酚7、 氯仿8、 0.5M NaCl9、 溴乙啶(EB): 10mg/ml 溴乙啶。 注意:該試劑具致癌作用,用時要小心。10、點樣緩沖液 Loading buffer10× :0.25%溴酚藍,40%甘油。三、器材1、 分光光度計 2、 電泳儀 3、 臺式離心機4、 手提式紫外監(jiān)測儀 5、 恒溫水浴 6、 凝膠成像系統(tǒng)四、操作步驟1、取植物葉片 1-3 克,放在液氮中磨成粉末。(可以多研磨一些,然后分裝,小量提取試劑量可減至 110)2、液氮揮發(fā)完之前,倒入含有 10 毫升 RNA 提取液的離心管中,迅速反復倒置混勻,直至看不
9、見任何團狀物為止。3、 立即參加 10 毫升的等體積 酸性 酚/氯仿, 劇烈 ! 反復倒置混勻 5 至 10min如在震蕩器上震蕩,要確保混勻而不能僅僅是振動! 。4、13000g×5min,吸管取上清注意防止吸取界面上的蛋白 。5、重復步驟 3 和 4,三次左右注意觀察界面上白色物質(zhì) 。6、取上清,參加等體積的氯仿,反復倒置混勻 2-5min。7、13000g×5min。8、取上清,參加 1/3 體積 8 M 的 LiCl 即 8 M LiCl 應占最后體積的 25% , 沉淀 RNA,4過夜。9、離心 13000g × 10 min。10、 棄上清,保存沉淀
10、此時應把 RNA 沉淀轉(zhuǎn)入 Eppendorf 管中, 以便于操作 , 參加 70%無水乙醇+30% 0.5 M NaCl 的混合液 0.5 毫升洗滌沉淀數(shù)分鐘和緩地反復倒置混勻 ,離心 13000g × 2 min 。重復洗滌沉淀數(shù)次。11、用 70%乙醇再洗滌 2 次沉淀,去掉鹽離子。12、用槍頭吸去殘留的液體,真空枯燥 2min。13、參加 200 ul DEPC 處理過的水溶解 RNA。14、取用 5 ul 電泳檢測 RNA 完整性, 用 TEB 緩沖液, 200V× 20-30min。15、取 5 ul 稀釋 40 倍測定 RNA 純度和濃度,A260 nm /A
11、280 nm 應在 2.0 左右。16、將 RNA 分裝,放在-70長期保存?zhèn)溆? 輔助方案:試劑盒提取法Trizol一試劑:1.Ttizol Reagent 2. 氯仿 3. 異丙醇 4. 70%無水乙醇5.DEPC二器材:1、 研缽 2、 離心機三實驗步驟1、 稱取小麥葉片 50-100mg,于研缽中加液氮研磨成粉末,迅速轉(zhuǎn)移到 1.5ml 離心管中。2、 參加 1 ml Trizol Reagent,1530×5min。3、 參加 0.2ml 氯仿,劇烈振蕩 15 sec,1530×3min。4、 冷凍離心 12 000 rpm×15min。5、 將上清液轉(zhuǎn)
12、移到另一個離心管中,加 0.5ml 預冷異丙醇,混勻 ,-20放置20min。6、 冷凍離心 12 000 rpm×10min。7、 參加 0.5ml 70% 乙醇洗 RNA 沉淀,懸浮,7500 rpm×2min,除去乙醇。8、 參加 30 ul DEPC 處理過的 ddH2O 溶解 RNA。實驗九 RT-PCR 擴增目的基因 cDNA目的學習從細胞或組織的 RNA 中用逆轉(zhuǎn)錄 PCR 擴增目的基因的技術(shù)及操作。原理普通 PCR 方法可以以 DNA 為模板擴增基因, 但真核生物的基因組中通常分為可轉(zhuǎn)為 mRNA的外顯子和不轉(zhuǎn)錄的成 mRNA 的內(nèi)含子,所以從染色體 DNA
13、 用 PCR 方法擴增出的基因是內(nèi)含子和外顯子相間排列的 DNA 分子,不能用于基因工程的直接表達。如果用人工的方法把內(nèi)含子去除,是極其煩瑣費力的事。逆轉(zhuǎn)錄 PCR 利用逆轉(zhuǎn)錄病毒依賴于 RNA 的 DNA 逆轉(zhuǎn)錄合成酶,在反義引物或 oligod T的引導下合成 mRNA 互補的 DNAplementalDNA ,再按普通的 PCR 的方法用兩條引物以 cDNA 為模板,擴增出不含內(nèi)含子的可編碼完整蛋白的基因。這一 DNA 的 5,和 3,端經(jīng)改造可直接用于基因工程的表達,因此逆轉(zhuǎn)錄PCR 成為了目前獲取目的基因的一條重要途徑。試劑與器材一、試劑1、 RNA 模板 2、 cDNA 引物 3、
14、 反轉(zhuǎn)錄緩沖液4、 dNTP 5、 AMV 反轉(zhuǎn)錄酶6、 RNA 抑制劑RNasin 7、 Taq 酶8、 10×PCR 緩沖溶液 9、 引物P1、P2二、器材1、PCR 擴增儀 2、電泳儀 3、臺式離心機 4、恒溫水浴5、紫外分析儀 6、微量移液器操作步驟一、RNA 的反轉(zhuǎn)錄1、在小管中依次參加5 ul RNA6 ul DEPC H2O混合后,65×5 min(破壞二級構(gòu)造).2、 置于冰浴 5 min.3、在管中依次參加: (反響體系為 20 ul)RT buffer ( 5×) 4 ulRNasin 0.5 uldNTP ( 10mM) 2 ulOligo T17AGC 50-100 uM 1 ulAMV 反轉(zhuǎn)錄酶 1 ul置于 42× 1 h。4、70× 5 min使酶失活,可省略 。5、參加 100ul ddH2O (從總 RNA 開場制備)或 1000 ulddH2O從 mRNA 開場制備 。6、置于-20保存?zhèn)溆?二、
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