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1、分離工程第八章第1頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一本章主要知識(shí)點(diǎn)電泳的概念電泳的基本原理電泳技術(shù)的分類(lèi)常用的凝膠電泳技術(shù)有哪些?電泳裝置的基本組成聚丙稀酰胺凝膠電泳的一般過(guò)程第2頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一SDS電泳的基本原理及過(guò)程瓊脂糖電泳的特點(diǎn)及其應(yīng)用等電聚焦電泳的基本原理雙相電泳的概念及其特點(diǎn)第3頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一電泳的簡(jiǎn)單原理蛋白質(zhì)、核酸、多糖等常以顆粒分散在溶液中,它們的凈電荷取決于介質(zhì)的H+濃度或與其它大分子的相互作用。帶電粒子在電場(chǎng)中的遷移方式主要依據(jù)分子尺寸大小和形狀、分子所帶電荷或分子的
2、生物學(xué)與化學(xué)特性。第4頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第5頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一電泳:是荷電溶質(zhì)在電場(chǎng)作用下發(fā)生定向泳動(dòng)的現(xiàn)象。電泳分離是利用荷電溶質(zhì)在電場(chǎng)中泳動(dòng)速度的差別進(jìn)行分離的方法。20世紀(jì)初,電泳法用于蛋白質(zhì)的分離,20世紀(jì)70年代,電泳多用于分析目的。第6頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一(1)自由電泳:是最早的一種電泳形式,目前已很少使用。瑞典管內(nèi)蛋白質(zhì)溶液和緩和液間有清晰可見(jiàn)界面,然后加一電場(chǎng),由于界面處存在濃度梯度因而產(chǎn)生折射梯度,利用適當(dāng)?shù)墓鈱W(xué)系統(tǒng)可以觀察到界面的移動(dòng)。第7頁(yè),共66頁(yè),2022年
3、,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一在電泳過(guò)程中,每個(gè)移動(dòng)的界面相當(dāng)于某一特定的蛋白質(zhì),通過(guò)一定計(jì)算可得其泳動(dòng)度。第8頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一缺點(diǎn):電泳中因通電發(fā)熱等原因而引起的對(duì)流,常回使已分離的溶質(zhì)重新混合,為防止對(duì)流,可將電泳在多孔介質(zhì)中進(jìn)行,稱(chēng)為區(qū)帶電泳。區(qū)帶電泳:應(yīng)用支持介質(zhì)的電泳,它表示在一個(gè)電場(chǎng)的作用下,在某一支持物上能將一個(gè)樣品組成徹底分離成若干條區(qū)帶的過(guò)程。第9頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一(2)區(qū)帶電泳:在支持物上電泳時(shí)蛋白質(zhì)混合物被成若干區(qū)帶。根據(jù)支持物物理性質(zhì)的不同可分為4類(lèi):濾紙電泳和薄膜電泳,粉末電泳,細(xì)絲電泳,
4、凝膠電泳。多孔介質(zhì)稱(chēng)為載體,應(yīng)用最普通的是以濾紙或凝膠為載體故稱(chēng)為紙電泳法或凝膠電泳法。第10頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第一節(jié) 凝膠電泳法凝膠電泳的作用是基于凝膠過(guò)濾作用(分子篩作用)和電泳淌度的雙重機(jī)理,所以它能獲得較高的分辨率。凝膠電泳:凝膠過(guò)濾作用(分子篩作用)電泳淌度正比于 電荷數(shù)(電荷效應(yīng))單位電場(chǎng)強(qiáng)度下的運(yùn)動(dòng)速度稱(chēng)為離子淌度或遷移率。第11頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一聚丙烯酰胺凝膠電泳中的分子篩效應(yīng)在使用凝膠介質(zhì)的電泳中,由于電泳介質(zhì)具有高粘度和高的摩擦阻力,因此不僅可以防止對(duì)流,而且可以把擴(kuò)散減到最小。凝膠中的大分子分離取
5、決于它的電荷、尺寸和形狀凝膠的這種用于分離不同尺寸分子的特性是由于它的尺寸篩分能力(Size sieving capacity),這種現(xiàn)象被稱(chēng)為分子篩效應(yīng)(molecular sieving effect)第12頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一分子篩效應(yīng)圖中A,B,C均為陽(yáng)離子,在直流電場(chǎng)作用下電泳情況示意圖分子量大小依次為MA=MBMC,所帶電荷量相同QA=QB=QC。ABC+-第13頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一常用的凝膠材料:聚丙烯酰胺、瓊脂糖凝膠。聚丙烯酰胺(丙烯酰胺)單體是神經(jīng)毒素,可積累。凝膠電泳使用的凝膠種類(lèi)和濃度根據(jù)分離料液中溶
6、質(zhì)的相對(duì)分子質(zhì)量而異。第14頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一聚丙烯酰胺含量 適用的分子量范圍7. 5%凝膠 10kD1000kD3.5%凝膠 1000kD5000kD瓊脂糖或瓊脂糖 與聚丙烯酰胺混合物 5000kD孔徑從小到大。第15頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一垂直電泳槽及灌膠模具第16頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一電泳的一般過(guò)程第17頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第18頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一聚丙酰胺電泳第19頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分
7、,星期一凝膠電泳與凝膠過(guò)濾的區(qū)別在凝膠電泳中,樣品混合物中各分子的運(yùn)動(dòng)速度是小分子大于大分子物質(zhì),這種凝膠過(guò)濾中的情況恰好相反,這是因?yàn)樵谀z電泳中,系統(tǒng)里沒(méi)有空隙體積,只有充滿整體凝膠的網(wǎng)狀骨架,因此在其內(nèi)部大分子物質(zhì)不及小分子物質(zhì)容易移動(dòng)。第20頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一常規(guī)聚丙烯酰胺凝膠電泳原理:由于聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)是多孔介質(zhì),不僅能防止對(duì)流,把擴(kuò)散減少到最低;而且其孔徑大小與生物大分子具有相似的數(shù)量級(jí),能主動(dòng)參與生物分子的分離,具有分子篩效應(yīng)。因此,在使用聚丙烯酰胺凝膠電泳進(jìn)行蛋白質(zhì)分離時(shí),在電泳過(guò)程中不僅取決于蛋白質(zhì)的電荷密度,還取決于蛋白
8、質(zhì)的尺寸和形狀。PAGE可以用圓盤(pán)電泳、垂直電泳或水平電泳第21頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一電泳前的準(zhǔn)備工作緩沖系統(tǒng)的選擇:保證蛋白質(zhì)的溶解性能、穩(wěn)定性以及生物活性的保持;電泳時(shí)間和分辨率:從理論上講PAGE可以在任何pH進(jìn)行,但實(shí)際上過(guò)酸或過(guò)堿的條件下將發(fā)生某種水解(脫酰胺)。因此,pH應(yīng)限制在310之間。第22頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一緩沖系統(tǒng)的選擇原則是兩種標(biāo)準(zhǔn)的對(duì)立權(quán)衡如果緩沖液的pH選擇在遠(yuǎn)離樣品中各種蛋白的等電點(diǎn),蛋白質(zhì)分子所帶電荷的密度大,電泳時(shí)間短,區(qū)帶細(xì)而窄;如果緩沖pH選擇在靠近被分離樣品的一種或幾種蛋白質(zhì)的等電點(diǎn),
9、則蛋白質(zhì)分子之間的電荷密度差別大,分辨率就高; 因此,常常選擇pH 8.09.5的緩沖,常用的緩沖液有Tris-甘氨酸(pH 8.39.5),Tris-硼酸(pH 8.39.3)和Tris-醋酸(pH 7.28.5)第23頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一離子強(qiáng)度的選擇離子強(qiáng)度不宜過(guò)高,此時(shí)電導(dǎo)率低,產(chǎn)熱少,電泳速度快;但也不可過(guò)低,必須具有一定的緩沖能力,過(guò)低的離子強(qiáng)度容易導(dǎo)致蛋白質(zhì)絮凝。一般選擇緩沖液的離子強(qiáng)度為0.010.1 mol/L之間第24頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一凝膠濃度的選擇由于PAGE電泳分離不僅取決于蛋白質(zhì)的電荷密度,而且
10、取決于分子的大小、形狀。因此,與凝膠的分子篩效應(yīng)(即凝膠的孔徑與電泳的分辨率、電泳速度)密切相關(guān)。根據(jù)凝膠孔徑與被分離分子的大小和形狀,可以將凝膠分為:非排阻性凝膠(unrestrictive gel):濃度0.7 1.0%的瓊脂糖凝膠;排阻性凝膠(restrictive gel):濃度大于1%的瓊脂糖凝膠和常規(guī)PAGE第25頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一凝膠濃度太大,孔徑小于樣品分子尺寸,電泳時(shí)蛋白質(zhì)分子不能進(jìn)入凝膠,樣品仍留在加樣位置;凝膠濃度太小,孔徑太大,樣品中各種蛋白質(zhì)分子均隨緩沖液推進(jìn),不能得到很好的分離;第26頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)
11、0分,星期一凝膠濃度(C=2.6%)分子量范圍(kDa)凝膠濃度(C=5%)分子量范圍(kDa)53020056070010151001022280151050151020020215205150凝膠濃度與分子量測(cè)定的關(guān)系第27頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一PAGE的具體操作過(guò)程制膠:確定凝膠配方(凝膠、引發(fā)劑、增速劑的濃度和緩沖液),使用灌膠模具灌膠;樣品準(zhǔn)備:選擇合適的樣品緩沖液、確定合適的樣品濃度(12mg/L,考染),加樣(溴酚藍(lán));電泳:46小時(shí),待溴酚藍(lán)前沿到達(dá)陽(yáng)極底部;檢測(cè):紫外掃描或染色(考馬斯亮藍(lán)R-250、銀染色靈敏度比考染高100倍、熒光探針);
12、照相、凝膠干燥:定量測(cè)定:第28頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一凝膠電泳:裝柱操作,鋪板操作。近來(lái)聚丙烯酰胺凝膠電泳法有了兩個(gè)新進(jìn)展:A、不連續(xù)凝膠電泳。B、十二烷基硫酸鈉(SDS)聚丙烯酰胺凝膠電泳。第29頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一1、不連續(xù)凝膠電泳:不連續(xù)凝膠由兩層組成,上層為濃縮層(丙烯酰胺23%),下層為分離層(丙烯酰胺525%)。第30頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第31頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一聚丙烯酰胺凝膠電泳:以聚丙烯酰胺為支持物,制成凝膠柱。凝膠柱由二節(jié)凝膠組成(小節(jié)
13、濃縮膠,大節(jié)分離膠)。這二節(jié)膠孔徑大小,緩沖液離子成分和離子強(qiáng)度值,電場(chǎng)強(qiáng)度都是不同的。第32頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一樣品先被壓縮一個(gè)薄層,然后進(jìn)行電泳。一般經(jīng)過(guò)三個(gè)效應(yīng),濃縮效應(yīng),分子篩效應(yīng),電荷效應(yīng),使樣品分離效果好,分辨率高。第33頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一2、十二烷基硫酸鈉(SDS)聚丙烯酰胺凝膠電泳一種加陰離子去污劑SDS的聚丙烯酰胺凝膠電泳。主要用途:分離蛋白質(zhì)和測(cè)定它的相對(duì)分子量。第34頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一SDS 聚丙烯酰胺凝膠電泳十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳主要用于測(cè)定蛋白質(zhì)
14、亞基分子量以及未知蛋白質(zhì)分子量的測(cè)定;特點(diǎn):設(shè)備簡(jiǎn)單、操作簡(jiǎn)便、測(cè)定快速、重復(fù)性高、樣品無(wú)需純化。第35頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一基本原理:SDS能以一定比例與蛋白質(zhì)結(jié)合,并使蛋白質(zhì)帶有大量的負(fù)電荷,(大大超過(guò)原來(lái)所帶電荷),從而使天然蛋白質(zhì)分子之間電荷差別下降乃至消除。同時(shí)蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)也在 SDS作用下變的松散(蛋白質(zhì)變成多肽),形狀趨于一致,排除了電泳過(guò)程中電荷的影響,使SDS聚丙烯酰胺電泳時(shí),蛋白質(zhì)遷移率的差異僅是相對(duì)分子質(zhì)量的函數(shù)。第36頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一SDS的原理蛋白質(zhì)分子的解聚SDS是一種陰離子去污劑,作為變性劑
15、和助溶性試劑,能斷裂分子內(nèi)和分子間的氫鍵,使分子去折疊,破壞蛋白質(zhì)分子的二級(jí)、三級(jí)結(jié)構(gòu);而強(qiáng)還原劑,如二硫蘇糖醇、-巰基乙醇能使半胱氨酸殘基之間的二硫鍵斷裂。因此,在樣品和凝膠中加入SDS和還原劑后,蛋白質(zhì)分子被解聚為組成它們的多肽鏈,解聚后的氨基酸側(cè)鏈與SDS結(jié)合后,形成帶負(fù)電的蛋白質(zhì)-SDS膠束,所帶電荷遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)了蛋白質(zhì)原有的電荷量,消除了不同分子間的電荷差異;同時(shí),蛋白質(zhì)-SDS聚合體的形狀也基本相同,這就消除了在電泳過(guò)程中分子形狀對(duì)遷移率的影響。第37頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一蛋白質(zhì)樣品用SDS處理后亞基的解聚和分子形狀的改變第38頁(yè),共66頁(yè),2022年
16、,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一未知蛋白質(zhì)分子量的測(cè)定基于上述SDS的原理介紹,我們可以利用SDS電泳進(jìn)行未知蛋白質(zhì)的分子量測(cè)定;以不同分子量的標(biāo)準(zhǔn)蛋白進(jìn)行SDS電泳得到不同標(biāo)準(zhǔn)蛋白的電泳遷移率,制作標(biāo)準(zhǔn)校正曲線,然后對(duì)未知蛋白在相同條件下進(jìn)行SDS電泳,測(cè)定遷移率,從標(biāo)準(zhǔn)曲線得到相應(yīng)的分子量;第39頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一LgM = A - KRmM相對(duì)分子量A常數(shù)K斜率Rm遷移率由于蛋白質(zhì)結(jié)合SDS的量與蛋白質(zhì)種類(lèi)、pH、I、緩沖液組成有關(guān)。一般都必須用已知相對(duì)分子量蛋白質(zhì)作為指示蛋白質(zhì)、與被測(cè)樣品在同一條件下進(jìn)行電泳,給出LgM Rm曲線,求出樣品Rm值對(duì)
17、應(yīng)的LgM ,計(jì)算出被測(cè)樣品相對(duì)分子量。第40頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第二節(jié) 等電點(diǎn)聚焦等電點(diǎn)聚焦(IEF):利用蛋白質(zhì)和氨基酸等兩性電解質(zhì)具有等電點(diǎn),在等電點(diǎn)的pH下呈電中性,不發(fā)生泳動(dòng)的特點(diǎn)進(jìn)行電泳分離。在電泳設(shè)備中首先調(diào)配連續(xù)的pH梯度,然后使蛋白質(zhì)在電場(chǎng)作用下泳動(dòng)到各自等電點(diǎn)的 pH區(qū)域形成具有不同等電點(diǎn)的蛋白質(zhì)區(qū)帶。第41頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一等電聚焦原理示意圖第42頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一裝置:第43頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一特點(diǎn):優(yōu)點(diǎn):消除分子擴(kuò)散引起的
18、分離度下降。缺點(diǎn): 1、載體兩性電解質(zhì)對(duì)產(chǎn)品產(chǎn)生污染; 2、pH梯度的穩(wěn)定性不高; 3、操作過(guò)程中發(fā)生凝膠脫水起皺現(xiàn)象。第44頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一載體兩性電解質(zhì)pH梯度等電聚焦等電聚焦(isoelectrofocusing), IEF利用蛋白質(zhì)分子或其它兩性分子的等電點(diǎn)不同,在一個(gè)穩(wěn)定的、連續(xù)的、線性的pH梯度中進(jìn)行蛋白質(zhì)的分離和分析。利用等電聚焦技術(shù)分離、分析的對(duì)象僅限于蛋白質(zhì)和兩性分子。根據(jù)建立pH梯度的原理不同,梯度有分為載體兩性電解質(zhì)梯度(Carrier ampholytes pH gradient)和固相梯度。第45頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月2
19、0日,11點(diǎn)0分,星期一工作原理蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)蛋白質(zhì)最主要的特性是它的帶電行為,它們?cè)诓煌膒H環(huán)境中帶不同數(shù)量的正電或負(fù)電,只是在某一pH時(shí),蛋白質(zhì)的凈電荷為0,此pH即為該蛋白的等電點(diǎn)(isoelectric point pI)。蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)取決于它的氨基酸組成和構(gòu)象,是一個(gè)物理化學(xué)常數(shù)??梢岳玫入婞c(diǎn)差異來(lái)進(jìn)行蛋白質(zhì)的分離、分析 第46頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一載體兩性電解質(zhì)pH梯度等電聚焦原理載體兩性電解質(zhì)pH梯度等電聚焦是在支持介質(zhì)中加入載體兩性電解質(zhì),通以直流電后在兩極之間形成穩(wěn)定、連續(xù)和線性的pH梯度,當(dāng)帶電的蛋白質(zhì)分子進(jìn)入該體系時(shí),便會(huì)產(chǎn)生移動(dòng),
20、并聚集于相當(dāng)于其等電點(diǎn)的位置。第47頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一等電聚焦分離示意圖第48頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一常規(guī)PAGE和等電聚焦電泳的區(qū)別第49頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一載體兩性電解質(zhì)和pH梯度的形成等電聚焦技術(shù)的關(guān)鍵在于pH梯度的建立載體兩性電解質(zhì)的概念: 作為載體兩性電解質(zhì)應(yīng)該具有以下特點(diǎn):應(yīng)該是兩性的,使它們?cè)诜蛛x柱中也能達(dá)到一個(gè)平衡位置;應(yīng)該可以作為“載體”,兩性電解質(zhì)不能用于等電聚焦,只有載體兩性電解質(zhì),即具有好的導(dǎo)電性和好的緩沖能力的化合物才能用于等電聚焦。第50頁(yè),共66頁(yè),2022年
21、,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一用于等電聚焦的主要載體兩性電解質(zhì)Ampholine(瑞典LKB公司)由許多脂肪族的多氨基多羧基的異構(gòu)體和同系物組成,它們具有連續(xù)改變的氨基與羧基比Servalyte (德國(guó)Serva 公司)產(chǎn)品BiolytePharmalyte (瑞典Pharmacia 公司)產(chǎn)品分為九種pH范圍第51頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一pH梯度的形成在沒(méi)有電場(chǎng)時(shí),載體兩性電解質(zhì)的pH值大約是該溶液pH范圍的平均值,所有載體兩性電解質(zhì)分子都荷電。當(dāng)引入電場(chǎng)時(shí),載體兩性電解質(zhì)分子將向陰極或陽(yáng)極遷移,帶有最低等電點(diǎn)的分子(荷最多負(fù)電)將最快地向陽(yáng)極移動(dòng);當(dāng)它達(dá)到
22、凈電荷為0的位置時(shí)才停止,這個(gè)位置靠近陽(yáng)極,由于它具有高的緩沖能力,使環(huán)境溶液的pH等于分子本身的pI。第52頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一其次,一些低pI的載體兩性電解質(zhì)(荷其次多的負(fù)電)也向陽(yáng)極移動(dòng),直到它的凈電荷減少到0才停止。同樣的,其周?chē)h(huán)境溶液pH值也等于它本身的pI。依次類(lèi)推,所有的載體兩性電解質(zhì)分子用增加pI級(jí)數(shù)的方法將分別在陽(yáng)極、陰極之間到達(dá)它們自己的位置,從而給出一個(gè)pH梯度。第53頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一載體兩性電解質(zhì)在電場(chǎng)中形成pH梯度的模式圖第54頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一水平等電
23、聚焦電泳制膠:溶液配制(丙烯酰胺、N,N-甲叉雙丙烯酰胺、載體兩性電解質(zhì)等),灌膠;電泳:加樣可在凝膠上的任何位置,濃度一般為0.52mg/ml;固定:染色:脫色:第55頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一第56頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一等電聚焦的主要應(yīng)用同工酶分離、分析pI 測(cè)定實(shí)際應(yīng)用當(dāng)中,等電聚焦的操作過(guò)程要復(fù)雜得多,具體內(nèi)容可參考蛋白質(zhì)電泳實(shí)驗(yàn)技術(shù),作者:郭堯君,科學(xué)出版社。第57頁(yè),共66頁(yè),2022年,5月20日,11點(diǎn)0分,星期一雙相電泳第一相 等電聚焦第二相 SDSPAGE目的:為了獲得更詳細(xì)的組分信息目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)組研究中第58頁(yè),共6
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