THSPP 0003-2022 茄科植物攜帶番茄雄性株類病毒檢測技術規(guī)程

ICS65.020.20CCSB16團 體 標 準T/HSPP0003—2022茄科植物攜帶番茄雄性株類病毒檢測技術規(guī)程CodeofPracticeforDetectionofTomatoplantamachoviroidcarriedbySolanaceaeplants(發(fā)布稿)2022-10-10發(fā)布 2022-11-10實施湖北省植物保護學會 發(fā)布T/HSPP0003—2022T/HSPP0003—2022II目 次前 言 II1范圍1-21-31-4-1-51-儀器設備1-主要試劑1-61-7檢測方法1-樣品制備2-7.1.1種子類2-7.1.2種苗類2-RNA2-2-分子雜交2-結果判定3-8-3-留樣保存3-結果記錄3-建檔3-附 錄 A（參性）番雄株病基信息-4-附 錄 B（參性錄核酸取法-5-附 錄 C（參性錄分子交法-6-附 錄 D（規(guī)性錄）茄性類毒測流圖-8-前 言GB/T《標準化工作導則第T/HSPP0003—2022T/HSPP0003—2022-PAGE3-茄科植物攜帶番茄雄性株類病毒檢測技術規(guī)程范圍本文件規(guī)定了番茄雄性株類病毒的檢測技術規(guī)程。本文件適用于番茄、辣椒、馬鈴薯等茄科植物種子及種苗中番茄雄性株類病毒的檢測和鑒定。（GB/T66822964本文件沒有需要界定的術語和定義。中文名：番茄雄性株類病毒學名：Tomatoapicalstuntviroid類病毒名及縮寫：tomatoapicalstuntviroid，TPMVdPospvodaPospvroA。感量0.001PHPCR（2.5μL20μL，1000μL）除另有規(guī)定外，所有試劑均為分析純或生化試劑，實驗用水應符合GB/T6682中一級水的規(guī)格。商品化Trizol試劑、三氯甲烷、異丙醇、無水乙醇、反轉錄酶、DNA聚合酶、脫氧核糖核苷酸、PCR緩沖液、引物和探針、Tris-乙酸電泳緩沖液，硝酸銀溶液等。核酸提取相關試劑符合附錄B的要求；分子雜交試劑應符合附錄C的要求。DSN/T2964樣品制備每份送檢樣本中選取100~200粒種子，表面消毒后，置于鋪有吸水紙的白瓷盤或培養(yǎng)皿中，20℃~25℃、12h/12h光暗交替條件下保濕培養(yǎng)直至萌發(fā)。隨機抽取葉片1g~5g，置于去RNA酶的研缽中，加入液氮后迅速研磨成細粉狀，制成檢測樣品。g~200RNARNA提取取制備好的檢測樣品100mg，按照常規(guī)Trizol法提進行總RNA提??；以感染TPMVd的茄科植物樣本作為陽性對照，以無TPMVd茄科植物樣本作為陰性對照，同時進行提取。具體操作步驟參見附錄B。核酸提取也可選擇相應商業(yè)化試劑盒。RT-PCR檢測cDNA0.2mLPCR管中加入DEPC處理去離子水10μL、模板RNA3μL（50ng~200ng），隨機引物1μL，95℃（或沸水）水浴7min，迅速置冰上冷卻3min；然后加5×反轉錄緩沖液4μL、10mmol/LdNTPs、40U/μLRNAase抑制劑（Rnasin）0.5μL、200U/μL反轉錄酶（M-MLV）0.5μL，混勻后37℃水浴1h；反轉錄結束后瞬時離心，95℃（或沸水）水浴5min，冰浴3min，直接進行PCR擴增。cDNA合成也可采用相應商業(yè)化試劑盒。PCR反應體系：0.2mLPCR管中加入10×PCRbuffer（含Mg2+）2.5μL，dNTPs（10mmol/L）2μL，引物（均為10μmol/L）各1.0μL（見表1），5U/μLTaq酶0.5μL，模板cDNA3μL，加DEPC處理水至總體積25μL。每個樣品設置兩個平行反應，以雙蒸水代替模板作為空白對照。表1PCR反應特異性引物及序列引物名稱引物序列（5'-3'）產物大?。╞p）TPMVd219FGCCCGCTTCTCTTGCGCTGT219TPMVd219RAGCGCTCCTTTGGCCGCAAT反應程序：95℃5min；95℃30s，56℃30s，72℃30s，35個循環(huán)；72℃10min。也可采用一步法RT-PCR商業(yè)化試劑盒，反應體系和反應條件可根據說明書進行適當調整。制備1.5%15PCR110Vmin）對RT-PCR擴增產物進行測序，將測得序列與GenBank數據庫中已知的TPMVd序列進行相似性比對分析，驗證樣品檢測結果。分子雜交RocheTPMVd-20℃33min68℃12μLRNA10h具體操作步驟參見附錄C。結果判定對照成立的前提下，檢測結果按照以下原則進行判定：——樣品RT-PCR和分子雜交兩種檢測方法均為陽性，可判定樣品中攜帶有番茄雄性株類病毒；——樣品RT-PCR檢測或分子雜交檢測結果為陽性，經測序分析驗證與已知的TPMVd序列相似性達90%以上，可判斷樣品攜帶番茄雄性株類病毒；——樣品RT-PCR和分子雜交兩種檢測方法均為陰性，可判定樣品未攜帶番茄雄性株類病毒。留樣保存7.1-80℃少6結果記錄RT-PCR檢測結果電泳照片、分子雜交檢測結果照片、測序報告和序列分析結果圖應一并保存。建檔--PAGE8-附 錄 A（資料性附錄）番茄雄性株類病毒基本信息（Solanumcardiophyllum）（Solanumlycopersicum）、矮牽牛（Petuniahybrida）。主要分布在北美洲的加拿大、墨西哥等國家。番茄雄性株類病毒能通過花粉和種子傳播。TPMVd（Solanumlycopersicum）TPMVdTPMVdRNA360nt，GC附 錄 B（資料性附錄）核酸提取方法DEPC處理超純水：取制備好的去離子水500mL，加入500μLDEPC搖床震蕩過夜，高溫高壓滅菌后室溫保存；1mol/LTris-HCl（pH8.0）：稱取12.11gTris·base，加50mLDEPC處理超純水溶解，用濃HCl調pH值至8.0，定容至100mL，高溫高壓滅菌后室溫保存；0.5mol/LEDTA（pH8.0）：稱取18.61gNa2EDTA·2H2O，加80mL處理超純水溶解，用約2gNaOH調pH值至8.0，加DEPC100μL，定容至100mL，搖床震蕩過夜，高溫高壓滅菌后室溫保存；10×TE（pH8.0）1mol/LTris-HCl（pH8.0）10mL0.5mol/L（pH8.0）2mL50mLDEPC100稱取7.1制備的檢測樣品100mg，轉入已滅菌的去RNA酶離心管；立即加入1mLTrizol，渦旋振蕩15s，室溫靜置15min；加400μL氯仿，上下顛倒混勻，室溫靜置2min，4℃12000r/m離心15min；取上清于新的離心管中，加無加入等體積的異丙醇沉淀，輕微顛倒，-20℃沉降1h；12000r/m離心15min；棄上清，沉淀中加1mL預冷的75%酒精，上下顛倒10次，12000r/m離心5min，棄上清；瞬間離心20s，吸去多余液體，室溫干燥5-10min，加30μLDEPC處理的去離子水溶解，-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩Ｒ部蛇x擇市售商品化提取試劑盒進行核酸提取。附 錄 C（參考性附錄）分子雜交方法C.1試劑與材料C.1.1核酸雜交相關試劑175.3gg800mLHCl調pH值至7.0，最后用定容至1L，高溫高壓滅菌后室溫保存；50×Denhardt’s1gFicoll400，1gPVP-40，1gBSA80mL100-206×SSC5×Denhardt50%(w/v)Formamide0.5%(w/v)SDS100μg/mL鮭魚精DNA（用前加熱變性后加入）；雜交液：預雜交液中加入DIG-RNA探針，稀釋成適當濃度；0.73gNaCl，0.24gNa2HPO4，0.1gNaH2PO4，5gSDS80mL水中，100洗滌液I：為1/10稀釋的封閉液；洗滌液II：將0.24gTris·base，1.16gNaCl，0.4gMgCl2溶于160mL水中，用HCl調pH至9.5，定容至200mL，過濾除菌后室溫保存；MOPS200mmol/LMOPSpH7.050mmol/LNaAc10mmol/LMaleicacid100mmolMaleicacid、150mmolNaCl，pH7.5；洗膜緩沖液：100mmolMaleicacid、150mmolNaCl、0.3%(v/v)Tween20，pH7.5；檢測緩沖液：100mmolTris-HCl(pH9.5)、100mmolNaCl；抗地高辛的酶標抗體：Anti-DIG-AP；CSPD：25mmolCSPD（用前稀釋）；帶正電的尼龍膜為AmershamPharmaciaBiotech公司的產品。TPMVd全長cDNANdeⅠT7RNARNA探1μg4μL5×2μL標記dNTPs和2μLT7RNA0.5μLRNA37℃2hRNA方法同B.2。RNA1）取3μLRNA加7μL變性緩沖液(33%甲醛、50%去離子甲酰胺和1×MOPS)，65℃水浴15min，冰浴5min，促使核酸變性；2)然后取變性核酸點于帶正電荷的尼龍膜上，每次3μL，點好后將膜晾干；（Hoefer-Uvc500，AmershamBiosciencesCorp.）1200×100J/cm23min；6×SSC（FisherScientificInternationalInc.）68℃1h；5510h；20mL~40mL2×SSC0.1%SDS5min20mL~40mL0.1×SSC0.1%SDS6815min采用Rochecm2100mL30min；1：1000020mL20min；100mL15min120