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文檔簡介
一、實驗室操作前的要求及準備二、實驗室檢測方法本文檔共42頁;當前第1頁;編輯于星期二\17點18分1實驗室操作前的要求及準備(一)實驗室條件及生物安全操作要求(二)檢測標本的要求(三)實驗前準備本文檔共42頁;當前第2頁;編輯于星期二\17點18分2(一)實驗室條件及生物安全操作要求1、暴露前免疫工作人員需要暴露前免疫意外暴露于狂犬病毒時,必需立即報告部門負責人。2、P2實驗室
操作所有潛在狂犬病感染的材料均應(yīng)在P2或P3實驗室內(nèi)進行(實驗室固定毒在P2,病人或動物分離的街毒在P3)。3、P3實驗室
對動物標本進行狂犬病毒分離時,必須在P3以上條件的專業(yè)實驗室中進行。
沒有P3實驗室,嚴禁從事狂犬病毒分離工作。本文檔共42頁;當前第3頁;編輯于星期二\17點18分34、個人防護實驗前要穿戴好防護服、眼鏡、手套,作好技術(shù)上的準備。5、防止氣溶膠擴散由于空氣傳播狂犬病毒已經(jīng)得到證實,因此高速混懸或離心操作應(yīng)在密閉狀態(tài)下進行。6、實驗后消毒處理實驗后要作好善后消毒處理,狂犬病毒對脂溶劑(肥皂水、醚、氯仿、丙酮),45~70%乙醇,碘制劑和四銨化合物敏感,操作完畢對操作臺、實驗材料等要用相應(yīng)的消毒劑或高壓蒸汽進行消毒處理。本文檔共42頁;當前第4頁;編輯于星期二\17點18分41、采集時間
(1)應(yīng)盡量采集較新鮮的標本。(2)采集時無菌操作,避免標本污染2、標本保存(1)盡量低溫保存(2)存放于無菌離心管中并進行編號。
3、標本類型(1)唾液、腦脊液、眼角膜、咬傷處皮膚組織、腦組織、血清等。(2)唾液、腦脊液、眼角膜、咬傷處皮膚組織、腦組織等均可用于病原學檢測,其中以腦組織中的陽性率最高;血清和腦脊液可用于抗體的檢測。(二)檢測標本的要求本文檔共42頁;當前第5頁;編輯于星期二\17點18分5(三)實驗前準備1、實驗室及儀器的準備(略)2、各種試劑及材料的準備(略)本文檔共42頁;當前第6頁;編輯于星期二\17點18分6實驗室檢測方法(一)DFA法(二)巢式PCR法(三)其它檢測方法(四)狂犬病診斷標準(WS281-2008)中的檢測方法(五)美國CDC狂犬病實驗室操作手冊中的檢測方法本文檔共42頁;當前第7頁;編輯于星期二\17點18分7(一)DFA法(直接熒光抗體法)
——檢測狂犬病毒抗原
免疫熒光技術(shù)Ab優(yōu)點Ag(尤其是不產(chǎn)生細胞病變的病毒安全快速簡便敏感性和特異性較高本文檔共42頁;當前第8頁;編輯于星期二\17點18分8熒光抗體的染色方法可分為兩類:直接法—熒光抗體直接與標本內(nèi)的抗原反應(yīng),優(yōu)點簡便、快捷、有效減少非特異性染色,只適用于檢測細胞內(nèi)的抗原;間接法
—熒光抗體作為第二抗體,與直接結(jié)合胞內(nèi)抗原的第一抗體反應(yīng),既可檢測胞內(nèi)抗原,也可以檢測體液中的特異抗體相對直接法操作步驟增多
DFA原理:
抗體蛋白分子
++抗原→形成抗原抗體復合物→通過熒光顯微鏡→檢測抗原
熒光素本文檔共42頁;當前第9頁;編輯于星期二\17點18分9操作:1、材料和儀器2、操作步驟i.印片:
用酒精浸泡載玻片30分鐘后取出、吹干,分別取不同部位的腦組織剖面,均勻的涂印在載玻片上;
ii.固定:
吹干后,取冷丙酮(4℃)室溫固定7~10分鐘;取出吹干,進行步驟3,或置于-70℃冰箱保存;
iii.加熒光抗體:
將稀釋好的熒光抗體滴加在固定好的抗原片上(如果從冰箱中取出,則待霧氣散掉后再進行此步驟。);
本文檔共42頁;當前第10頁;編輯于星期二\17點18分10iv.孵育:
將抗原片放在濕盒中,37℃溫育30分鐘;v.洗片:
取出后,用緩流沖洗抗原片3~5秒,再用PBS振洗2遍,蒸餾水振洗1遍,每次2分鐘,吹干;
vi.封片鏡檢:
用90%甘油(PBS)封片,加蓋玻片,熒光顯微鏡觀察。
攪拌器及染色缸
本文檔共42頁;當前第11頁;編輯于星期二\17點18分11結(jié)果判斷:
仔細觀察每個視野的熒光強度,并結(jié)合不同視野的熒光分布,作出熒光強度的等級判斷:陰性、可疑、+~++++-:無熒光;+/-:極弱的可疑熒光;無熒光“-”
本文檔共42頁;當前第12頁;編輯于星期二\17點18分12+:熒光較弱,但清晰可見;本文檔共42頁;當前第13頁;編輯于星期二\17點18分13++:熒光明亮,且多個視野均有分布;本文檔共42頁;當前第14頁;編輯于星期二\17點18分14+++~++++:熒光閃亮,可見尼基氏小體清晰,且范圍廣泛;熒光強度“+++”熒光強度“++++”本文檔共42頁;當前第15頁;編輯于星期二\17點18分15本文檔共42頁;當前第16頁;編輯于星期二\17點18分16(二)巢式PCR方法——檢測狂犬病毒核酸
傳統(tǒng)的PCR檢測模式一般需要三個步驟:制備模板:對待測標本進行核酸(DNA或RNA)提取擴增過程:采用PCR或RT-PCR技術(shù)對核酸進行變性、退火、延伸擴增;檢測過程:通過電泳等方法對PCR產(chǎn)物進行檢測。
SampleExtractRNAorDNAPCRElectrophoresisphotograph本文檔共42頁;當前第17頁;編輯于星期二\17點18分17巢式PCR(nested-PCR):巢式PCR的原理:
是設(shè)計兩對引物,其中一對引物在另一對引物擴增產(chǎn)物的片段上,通過二次PCR反應(yīng)對某個基因進行檢測。通常第一次采用能擴增較大片段的引物,經(jīng)過循環(huán)擴增后,將第一次擴增的產(chǎn)物作為模板進行第二次擴增。
優(yōu)點:
特異性、靈敏度均比常規(guī)PCR好。缺點:
比常規(guī)PCR易污染。本文檔共42頁;當前第18頁;編輯于星期二\17點18分18巢式PCR方法的操作:
1、RNA提?。篢rizol法
(1)以下步驟在P2生物安全柜中進行
取不同位置的少量腦組織(50-100mg)+1000μlTrizol先加200μl(研磨均勻)然后加滿至1000μl[液體(唾液、尿液等)取250μl+750μlTrizolLS]↓-70℃過夜或顛倒Epp管30~40次以便充分混勻內(nèi)容物,室溫放置5分鐘(此步完可-70℃保存1個月)
本文檔共42頁;當前第19頁;編輯于星期二\17點18分19(2)以下步驟可在普通實驗室進行
-70℃取出,室溫融化→加200μl氯仿,快速顛倒Epp管數(shù)次(30秒),使其呈淡粉紅色↓室溫放置3min↓4℃離心,12000rpm,15min(其間標記新的離心管,每管中加600μl異丙醇)↓取離心后水相600μl,加入新的離心管中,輕柔混勻↓室溫放置10min(-20℃放置30分鐘效果更佳)↓4℃離心,12000rpm,10min↓
本文檔共42頁;當前第20頁;編輯于星期二\17點18分20緩緩倒掉上清,用槍頭輕輕吸去殘存液體,可見少量沉淀↓加1ml75%乙醇(DEPCH2O新鮮配制)洗滌沉淀↓4℃離心12000rpm,10min↓緩緩倒掉上清,用槍頭輕輕吸去殘存液體,室溫干燥數(shù)分鐘(加入75%乙醇至-70℃可長期貯存1~2年)↓腦組織的沉淀溶于70ulDEPCH2O中(2個EPP管分裝)[液體(唾液、尿液等)的沉淀溶于35ulDEPCH2O中]↓直接進行逆轉(zhuǎn)錄或-70℃貯存
本文檔共42頁;當前第21頁;編輯于星期二\17點18分21注意事項:
1.操作時一定戴口罩手套,保證離心管槍頭無RNA酶2.一次提取核酸,樣本數(shù)不要太多(10個左右)3.加入氯仿后到加入異丙醇之前的操作應(yīng)盡量快速且作用時間準確,否則容易降低提取效率4.異丙醇和乙醇作用時間略長不影響結(jié)果5.加入異丙醇后所有的混均操作要輕柔,加液體時貼壁緩流,以免破壞到所提核酸6.盡量縮短RNA在空氣及室溫的暴露時間,水溶的RNA一定要低溫保存7.標本及時放回-20℃或-70℃
本文檔共42頁;當前第22頁;編輯于星期二\17點18分222、逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA1)pd(N)6稀釋至0.2ug/ul2)水浴預熱至65℃(其間標記反應(yīng)管)3)33ulRNA液65℃水浴10min(其間準備冰盒或碎冰)4)冰浴2min,瞬時離心。5)將液體轉(zhuǎn)移至試劑盒反應(yīng)管中32ul,先不要混勻。6)再向反應(yīng)管中加入1ulpd(N)60.2ug/ul或特異引物各0.5ul,使總體積達到33ul,室溫1min,混勻,瞬時離心。7)37℃水浴,60min8)-20℃或-70℃保存cDNA本文檔共42頁;當前第23頁;編輯于星期二\17點18分233、巢式PCR:本文檔共42頁;當前第24頁;編輯于星期二\17點18分24本文檔共42頁;當前第25頁;編輯于星期二\17點18分25瓊脂糖凝膠電泳
1.電泳槽中注入緩沖液TAE2.將做好的瓊脂膠放入電泳槽(加樣孔在負極方向)3.Marker加5ul,樣品加10ul5.電壓:100V6.時間:30min
照相:凝膠成像儀/紫外透射儀本文檔共42頁;當前第26頁;編輯于星期二\17點18分26(三)其它檢測方法1、ELISA——檢測抗原:包被抗體:用pH9.6的碳酸鹽緩沖液稀釋的抗狂犬病毒核衣殼IgG包被96孔酶標板,4℃過夜;
封閉:用含0.3%牛血清白蛋白和5%蔗糖的pH9.6碳酸鹽緩沖液封閉30分鐘;加待檢標本:將采集到的標本研磨,用pH7.4PBS制成30%的懸液,離心取上清加入酶標板孔內(nèi),同時設(shè)陰性、陽性對照,200μl/孔,37℃孵育1小時;洗板:洗板四次;加酶標抗體:后加入純化的酶標記抗狂犬病毒抗體200μl/孔,37℃l小時;洗板:同上;加底物:加入酶反應(yīng)底物,室溫作用30分鐘;終止反應(yīng):加2MH2SO4終止反應(yīng);觀察結(jié)果:肉眼觀察或酶標儀測定結(jié)果。本文檔共42頁;當前第27頁;編輯于星期二\17點18分272、熒光灶抑制試驗——檢測中和抗體
中和抗體:
為疫苗免疫力程度的評判指標中和抗體水平等于或高于0.5IU/ml血清,表示能得到有效的保護快速熒光灶抑制試驗(RFFIT):為WHO推薦的檢測方法
制備細胞懸液(1×10cells/ml的BSR細胞懸液)
↓
稀釋血清和病毒(待測血清、對照血清、標準血清、病毒固定毒CVS株)
↓
中和血清和病毒(0.1ml血清和標準病毒稀釋液0.1m1,37℃中和1.5小時)
↓
檢測剩余病毒(每孔加入50μl制備好的細胞懸液,37℃、5%C02過夜培養(yǎng))
↓
固定(棄掉培養(yǎng)液,PBS洗一次,丙酮固定)
↓
熒光抗體檢測(干燥后,加熒光素標記的抗狂犬病毒抗體,37℃30分鐘)
↓
觀察結(jié)果(PBS洗3次,熒光顯微鏡觀察結(jié)果)
↓
計算中和抗體滴度(實驗組中能使熒光灶抑制≥50%的血清最高稀釋倍數(shù),即為被檢血清的中和抗體滴度)
步驟本文檔共42頁;當前第28頁;編輯于星期二\17點18分283、病毒分離A.細胞培養(yǎng)法——分離病毒研磨標本→
制成懸液(用PBS或MEM,30%)→
離心(4℃2000r/min離心20m)→
取上清接種細胞(鼠神經(jīng)瘤細胞、Vero細胞或BHK21細胞)→
吸附(2h)→
加維持液→
孵育(37℃、5%C02、4~5天)→
鑒定B.乳小白鼠接種法——分離病毒研磨標本
→
制成懸液→
離心→取上清接種乳鼠腦內(nèi)(1~2日齡)→飼養(yǎng)→觀察發(fā)病情況(未發(fā)病的鼠保留至21天后作DFA檢測)本文檔共42頁;當前第29頁;編輯于星期二\17點18分294、ELISA——檢測狂犬病毒抗體ELISA方法測定的是總抗體,不代表具有保護性的中和抗體水平其結(jié)果僅供參考。5、染色鏡檢——檢測內(nèi)基氏小體本文檔共42頁;當前第30頁;編輯于星期二\17點18分30(四)狂犬病診斷標準(WS281-2008)中的檢測方法1、DFA法——檢測狂犬病毒抗原
意義:陽性結(jié)果,表明有狂犬病毒感染,有確診意義。2、ELISA——檢測狂犬病毒抗原
意義:檢測到狂犬病毒抗原陽性有診斷意義。3、細胞培養(yǎng)方法——分離狂犬病毒
意義:陽性結(jié)果表明有狂犬病毒感染,有確診意義。本文檔共42頁;當前第31頁;編輯于星期二\17點18分314、RT-PCR——檢測狂犬病毒核酸原理:狂犬病毒為負鏈RNA病毒,PCR前需要經(jīng)過逆轉(zhuǎn)錄酶作用,合成一條cDNA鏈(RT),再進行PCR。檢測步驟:
1)病毒RNA的提取2)逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA3)PCR擴增4)電泳意義:陽性結(jié)果表明有狂犬病毒感染,有確診意義。本文檔共42頁;當前第32頁;編輯于星期二\17點18分325、狂犬病特異性抗體檢測狂犬病特異性抗體:
在自然感染情況下,狂犬病毒→通過帶有病毒的動物唾液→進入機體傷口→在入侵部位基本上不增殖(一般也不侵入血流)→故不能形成病毒血癥。
在感染后,狂犬病毒或其抗原→不能與機體免疫系統(tǒng)廣泛接觸→故機體無免疫應(yīng)答反應(yīng)(針對狂犬病毒)。
晚期,狂犬病→破壞血腦屏障→大量病毒抗原→進入血流→刺激機體→產(chǎn)生大量特異性抗體。
因此,通常在發(fā)病早期血清中查不到抗體或抗體滴度很低,只在臨床疾病的晚期出現(xiàn)。本文檔共42頁;當前第33頁;編輯于星期二\17點18分33A.快速熒光灶抑制試驗(RFFIT)——測定中和抗體意義:中和抗體水平等于或高于0.5IU/ml血清,表示能得到有效的保護B.ELISA——檢測狂犬病毒抗體意義:
1)接種過狂犬病疫苗的患者抗體滴度大于0.5IU/ml,表明已獲得一定的保護。2)未接種過疫苗的患者的抗體滴度大于1IU/ml,且近期有4倍增高,可考慮狂犬病。
3)部分狂犬病患者在臨死前抗體滴度也可能異常增高。本文檔共42頁;當前第34頁;編輯于星期二\17點18分34(五)美國CDC狂犬病實驗室操作手冊中的檢測方法
1、DFA——檢測狂犬病毒抗原
當以下情況發(fā)生時,需要重復(證實性)檢測:
1)包涵體顆粒典型,但視野不到10%,或視野大于10%,但
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