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文檔簡介
0 0ICS11.40.10 0CCSC30中華人民共和國醫(yī)藥行業(yè)標準YY/T
1939—2024醫(yī)療器械細菌內(nèi)毒素試驗方法重組C因子法t i c c tTesforbactert i c c t-
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-國家藥品監(jiān)督管理局 發(fā)
布YY/T1939—2024前 言本文件按照
GB/T1.標準化工作導則 第1部分:標準化文件的結(jié)構(gòu)和起草規(guī)則》的規(guī)定起草。請注意本文件的某些內(nèi)容可能涉及專利。本文件的發(fā)布機構(gòu)不承擔識別專利的責任。本文件由國家藥品監(jiān)督管理局提出。S本文件由全國醫(yī)療器械生物學評價標準化技術(shù)委員會(AC/TC248)歸口。S本文件起草單位:山東省醫(yī)療器械和藥品包裝檢驗研究院、中國食品藥品檢定研究院、遼寧省醫(yī)療器械檢驗檢測院。本文件主要起草人:孫令驍、邵安良、余洋、秦越、王小蕾、王詩琪。YY/T1939—2024引 言細菌內(nèi)毒素是革蘭氏陰性菌細胞壁的重要成分,通常由多糖
O
型抗原、核心低聚糖和類脂
A
組成,其中類脂
A是內(nèi)毒素的生物活性中心。從臨床角度看,內(nèi)毒素引起的膿毒癥、膿毒性休克和多器官衰竭是死亡率較高的全身性疾病。在自然界中,革蘭氏陰性菌廣泛分布于水(江河和海洋)、空氣、土壤和人體中,醫(yī)療器械制造過程中的高壓蒸汽滅菌、輻照和氣體滅菌能夠殺滅細菌,但不能滅活內(nèi)毒素。由于細菌內(nèi)毒素廣泛存在于自然界中,性質(zhì)穩(wěn)定并且可以穿透常規(guī)的除菌濾膜,因此很難預防細菌內(nèi)毒素污染。目前凝膠法和光度測定法是醫(yī)療器械細菌內(nèi)毒素試驗最主要的試驗方法之一,該方法具有較高的靈敏性、特異性、準確性和經(jīng)濟性,但該方法需要使用大量的鱟血來生產(chǎn)鱟試劑,而東方鱟已成為我國的二級保護動物,因此繼續(xù)推廣使用凝膠法和光度測定法不利于鱟資源的保護和發(fā)展。重組C因子法是細菌內(nèi)毒素檢查法的一種補充方法,該方法的推廣使用,可保護生態(tài)環(huán)境、減緩鱟資源枯竭速度,且本法不存在
G因子旁路干擾,具有較高的專屬性。YY/T1939—2024醫(yī)療器械細菌內(nèi)毒素試驗方法重組C因子法1
范圍本文件描述了利用重組C因子法檢測醫(yī)療器械中細菌內(nèi)毒素含量的試驗方法。本文件適用于對醫(yī)療器械進行細菌內(nèi)毒素的檢測。2
規(guī)范性引用文件本文件沒有規(guī)范性引用文件。3
術(shù)語和定義下列術(shù)語和定義適用于本文件。13.1C因子
factorC鱟試劑中一種對細菌內(nèi)毒素敏感,且能選擇性識別內(nèi)毒素的蛋白。23.2重組C因子
recombinantfactorC(1)鱟試劑中的C因子
3.
通過基因重組技術(shù)在真核細胞中表達的重組蛋(1)4
試驗原理重組C因子法是利用重組C因子試劑與內(nèi)毒素反應過程中的熒光信號變化而測定內(nèi)毒素含量的方法,重組C因子與細菌內(nèi)毒素結(jié)合后被激活,由無活性的蛋白酶原轉(zhuǎn)變成具有生物活性的蛋白酶,識別并催化下游熒光底物產(chǎn)生熒光信號,熒光信號的強度和內(nèi)毒素濃度成比例。分別測量重組C因子試劑和供試品溶液孵育前后的熒光值并校正,通過標準曲線計算出供試品中細菌內(nèi)毒素的含量。5
主要設(shè)備熒光酶標儀或多功能酶標儀、電熱干燥箱、旋渦混合器等。6
試劑和材料細菌內(nèi)毒素國家標準品或細菌內(nèi)毒素工作標準品(以下簡稱“內(nèi)毒素標準品”)、重組
C因子試劑盒、細菌內(nèi)毒素檢查用水、移液器、吸頭、微孔板。注1:重組C因子試劑盒中一般包括重組C因子酶溶液、熒光底物、緩沖液等試劑。2注2:試驗所用耐熱器具常用干熱滅菌法,用電熱干燥箱(50℃、至少30min)去除可能存在的外源性內(nèi)毒素;塑料2器具如微孔板、與移液器配套的吸頭等,選用標明無熱原或內(nèi)毒素含量<0.05EU/mL的器具。1
λ ………
λ …………(1)7
供試品溶液的制備以細菌內(nèi)毒素檢查用水為浸提介質(zhì),根據(jù)醫(yī)療器械的細菌內(nèi)毒素限值確定浸提介質(zhì)最大體積。按1照公式()計算浸提介質(zhì)最大體積。1V=
L式中:EV
———浸提介質(zhì)最大體積,單位為毫升每件(mL/件);EL
———產(chǎn)品細菌內(nèi)毒素限值,U/件;E3λ
———標準曲線上最低的內(nèi)毒素濃度(不應低于所用重組C因子試劑的標示檢測限),U/mL。E3浸提條件一般選擇(7±1)℃浸提不少于1h,視供試品具體性狀,按照如下合適的方法進行供試品溶液的制備。a)
采用細菌內(nèi)毒素檢查用水浸泡供試品內(nèi)腔的方法制備供試品溶液。若存在內(nèi)腔不易浸泡等情況,宜將供試品剪碎或拆散處理,保證細菌內(nèi)毒素檢查用水充分接觸供試品內(nèi)部。b)
將供試品與患者直接或間接接觸部分置于無熱原玻璃器皿內(nèi),必要時可將供試品剪碎或拆散處理,加入細菌內(nèi)毒素檢查用水振搖數(shù)次。供試品溶液貯存不應超過2h。對于結(jié)構(gòu)組成復雜的供試品,宜對其拆解后分別進行浸提,收集浸提液,即得供試品溶液。對于液體類產(chǎn)品,宜直接將液體作為供試品溶液。部分供試品溶液制備方法見相應的產(chǎn)品標準,如
GB18671、YY/T1282等。必要時,可使用適宜的酸、堿溶液或緩沖液調(diào)節(jié)供試品溶液(或其稀釋液)的pH,所用溶劑、酸堿溶液及緩沖液應不含內(nèi)毒素和干擾因子。8
試驗步驟18. 儀器增益調(diào)節(jié)1熒光酶標儀的熒光信號被轉(zhuǎn)換為電子信號,可使用增益設(shè)置或靈敏度設(shè)置對該電子信號進行“調(diào)諧”。當檢測到的信號過弱時,調(diào)高儀器的增益/靈敏度設(shè)置,或當信號過強時,則調(diào)低儀器的增益/靈敏度設(shè)置。553重組C因子試劑批次改變時,進行儀器增益調(diào)節(jié)。相對熒光單位(RFU,一種表示熒光信號強弱的553單位)的對數(shù)與增益的對數(shù)相關(guān)。因此,可通過分析0.EU/mL的重復測量值來確定最佳增益。使用細菌內(nèi)毒素檢查用水將內(nèi)毒素標準品配制成0.EU/mL的溶液,加入微孔板中,至少3個平行孔,于(7±1)℃的溫度下預孵育至少5min后取出,每個孔加入說明書規(guī)定比例的重組
C因子試劑,設(shè)置好激發(fā)/發(fā)射波長后進行孵育,在時間點零時和反應終點時對每孔使用幾種不同增益值進行檢測。用反應終點時的RFU減去在時間點零時的RFU得到ΔRFU值,計算平行孔的平均ΔRFU
值,根據(jù)ΔRFU值選擇最佳增益值。55 ,52示例:熒光酶標儀的
RFU
范
圍
一
般
為
0~99999,0.
EU/mL
內(nèi)
毒
素
標
準
品
推
薦
的
RFU
范
圍55 ,5210000,1000~10000的
RFU范圍對應的對數(shù)范圍是3~4,對數(shù)中點是3.。因此
0.EU/mL對應的
ΔRFU
大約為3500,選擇
ΔRFU數(shù)值接近3500的增益值即為最佳增益值。8. 標準曲線的可靠性試驗218.. 當使用新批號的重組C因子試劑或重組C因子法試驗條件有任何可能會影響檢驗結(jié)果的改21時,應進行標準曲線的可靠性試驗。將內(nèi)毒素標準品用細菌內(nèi)毒素檢查用水溶解,在旋渦混合器上混勻2編號內(nèi)毒素濃度被加入內(nèi)毒素的溶液平行孔數(shù)a溶液
A無供試品溶液至少2b溶液B標準曲線的中點(或附近點)的濃度(設(shè)為λm)供試品溶液至少2c溶液C至少3個濃度(最低一點設(shè)定為λ)細菌內(nèi)毒素檢查用水每一濃度至少2d溶液
D無細菌內(nèi)毒素檢查用水至少2a
浸提介質(zhì)體積不超過公式(1)中浸提介質(zhì)最大體積的供試品溶液。b
加入了標準曲線中點或靠近中點的一個已知內(nèi)毒素濃度的,且與溶液
A有相同稀釋倍數(shù)的供試品溶液。c
用于制備標準曲線的內(nèi)毒素標準品溶液(相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不應大于10),最高濃度和最低濃度應在重組
C因子試劑的檢測限內(nèi)。d
陰性對照。YY/T1939—202415min或參照標準品說明書中要求的混勻時間進行操作,制成至少3個濃度的稀釋液(相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不應大于10),最低濃度不應低于所用重組
C因子試劑的標示檢測限。每稀釋一步均應在旋渦混合器上混勻30s或參照標準品說明書中要求的混勻時間進行操作,每一濃度至少做3個平行孔。使用內(nèi)毒素檢查用水作為陰性對照(細菌內(nèi)毒素含量小于0.05EU/mL的滅菌注射用水),陰性對照應設(shè)置不少于2個平行孔。223 9r38.. 按照重組C因子試劑說明書的要求向微孔板中相應的孔內(nèi)加入一定體積的陰性對照和內(nèi)223 9r3標準品,于(7±1)℃的溫度下預孵育至少5min,取出微孔板,按說明書要求將試劑盒中各試劑按比例混合,每個孔加入一定體積的重組C因子試劑,設(shè)置好激發(fā)/發(fā)射波長,讀取時間零點的熒光值后進行孵育,孵育完成后再次讀數(shù)。當陰性對照的RFU小于標準曲線的最低點時,可將數(shù)據(jù)進行線性回歸分析。如選擇線性回歸分析結(jié)果,標準曲線的相關(guān)系數(shù)()的絕對值應大于或等于0.80,試驗方為有效。否則重新試驗。8. 干擾試驗為了確定供試品溶液是否會干擾內(nèi)毒素和重組C因子的反應,進行新產(chǎn)品的內(nèi)毒素檢查試驗前應進行干擾試驗。選擇標準曲線中點或一個靠近中點的內(nèi)毒素濃度(設(shè)為λm),作為供試品干擾試驗中添加的內(nèi)毒素濃度。按表1制備溶液
A、溶液B、溶液C和溶液D。表1
干擾試驗溶液的配制22將試驗溶液加入微孔板內(nèi),按照8..的操作步驟進行試驗,按所得線性回歸方程分別計算出溶表1
干擾試驗溶液的配制22將試驗溶液加入微孔板內(nèi),按照8..的操作步驟進行試驗,按所得線性回歸方程分別計算出溶液2R /CR=(
s-Ct)λm
×100% …………(2 /C式中:R
———回收率;EECs
———溶液B的內(nèi)毒素含量,U/mL;EECt
———溶液
A的內(nèi)毒素含量,U/mL;Eλm
———溶液B中加入的標準曲線的中點(或附近點)的內(nèi)毒素濃度,U/mL。E當內(nèi)毒素的回收率在50%~200%之間,則認為在此試驗條件下供試品溶液不存在干擾作用。當內(nèi)毒素的回收率不在上述指定的范圍內(nèi),若供試品溶液在小于最大浸提體積的情況下對試驗有干擾,應對供試品進行不超過最大浸提體積的進一步稀釋,除此之外還可通過其他適宜的方法(如過濾、3YY/T1939—2024中和、透析或加熱處理等)排除干擾后再重復干擾試驗,應確保所選擇的處理方法能有效地排除干擾且不會使內(nèi)毒素失去活性。當重組C因子試劑、產(chǎn)品的配方、結(jié)構(gòu)組成、生產(chǎn)工藝改變或試驗環(huán)境中發(fā)生了任何有可能影響試驗結(jié)果的變化時,重新進行干擾試驗。48. 檢查法43按照8.的操作步驟進行試驗,獲得供試品溶液反應終點和時間零點的RFU值。39
結(jié)果計算和評價19. 結(jié)果計算1反應終點和時間零點的
RFU
的差值為
ΔRFU,計算平行孔的平均
ΔRFU,并用陰性對照進行校3正,按照公式()計算細菌內(nèi)毒素濃度。3YXlg(
)=A
×lg(
)+B …………(3YX式中:Y
———ΔRFU;A———直線斜率;EX———細菌內(nèi)毒素濃度,U/mL;EB———直線截距。注:公式由建立標準曲線獲得。29. 結(jié)果評價與解釋2219.. 試驗應符合以下三個條件方為有效21 9ra)
系列溶液C的結(jié)果應符合標準曲線的相關(guān)系數(shù)()的絕對值大于或等于0.80的要 9rb)
用溶液B中的內(nèi)毒素濃度減去溶液A中的內(nèi)毒素濃度后,計算出的內(nèi)毒素的回收率在50%~200%的范圍內(nèi);c)
陰性對照溶液D的RFU小于標準曲線最低點的RFU。229.. 若供試品溶液所有平行孔的平均內(nèi)毒素濃度乘以稀釋倍數(shù)后,小于規(guī)定的內(nèi)毒素限值,判
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