生物藥劑學(xué)與藥物動力學(xué)實驗講義

1、生物藥劑學(xué)與藥物動力學(xué)實驗講義中藥藥劑學(xué)教研室編寫2006年12月目 錄實驗一 片劑溶出度試驗 4實驗二 尿藥法測定水楊酸鈉片劑的生物利用度 7實驗三 撲熱息痛血管外給藥的藥物動力學(xué)研究 10實驗四 大鼠在體小腸吸收實驗 13實驗五 氨茶堿藥物動力學(xué)的研究 15生物藥劑學(xué)與藥物動力學(xué)實驗須知生物藥劑學(xué)與藥物動力學(xué)屬于藥物臨床應(yīng)用學(xué)科的范疇，具有綜合性強(qiáng)、應(yīng)用性強(qiáng)、創(chuàng)新性強(qiáng)等特點。生物藥劑學(xué)與藥物動力學(xué)實驗是教學(xué)的重要組成部分，是理論與實踐結(jié)合的主要方式之一。通過實驗課不僅能印證、鞏固和擴(kuò)展教學(xué)內(nèi)容，還能訓(xùn)練基本操作技能，培養(yǎng)良好的實驗作風(fēng)。為保證實驗課順利進(jìn)行，并達(dá)到預(yù)期的目的，實驗中必須做到

2、以下六個方面：1預(yù)習(xí)實驗內(nèi)容 通過預(yù)習(xí)，明確實驗?zāi)康呐c要求，對實驗內(nèi)容做到心中有數(shù)，并能合理安排實驗順序與時間。要明確每個處方中藥物與輔料的用途。2遵守實驗紀(jì)律 不遲到，不早退，不曠課，保持實驗肅靜，未經(jīng)許可，不得將實驗室物品帶離實驗室。3重視藥劑衛(wèi)生 進(jìn)入實驗室必須穿整潔的白工作服。先將工作臺面擦洗干凈再開始做實驗。實驗過程中應(yīng)始終注意臺面、地面的整潔，各種廢棄物應(yīng)投入指定位置，不能隨手亂丟，更不能棄入水槽內(nèi)。完成實驗后，應(yīng)將容器、儀器清潔，擺放整齊，臺面擦凈，經(jīng)教師同意后方能離開。值日生負(fù)責(zé)整理公用器材，清掃實驗室，關(guān)好水、電、門、窗。4. 細(xì)心操作、勤于思考 稱量藥品、試劑時，要在稱量前

3、（拿取時）、稱量時和稱量后（放回時）進(jìn)行三次核對。稱量完畢應(yīng)立即蓋好瓶塞，放回原處。對劇毒藥品更要仔細(xì)核對名稱與劑量，并準(zhǔn)確稱取。實驗中要嚴(yán)格控制好實驗條件，認(rèn)真操作每一道工序，以保證成品質(zhì)量。實驗成品應(yīng)標(biāo)明名稱、規(guī)格、配制者、配制時間，并交教師驗收。實驗中遇到問題應(yīng)先獨立思考，再請教他人。在實驗中逐步形成整潔、細(xì)致、嚴(yán)謹(jǐn)、冷靜、善于觀察、善于思考、勤于動手的實驗風(fēng)格。5正確使用儀器、注意安全 使用儀器時要按使用方法正確操作，不熟悉操作方法時，應(yīng)在教師指導(dǎo)下使用。各種儀器、容器使用時要注意輕拿、輕放，用畢要清潔后放回規(guī)定位置。6. 寫好實驗報告 實驗報告是考察學(xué)生分析總結(jié)實驗資料能力和寫作能力

4、的重要方面，亦是評定實驗成績的重要依據(jù)。實驗報告的格式如下所示：【實驗?zāi)康募霸怼繉懗鰧嶒災(zāi)康募霸??！緦嶒灢僮鳌繉懗鼍唧w實驗步驟和實驗條件?！緦嶒灲Y(jié)果】記錄各采樣時間點及采樣的狀態(tài)，按要求對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，并將全班數(shù)據(jù)進(jìn)行綜合，求其平均值和標(biāo)準(zhǔn)差。【討論】闡述實驗原理、實驗收獲與教訓(xùn)、建議等?！舅伎碱}】回答實驗思考題。每一實驗內(nèi)容逐一按以上順序書寫實驗報告。實驗一 片劑溶出度試驗一、實驗?zāi)康?. 掌握片劑溶出度測定方法及數(shù)據(jù)處理方法；2. 了解溶出度測定的重要意義及其應(yīng)用。二、實驗提示片劑溶出度是指片劑主藥在體外協(xié)助適當(dāng)裝置于適宜介質(zhì)中溶出的速度和程度。測定溶出度的依據(jù)是Noyes-Whitn

5、ey的擴(kuò)散理論，近年生物藥劑學(xué)的研究表明，難溶性藥物的片劑，崩解時限不能作為判斷難溶性藥物片劑吸收的指示，因為片劑崩解后的粉粒還不能直接被機(jī)體所吸收，溶解是吸收的主要過程，溶解度小于0.11mgmL的藥物，其體內(nèi)吸收常受其溶出速度的影響。溶出速度除與藥物的晶型、粒經(jīng)大小有關(guān)外，還與制劑的生產(chǎn)工藝、輔料、儲存條件等有關(guān)。所以為了控制這些片劑的質(zhì)量，需測定血藥濃度或尿藥濃度，對于一些體外溶出度與體內(nèi)血藥濃度有相關(guān)性的藥物，則可測定其主藥成分的體外溶出度作為控制該片劑質(zhì)量的一項指標(biāo)。本實驗以對乙酰氨基酚片為樣品，測定對乙酰氨基酚的溶出度。原理：對乙酰氨基酚在溶出介質(zhì)中，在257nm 波長處

6、有最大吸收，因此可用紫外分光光度法進(jìn)行測定，測定其在257nm的吸收度（A），用標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算其對應(yīng)濃度。三、實驗內(nèi)容1. 測出比較法的A值， 用A-W表示，作對照品。 取樣品10片，精密稱定，計算平均片重W，將稱定的片子研細(xì)，再精密稱取相當(dāng)于W的量，加約600mL溶出介質(zhì)（稀鹽酸24mL加水至1000mL），水浴（4050）中攪伴溶解，冷至室溫，移入1000mL容量瓶中，加入介質(zhì)至足量，搖勻，過濾，精密吸取濾液1mL置50mL容量瓶中，加入0.04氫氧化鈉溶液稀釋至50mL，搖勻，照分光光度法（中國藥典2005年版二部附錄IVA），在257nm的波長處測定吸收度A值，用A-W表示。2. 對

7、乙酰氨基酚片溶出度的測定 A儀器準(zhǔn)備 轉(zhuǎn)籃是用40目不銹鋼制成的圓筒，高3.66cm，直徑2.5cm，頂部通過金屬棒連接于變速小馬達(dá)上。轉(zhuǎn)籃懸吊于盛有溶媒的容器中，距溶出杯底2.5cm，使用前安裝就緒，開動電機(jī)空轉(zhuǎn)，檢查電路是否暢通，有無異常噪音，轉(zhuǎn)籃的轉(zhuǎn)動是否平穩(wěn)，加熱恒溫裝置及變速裝置是否正常，如一切符合要求，就可以開始測定樣品。 B. 測定方法 取溶出介質(zhì)（稀鹽酸24mL加水至1000mL）1000mL，加熱至37，置溶出杯中，調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)籃轉(zhuǎn)速為100轉(zhuǎn)分，將精密稱定重量的藥片一片（W）放在轉(zhuǎn)籃內(nèi)，以溶出介質(zhì)接觸藥片時為零時刻開始計時，然后按2、5、10、15、20、30分鐘定時取樣，取樣位

8、置固定在轉(zhuǎn)籃上端液面中間、距離杯壁1cm處，每次取樣5mL，將樣品液過濾，吸取濾液1mL，余按實驗內(nèi)容1，測出比較法A值項下，自“置50mL容量瓶”始，依法測定規(guī)定時間藥片溶出的A值，以As 表示。注：（1） 對所用的溶出度測定儀，應(yīng)預(yù)先檢查其是否運轉(zhuǎn)正常，并檢查溫度的控制，轉(zhuǎn)速等是否精確、升降轉(zhuǎn)籃是否靈活等。（2） 溶出方法分轉(zhuǎn)籃法、槳法和小杯法三種。本實驗選用轉(zhuǎn)籃法，轉(zhuǎn)籃的尺寸和結(jié)構(gòu)應(yīng)符合藥典規(guī)定。（3）每次取出樣品液后，應(yīng)同時補(bǔ)充相同體積的空白溶液。（4） 根據(jù)藥典規(guī)定，應(yīng)同時測定6片的溶出度，鑒于實驗時間限制，每實驗組僅要求完成1片的測試。四、測定結(jié)果與數(shù)據(jù)處理1. 每片測定結(jié)果記錄N

9、o.123456取樣時間（min）2510152030AsAw累計溶出5Aw=溶出度的計算累計溶出%= ?2. 用普通坐標(biāo)紙作圖求t50 以累計溶出百分比對溶出時間逐一描點,用圖估法擬合-平滑曲線,過累計溶出百分比50%處引一與t軸平行的直線,與溶出曲線相交于A,過A點向t軸引垂線交于t1，此t1即為t50，此值供方差分析用。3. 用威布爾分布概率求t50，td和m三個參數(shù) 從上面所作溶出曲線所見，累計溶出百分比對相應(yīng)時間各數(shù)據(jù)在一般直角坐標(biāo)紙上作圖，并不成直線關(guān)系，但可將累計溶出百分比與時間的關(guān)系看作統(tǒng)計學(xué)上的概率分布函數(shù)，用威布爾概率紙使之直線化，從圖上即可極為方便的找到t50（溶解50所

10、需時間），td（溶解63.2所需時間）及m（斜率）三個參數(shù)，在威布爾概率紙作圖的基本步驟如下：A. 以F(t)尺代替累計溶出百分比,t尺為釋放時間,用原數(shù)據(jù)描點,若各點基本上呈直線分布，則可直接擬合一條直線，尤其注意照顧F(t)在30至70范圍內(nèi)的點，使之優(yōu)先貼近該直線。B. 若各點排布呈曲線狀，則沿曲線趨勢延伸，與t尺交點的數(shù)值作為的初步估計值，以F(t)對t-再作圖，若所得各點的排列接近直線，則擬合成直線，若F(t)對t-作圖仍為一曲線，則可用類似的方法反復(fù)修改，直至作得一直線為止。C. 在F(t)對t（或F(t)對t-）所作圖上擬合一直線，有X1和Y軸的交點（稱m點）作該直線的平行線，該

11、平行線和Y軸交點在Y尺上投影點的讀數(shù)即為m值（取絕對值）。D. 所擬合的直線與X軸的交點在t尺上投影點的讀數(shù)即為m的估計數(shù)，本實驗中稱為td值（溶出63.2所需時間）；與溶出50的交點在t尺上的投影點的讀數(shù)即為t50。E. 用威布爾概率紙求出t50，td和m三個參數(shù)后，可利用方差分析，相關(guān)與回歸分析的數(shù)理統(tǒng)計法來評定同類產(chǎn)品不同批號或不同廠家的片劑質(zhì)量；另外，還可以評定同一產(chǎn)品體內(nèi)、體外的相關(guān)程度。4. 用溶出參數(shù)作方差分析 將兩個批號共八片，按本實驗方法測得的累計溶出百分比共八組數(shù)據(jù)，經(jīng)威布爾概率紙作圖得八條直線，由圖中求出t50，td和m值，將所得參數(shù)列表如下，供方差分析用。參數(shù)方差來源自

12、由度離差平方和方差F值顯著性t50組間組內(nèi)合計td組間組內(nèi)合計m組間組內(nèi)合計思考題：檢查固體制劑的溶出度有何意義？哪些種類的制劑需檢查溶出度？實驗二 尿藥法測定水楊酸鈉片劑的生物利用度一、實驗?zāi)康?. 通過實驗掌握用尿藥速率法求算體內(nèi)藥動學(xué)參數(shù)；2. 通過實驗掌握藥物的生物利用度的一般研究方法；3. 通過測定求出水楊酸鈉的生物半衰期。二、實驗原理 藥物在體內(nèi)的吸收、分布、代謝和排泄等過程既有區(qū)別，又有聯(lián)系，具有一定相關(guān)性。藥物在體內(nèi)的速度過程變化規(guī)律及生物利用度等相關(guān)參數(shù)的提取，要通過實驗采用血藥濃度法、尿藥濃度法或唾液藥物濃度法等方法獲得。 在多數(shù)情況下，尿藥濃度高于血藥濃度，定量分析精密度

13、好，測定方法較易建立，且取樣方便，可免除受試者多次抽血的痛苦。因此，在體內(nèi)藥物大部分以原型從尿中排出的條件下，通常可用尿藥法提取消除速度常數(shù)、生物半衰期等動力學(xué)參數(shù)。 生物利用度反應(yīng)藥物在體內(nèi)被吸收的速度和程度，它可分為相對生物利用度與絕對生物利用度。當(dāng)藥物的口服制劑與靜脈注射劑相比較，可求算絕對生物利用度；與其他制劑相比較，可求算相對生物利用度。本實驗采用口服真溶液劑為參比，測定水楊酸鈉片劑的相對生物利用度。三、實驗方法 1. 繪制水楊酸鈉標(biāo)準(zhǔn)曲線 精密稱取干燥恒重的水楊酸鈉0.5g，置100mL容量瓶中，加蒸餾水溶解并稀釋至刻度，各精密吸取此溶液1.5、2.5、3.5、4.5、5.5mL分

14、別置50mL容量瓶中，加蒸餾水稀釋至刻度，搖勻，得濃度分別為0.15、0.25、0.35、0.45、0.55mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。取干燥潔凈的帶塞玻璃試管5支，分別精密吸取以上各溶液的水楊酸鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液1mL于試管中，再分別加入Fe(NO3)3試管5mL，混合均勻，用72-100型分光光度計于540nm波長處測定吸收度，將測得數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析，得吸收度對標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的回歸方程，即為標(biāo)準(zhǔn)直線。參比液以蒸餾水1mL代替標(biāo)準(zhǔn)液。2. 測定生物利用度A. 實驗方法I. 選擇受試者的條件II. 對受試者的要求a) 服藥前48小時開始,不吃任何含水楊酸鹽類食物。b) 小便應(yīng)按規(guī)定收集完全，不得損失，并保持尿

15、樣不污染。在收集尿樣期間內(nèi)不作劇烈運動。c) 早晨收集空白尿，空腹時口服水楊酸鈉片0.6g，對照組口服相當(dāng)于0.6g的水楊酸鈉真溶液。d) 按以下時間喝水和收集尿樣，并記錄排尿量：服藥當(dāng)天：7：30 喝水 150mL7：55 小便（收空白尿）8：00 用250mL溫開水吞服0.3g片的水楊酸鈉片兩片8：30 收集尿樣9：00 收集尿樣10：00 收集尿樣 喝水200mL12：00 收集尿樣 喝水150mL14：00 收集尿樣 喝水100mL16：00收集尿樣 喝水100mL18：00收集尿樣 20：00收集尿樣 喝水100mL22：00收集尿樣 第二天8：00收集尿樣 22：00收集尿樣 每次

16、收集尿樣的時間必須小便一次，在上一次收集尿樣后所排出的小便，均要收集完全，作為下一個時間尿樣，每次收尿容器必須洗凈，用蒸餾水清洗，瀝干備用。III受試者服用樣品的安排本實驗僅作兩種劑型，同一受試者二次服藥之間應(yīng)間隔4天以上。IV測定方法每次尿樣測量體積后，精密吸取1mL于干燥潔凈的試管中，加Fe(NO3)3試管5mL，按“繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線”項下進(jìn)行測定，參比液用空白尿1mL替代含藥尿樣，如顯色時發(fā)現(xiàn)色澤太深，則根據(jù)情況將尿樣稀釋后取樣測定（如果氣候炎熱，須將空白尿及尿樣置冰箱中保存，以防長霉發(fā)酵，影響結(jié)果的準(zhǔn)確性。）B. 數(shù)據(jù)處理I. 將所測各時間尿樣的吸收度代入標(biāo)準(zhǔn)直線，計算出該尿樣濃度（mg/

17、mL）再乘以尿量（如尿樣稀釋則需乘上稀釋倍數(shù)），計算出各時間的尿藥排泄量。II. 以lgx/t對相鄰兩時間的中點時間（t中）作尿藥排泄速度曲線。 x : 各時間的尿藥排泄量. t: 相鄰兩次集尿時間的間隔時間.作圖:III. 根據(jù)作出的尿藥排泄曲線求出水楊酸鈉片劑和真溶液的動力學(xué)參數(shù). 斜率(b)=(Y2-Y1)/( X2-X1) 或?qū)⑶€后部直線部分進(jìn)行回歸分析,求出直線斜率b 消除速度常數(shù): k=-2.303×b 生物半衰期: t1/2=0.693/k劑型消除速度常數(shù)k半衰期(小時)總排泄量(mg)片劑真溶液IV. 生物利用度：以真溶液為參比，求片劑的相對生物利用度 生物利用度（

18、）？V. 尿藥法數(shù)據(jù)記錄姓名： 性別： 產(chǎn)品廠家及批號：藥量： 服藥時間：序號集尿時間（小時）口服水楊酸鈉真溶液口服水楊酸鈉片尿量（ mL）稀釋倍數(shù)吸收度平均濃度（mg/mL）排泄量（mg）尿量（mL）稀釋倍數(shù)吸收度平均濃度（mg/mL）排泄量（mg）1020.53142546678810912101411241238累計累計序號集尿時間（h）中點時間（t中）間隔時間（t）真溶液片劑排泄量(X)平均尿藥速度（Xt）Lg(X/t)排泄量(X)平均尿藥速度（Xt）Lg(X/t)010.50.250.5210.750.5321.514432565268727109281211291413210241

19、91011383114思考題：血藥濃度法與尿藥法測定藥物動力學(xué)參數(shù)各有何特點？實驗三 撲熱息痛血管外給藥的藥物動力學(xué)研究一、實驗?zāi)康?.通過本實驗，掌握生物樣品分析方法的基本要求。2.掌握撲熱息痛的血藥濃度測定方法及有關(guān)參數(shù)的計算。二、實驗原理 撲熱息痛與亞硝酸發(fā)生親電取代反應(yīng)，生成2-亞硝基4乙酰氨基苯酚，用氨基磺酸銨除去過量的亞硝酸，在堿性條件下，2-亞硝基4乙酰氨基苯酚于430nm波長處有最大吸收。三、實驗內(nèi)容1. 標(biāo)準(zhǔn)曲線精密稱取撲熱息痛100mg，以95乙醇3mL溶解加適量水，轉(zhuǎn)移于100mL容量瓶中，加水至刻度，充分搖勻，得撲熱息痛儲備液（1mg/mL）,精密吸取儲備液2.5mL準(zhǔn)

20、確稀釋至10mL，得250g/mL的標(biāo)準(zhǔn)液。分別精密吸取250g/mL的標(biāo)準(zhǔn)液0.3、0.6、0.9、1.2、1.5、1.8mL于離心管中，分別加水使成2mL，各加家兔血漿1.5mL，搖勻，再加入2mL10三氯醋酸，充分混合再離心20分鐘（3000rpm）。吸取上清液4mL于25mL帶塞刻度試管中，加入1mL6N鹽酸，1mL20 NaNO2溶液，搖勻，放置5分鐘，使反應(yīng)完全。慢慢加入2mL15氨基磺酸，振搖至無氣泡產(chǎn)生，流水冷卻，加入2.5mL20 NaOH搖勻，用2cm比色杯于430nm波長處測定吸收度。用蒸餾水2mL代替標(biāo)準(zhǔn)液同法處理，作空白對照。求出回歸方程標(biāo)準(zhǔn)液（mL）0.30.60.

21、91.21.51.8濃度（g/mL）50100150200250300A（3次）A標(biāo)準(zhǔn)曲線（回歸方程）2. 回收率試驗分別精密吸取250g/mL的標(biāo)準(zhǔn)液0.3、0.9、1.8mL于離心管中各三份，分別加水使成2mL，各加家兔血漿1.5mL，搖勻，以下操作同標(biāo)準(zhǔn)曲線項下“加入2mL10三氯醋酸，充分混合“起，依法操作，測定吸光度，代入回歸方程求其濃度，并與加入時濃度相比求出回收率。初始濃度（g/mL）吸光度測得濃度（g/mL）回收率(%)回收率均值RSD(%)21.4364.29128.583. 精密度試驗精密吸取250g/mL的標(biāo)準(zhǔn)液0.3、0.9、1.8mL于離心管中各6份，分別加水使成2m

22、L，各加家兔血漿1.5mL，搖勻，以下操作同標(biāo)準(zhǔn)曲線項下“加入2mL10三氯醋酸，充分混合“起，依法操作，測定吸光度，求其日內(nèi)精密度。初始濃度（g/mL）吸光度吸光度均值RSD(%)21.4364.29128.584.樣品穩(wěn)定性考察將上述標(biāo)準(zhǔn)曲線項下的“0.9mL”樣品處理好后于0.5h、1h、2h、3h、4h測定吸收度，考察處理后樣品室溫放置時的穩(wěn)定性。時間（h）00.51234吸光度均值RSD(%)5. 樣品測定 取家兔5只（雌兔不得懷孕），每只體重2.5 kg3 kg，給藥前先從耳靜脈取血3mL留作對照。然后按200mg/kg的劑量，肌注給藥（給藥前禁食12小時）。給藥后按第3、5、10

23、、15、25、30、40、60、100、140、180分鐘，定時從兔耳靜脈取血3 mL，用干燥并帶有適量肝素鈉的離心管集血，輕輕搖勻，離心10分鐘（3000rpm），吸取血漿于干燥試管中，置冰箱中保存?zhèn)溆?。取出無藥血漿與各時刻的含藥血漿，室溫解凍后進(jìn)行測定：吸取1.5mL血漿，置刻度離心管中，加水2mL，混勻，以下操作同標(biāo)準(zhǔn)曲線項下“加入2mL10三氯醋酸，充分混合“起，依法測定吸收度，代入標(biāo)準(zhǔn)曲線，計算出該時刻的血藥濃度，以無藥血漿按同法處理作對照。6. 結(jié)果記錄兔子體重： 給藥劑量：測定記錄：編號1234567891011T(min)35101525304060100140180AAC(g

24、/mL)lgC T(min)C(g/mL)尾段直線相外推線濃度的對數(shù)（lgC外推）外推線濃度（C外推）殘數(shù)濃度（g/mL）C殘C外推-C殘數(shù)濃度的對數(shù)lgC殘尾段直線相斜率 K殘數(shù)斜率 ka四、數(shù)據(jù)處理1. 以血藥濃度（g/mL）為縱坐標(biāo)，時間為橫坐標(biāo)，作吸收曲線圖（血藥濃度時間曲線）。2. 以血藥濃度（g/mL）的對數(shù)對時間作血藥濃度時間的半對數(shù)圖，從圖中求出消除速度常數(shù)K，再用殘數(shù)法求出吸收速度常數(shù)ka。3. 提取參數(shù)（t1/2吸收、t1/2消除、tp、Cp）A. 吸收半衰期: t1/2吸收=0.693/kaB. 消除半衰期: t1/2消除=0.693/K C. 血藥濃度-時間曲線下的總面

25、積(AUC0-)D. 達(dá)峰時間(tp) 根據(jù)ka及K求出達(dá)峰時間tptp= (lnka-lnK )/(ka-K)=2.303×(lgka-lgK)/(ka-K)拋物線擬合法用拋物線C=p+Qt_+Rt2的峰段代替藥時曲線的峰段，選取實驗數(shù)據(jù)中最大濃度C（I）左右三點，ti-1, C(I-1), ti, Ci, ti+1, C(I+1)代入，則有：C(I-1)=P+Q·ti-1=R·t2i-1Ci= P+Q·ti=R·t2iC(I+1)= P+Q·ti+1=R·t2i+1 解上述方程組，求得P、Q、R的值拋物線的峰丟按橫坐標(biāo)（

26、峰時）為tp=-Q/2RE. 峰濃度CpCp=A(e-Ktp- e-Katp)A-截距(可以從lgCt圖中求得)實驗結(jié)果:思考題：血藥濃度法求算藥物動力學(xué)參數(shù)的原理？血藥濃度法測定藥物動力學(xué)參數(shù)的要求？實驗四 大鼠在體小腸吸收實驗一、實驗?zāi)康?.掌握大鼠在體小腸吸收的實驗方法。2.掌握計算藥物的吸收速度常數(shù)（Ka），以及每小時吸收率的計算方法。二、實驗原理大多數(shù)藥物以被動擴(kuò)散方式從生物膜的高濃度側(cè)通過膜向低濃度側(cè)轉(zhuǎn)運。被動擴(kuò)散可用Fick第一定律來描述。該定律指出，擴(kuò)散速度（dC/dt）正比于膜兩側(cè)的濃度差（C）,因此有：（1）式中C是消化道中的藥物濃度，Cb是血液中藥物濃度，Ka是吸收速度常

27、數(shù)，其值大小取決于藥物的擴(kuò)散常數(shù)、吸收膜的厚度與面積以及藥物對膜的穿透性。胃腸道吸收的生物學(xué)過程包括這樣一個系統(tǒng)，即藥物從胃腸道屏障的一側(cè)向另一側(cè)擴(kuò)散。因為進(jìn)入血液的藥物很快分布到全身，故與吸收部位比較，血中藥物濃度維持在很低的水平。幾乎在所有口服給藥的情況下，對于胃腸道來說，血液的作用猶如“水槽”。并且在整個吸收相保持很大的濃度梯度，C>>Cb，則CC，于是（1）式可以簡化為：（2）此為一級速度方程式的標(biāo)準(zhǔn)形式。胃腸道按一級動力學(xué)從消化液中吸收大多數(shù)藥物。用消化液中藥物量的變化）dXa/dt)表示吸收速度，則： (3)將（3）式積分，并在方程兩側(cè)同取對數(shù)。（4）式中Xa為消化液中

28、藥物量，Xa(0)為零時刻消化液中藥物量，Ka為藥物吸收速度常數(shù)。以lnXa對t作圖得一條直線，其斜率為藥物在小腸中的吸收速度常數(shù)（Ka）。三、實驗內(nèi)容1. 實驗操作（1） 取85ml供試液（100mlKrobs-Ringer試液含SD2mg, 酚紅2mg）加入循環(huán)裝置中。（2） 將實驗前禁食一夜，體重200g左右的雄性大鼠，稱重，腹腔注射戊巴比妥鈉（劑量為100g體重注射0.4ml），麻醉后并加以固定。（3） 沿腹中線打開腹腔。自十二指腸上部及回腸下部各剪開一個小口，各插入直徑為0.5cm的玻璃管，用線扎緊，并用37的生理鹽水將小腸內(nèi)容物沖洗干凈，然后將大鼠串聯(lián)到循環(huán)裝置中。（4） 開動蠕動

29、泵，以5ml/分的流速循環(huán)10分鐘后流速調(diào)至2.5ml/分。（5） 自燒瓶中取樣1.5ml（1ml、0.5ml各一份）為和酚紅零時間樣品，并補(bǔ)加2ml酚紅溶液（每毫升Krobs-Ringer試液含酚紅20g），其后每15分鐘取樣（1ml、0.5ml各一份），同時補(bǔ)加酚紅溶液2ml。由于酚紅不被小腸吸收，用以測定水被小腸吸收的量。2. 定量方法（1）磺胺嘧啶的定量取樣品1ml，加入1mol/L 5ml,加入0.1%NaNO2 1ml, 搖勻，放置3分鐘，加入0.5氨基磺酸氨1ml，搖勻，放置3分鐘。加入0.1萘乙二胺2ml，搖勻，放置20分鐘。在波長555nm處測定吸收度。參比溶液的配制：取1m

30、l供試液按磺胺嘧啶的定量方法不加萘乙二胺顯色劑。（2） 酚紅定量取酚紅溶液0.5ml，加入0.2mol/L NaOH 5ml，搖勻，在波長555nm處測定吸收度。參比溶液：0.2mol/L NaOH溶液。3標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備（1）酚紅的標(biāo)準(zhǔn)曲線精密稱取酚紅100mg，置1000ml容量瓶內(nèi)，加1Na2CO3溶液溶解并稀釋至刻度，制成100g/ml的儲備液。取1，2，3，4，5，6ml的儲備液于10ml容量瓶中，加蒸餾水至刻度。自上述各溶液中吸取0.5ml，按酚紅的定量方法測定吸收度，并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。（2）磺胺嘧啶標(biāo)準(zhǔn)曲線精密稱取磺胺嘧啶標(biāo)準(zhǔn)品10mg置100ml容量瓶中，以蒸餾水溶解并稀釋至刻度，

31、使成100g/ml的儲備液。取儲備液適量，稀釋成20100g/ml的溶液，分別吸取2，4，6，8，10ml于10ml容量瓶中，加蒸餾水至刻度。從上述溶液中吸取1ml按磺胺嘧啶定量方法測定吸收度，并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。四、數(shù)據(jù)處理1 將實驗數(shù)據(jù)按表1中公式進(jìn)行計算。表1大鼠在體小腸吸收量的計算式取樣時間（h）SD吸收度SD濃度酚紅吸收度酚紅濃度供試液體積剩余藥量循環(huán)前A0C0A0C0V0=85mlP0=85C00A1C1A1C10.25A2C2A2C20.5A3C3A3C3.tnAnCnAnCn2. 以剩余藥量的對數(shù)對時間作圖，求出吸收速度常數(shù)Ka和每小時吸收率（）。每小時吸收率（）（零時間剩余藥量60分鐘剩余藥量）/零時間剩余藥量100思考題：用小腸剩余藥量測定吸收速率常數(shù)的原理？實驗五