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DNA提取的基本步驟I.材料準(zhǔn)備II.破碎細(xì)胞或包膜-內(nèi)容物釋放III.核酸分離、純化IV.沉淀或吸附核酸,并去除雜質(zhì)

V.核酸溶解在適量緩沖液或水中材料準(zhǔn)備最好使用新鮮材料,低溫保存的樣品材料不要反復(fù)凍融提取血液基因組DNA時(shí),要選擇有核細(xì)胞(白細(xì)胞)組培細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間不能過(guò)長(zhǎng),否則會(huì)造成DNA降解含病毒的液體材料DNA含量較少,提取前先富集基因組DNA的提取細(xì)胞裂解材料應(yīng)適量,過(guò)多會(huì)影響裂解,導(dǎo)致DNA量少,純度低針對(duì)不同材料,選擇適當(dāng)?shù)牧呀忸A(yù)處理方式:植物材料--液氮研磨動(dòng)物組織--勻漿或液氮研磨組培細(xì)胞--蛋白酶K細(xì)菌--溶菌酶破壁酵母--破壁酶或玻璃珠高溫溫浴時(shí),定時(shí)輕柔振蕩基因組DNA的提取核酸分離、純化采用吸附材料吸附的方式分離DNA時(shí),應(yīng)提供相應(yīng)的緩沖體系采用有機(jī)(酚/氯仿)抽提時(shí)應(yīng)充分混勻,但動(dòng)作要輕柔離心分離兩相時(shí),應(yīng)保證一定的轉(zhuǎn)速和時(shí)間針對(duì)不同材料的特點(diǎn),在提取過(guò)程中輔以相應(yīng)的去雜質(zhì)的方法核酸分離、純化蛋白質(zhì)的去除:酚/氯仿抽提使用變性劑變性(SDS、異硫氰酸胍等)高鹽洗滌蛋白酶處理多糖的去除:高鹽法:用乙醇沉淀時(shí),在待沉淀溶液中加入1/2體積的5MNaCl,高鹽可溶解多糖。用多糖水解酶將多糖降解。在提取緩沖液中加一定量的氯苯(1/2體積),氯苯可以與多糖的羥基作用,從而去除多糖。用PEG8000代替乙醇沉淀DNA:在500μLDNA液中加入200μl20%PEG8000(含1.2MNaCl),冰浴20min。核酸分離、純化多酚的去除:在抽提液中加入防止酚類氧化的試劑:β-巰基乙醇、抗壞血酸、半胱氨酸、二硫蘇糖醇等加入易與酚類結(jié)合的試劑:如PVP、PEG(聚乙二醇),它們與酚類有較強(qiáng)的親和力,可防止酚類與DNA的結(jié)合核酸分離、純化鹽離子的去除:70%的乙醇洗滌核酸沉淀、溶解當(dāng)沉淀時(shí)間有限時(shí),用預(yù)冷的乙醇或異丙醇沉淀,沉淀會(huì)更充分沉淀時(shí)加入1/10體積的NaAc(pH5.2,3M),有利于充分沉淀沉淀后應(yīng)用70%的乙醇洗滌,以除去鹽離子等晾干DNA,讓乙醇充分揮發(fā)(不要過(guò)分干燥)若長(zhǎng)期儲(chǔ)存建議使用TE緩沖液溶解TE中的EDTA能螯和Mg2+或Mn2+離子,抑制DNasepH值為8.0,可防止DNA發(fā)生酸解DNA中含有蛋白、多糖、多酚類雜質(zhì)DNA在溶解前,有酒精殘留,酒精抑制后續(xù)酶解反應(yīng)DNA中殘留有金屬離子重新純化DNA,去除蛋白、多糖、多酚等雜質(zhì)(具體方法見(jiàn)前)重新沉淀DNA,讓酒精充分揮發(fā)增加70%乙醇洗滌的次數(shù)(2-3次)DNA提取常見(jiàn)問(wèn)題問(wèn)題一:DNA樣品不純,抑制后續(xù)酶解和PCR反應(yīng)。

原因?qū)Σ卟牧喜恍迈r或反復(fù)凍融未很好抑制內(nèi)源核酸酶的活性提取過(guò)程操作過(guò)于劇烈,DNA被機(jī)械打斷外源核酸酶污染反復(fù)凍融盡量取新鮮材料,低溫保存材料避免反復(fù)凍融液氮研磨或勻漿組織后,應(yīng)在解凍前加入裂解緩沖液在提取內(nèi)源核酸酶含量豐富的材料的DNA時(shí),可增加裂解液中螯合劑的含量細(xì)胞裂解后的后續(xù)操作應(yīng)盡量輕柔所有試劑用無(wú)菌水配制,耗材經(jīng)高溫滅菌將DNA分裝保存于緩沖液中,避免反復(fù)凍融DNA提取常見(jiàn)問(wèn)題問(wèn)題二:DNA降解。對(duì)策

原因?qū)嶒?yàn)材料不佳或量少破壁或裂解不充分沉淀不完全洗滌時(shí)DNA丟失盡量選用新鮮(幼嫩)的材料動(dòng)植物要?jiǎng)驖{研磨充分;G+菌、酵母裂解前先用生物酶或機(jī)械方式破壁高溫裂解時(shí),時(shí)間適當(dāng)延長(zhǎng)(對(duì)于動(dòng)物細(xì)胞、細(xì)菌可增加PK的用量)低溫沉淀,延長(zhǎng)沉淀時(shí)間加輔助物,促進(jìn)沉淀洗滌時(shí),最好用槍頭將洗滌液吸出,勿傾倒DNA提取常見(jiàn)問(wèn)題問(wèn)題三:DNA提取量少。對(duì)策

原因PCR標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系

DNA模板引物反應(yīng)緩沖液

dNTP

ddH2O

耐熱聚合酶反應(yīng)體系對(duì)PCR擴(kuò)增的影響DNA模板純度

蛋白、多糖、酚類等雜質(zhì)會(huì)抑制PCR反應(yīng)完整性

模板降解會(huì)導(dǎo)致PCR擴(kuò)增無(wú)產(chǎn)物濃度

加量過(guò)多導(dǎo)致非特異性擴(kuò)增增加特異性

長(zhǎng)度適當(dāng)、避免二級(jí)結(jié)構(gòu)和二聚體完整性

避免反復(fù)凍融濃度

應(yīng)適當(dāng),過(guò)高導(dǎo)致非特異性增加,過(guò)低則引物擴(kuò)增產(chǎn)物太少反應(yīng)體系對(duì)PCR擴(kuò)增的影響反應(yīng)Buffer

pH值,鹽離子濃度穩(wěn)定劑,增強(qiáng)劑Mg2+濃度過(guò)高非特異性嚴(yán)重過(guò)低無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物dNTPMixture濃度適當(dāng)避免反復(fù)凍融ddH2OpH值適當(dāng)避免污染PCR

MasterMix原理預(yù)配好的PCR反應(yīng)液

DNA聚合酶

反應(yīng)緩沖液

dNTP

PCR增強(qiáng)劑

PCR

MasterMix特點(diǎn)

快速簡(jiǎn)便減少加樣誤差和污染

靈敏度高

可擴(kuò)增低至2個(gè)拷貝的目的模板

特異性強(qiáng)降低PCR反應(yīng)的要求,增強(qiáng)特異性

穩(wěn)定性好長(zhǎng)期放置活性無(wú)改變PCR常見(jiàn)問(wèn)題無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物非特異性擴(kuò)增拖尾假陽(yáng)性PCR常見(jiàn)問(wèn)題之一無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物模板:含有抑制物,含量低Buffer對(duì)樣品不合適引物設(shè)計(jì)不當(dāng)或者發(fā)生降解反應(yīng)條件:退火溫度太高,延伸時(shí)間太短

原因?qū)Σ呒兓0寤蛘呤褂迷噭┖刑崛∧0錎NA或加大模板的用量更換Buffer或調(diào)整濃度重新設(shè)計(jì)引物,或者換一管新引物降低退火溫度、延長(zhǎng)延伸時(shí)間現(xiàn)象:正對(duì)照有條帶,而樣品則無(wú);PCR常見(jiàn)問(wèn)題之二

非特異性擴(kuò)增現(xiàn)象:PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致,或大或小,或者同時(shí)出現(xiàn)特異性擴(kuò)增帶與非特異性擴(kuò)增帶。PCR常見(jiàn)問(wèn)題之二引物特異性差模板或引物濃度過(guò)高酶量過(guò)多Mg2+濃度偏高退火溫度偏低循環(huán)次數(shù)過(guò)多

原因?qū)Σ咧匦略O(shè)計(jì)引物或者使用巢式PCR適當(dāng)降低模板或引物濃度適當(dāng)減少酶量降低鎂離子濃度適當(dāng)提高退火溫度或使用二階段溫度法減少循環(huán)次數(shù)

非特異性擴(kuò)增PCR常見(jiàn)問(wèn)題之三

拖尾現(xiàn)象:產(chǎn)物在凝膠上呈Smear狀態(tài)。M12PCR常見(jiàn)問(wèn)題之三模板不純Buffer不合適退火溫度偏低酶量過(guò)多dNTP、Mg2+濃度偏高循環(huán)次數(shù)過(guò)多

原因?qū)Σ呒兓0甯鼡QBuffer適當(dāng)提高退火溫度適量用酶適當(dāng)降低dNTP和鎂離子的濃度減少循環(huán)次數(shù)

拖尾PCR常見(jiàn)問(wèn)題之四假陽(yáng)性(篩選轉(zhuǎn)基因、檢測(cè)基因表達(dá)情況)原因:靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染

現(xiàn)象:空白對(duì)照出現(xiàn)目的擴(kuò)增產(chǎn)物

對(duì)策:操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或?yàn)R出離心管外;除酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒。所用離心管及加樣槍頭等均應(yīng)一次性使用。各種試劑最好先進(jìn)行分裝,然后低溫貯存。謝謝!酚/氯仿/異戊醇的作用:酚可以使蛋白質(zhì)變性,作用大于氯仿,但水飽和酚的比重略比水重,碰到高濃度的鹽溶液,離心后酚相會(huì)跑到上層,不利于含質(zhì)粒的水相的回收。加入氯仿后可以增加其比重,使得酚/氯仿始終在下層,方便水相的回收。還有,酚與水有很大的互溶性,如果單獨(dú)用酚抽提后會(huì)有大量的酚溶解到水相中,而酚會(huì)抑制很多酶反應(yīng)(比如限制性酶切反應(yīng)),因此如果單獨(dú)用酚抽提后一定要用氯仿抽提一次將水相中的酚去除。而用酚/氯仿混合液進(jìn)行抽提,跑到水相中的酚則少得多,微量的酚在乙醇沉淀時(shí)就會(huì)被除干凈而不必?fù)?dān)心酶切等反應(yīng)不能正常進(jìn)行。異戊醇的添加,主要可以使離心后上下層的界面更加清晰,方便水相的回收。酚/氯仿/異戊醇Tm值(解鏈溫度)=4(G+C)+2(A+T)

復(fù)性溫度=Tm值-(5~10℃)

標(biāo)準(zhǔn)的PCR反應(yīng)體系:

10×擴(kuò)增緩沖液

10ul

4種dNTP混合物

各200umol/L

引物

各10~100pmol

模板DNA

0.1~2ug

TaqDNA聚合酶

2.5u

Mg2+

1.5mmol/L

加雙或三蒸水至

100ul

10×擴(kuò)增緩沖液

2.5ul

4種dNTP混合物

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