【幽門(mén)螺桿菌免疫學(xué)抗體檢測(cè)法研究文獻(xiàn)綜述報(bào)告6500字（論文）】

V幽門(mén)螺桿菌免疫學(xué)抗體檢測(cè)法研究文獻(xiàn)綜述報(bào)告目錄TOC\o"1-2"\h\u32147幽門(mén)螺桿菌免疫學(xué)抗體檢測(cè)法研究報(bào)告 116171摘要 116797引言 1122341.幽門(mén)螺桿菌的流行病學(xué) 2253802免疫學(xué)抗體檢測(cè)方法 4297312.1免疫印跡技術(shù) 445942.2膠乳免疫比濁法 441752.3膠體金法 5284912.4酶免疫法 5245263小結(jié) 621200參考文獻(xiàn) 89558致謝 12摘要幽門(mén)螺桿菌（helicobacterpylori，HP）是慢性胃炎，胃癌等的主要致病病因，HP感染是常見(jiàn)的一種全球性和廣泛傳播的疾病，我國(guó)一直都是幽門(mén)螺桿菌的高感染和胃癌的高發(fā)國(guó)家，其感染造成了巨大的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)，WHO已經(jīng)將HP列為胃癌的頭號(hào)致癌因子。因此選擇合理的檢查方法，給患者提供可靠的檢查結(jié)果，進(jìn)行有效的治療，阻斷炎癥，潰瘍進(jìn)一步向惡性腫瘤發(fā)展，具有臨床價(jià)值。本文就HP免疫學(xué)抗體檢測(cè)的方法、應(yīng)用和優(yōu)缺點(diǎn)進(jìn)行綜述。關(guān)鍵詞：幽門(mén)螺桿菌；臨床價(jià)值；免疫學(xué)抗體檢測(cè)引言幽門(mén)螺桿菌（helicobacterpylori，HP）是人類(lèi)胃部疾病的重要致病菌之一，與胃潰瘍、慢性胃炎、胃癌及十二指腸潰瘍的關(guān)系較為密切[1]，已經(jīng)被世界衛(wèi)生組織（WorldHealthOrganization，WHO）列為Ⅰ類(lèi)致癌因子。幽門(mén)螺桿菌是一種革蘭陰性致病菌，全球有超過(guò)50%的人感染了H.pylori，在一些社會(huì)經(jīng)濟(jì)不發(fā)達(dá)的地區(qū)，感染率已超過(guò)總?cè)藬?shù)的一半ADDINNE.Ref.{3EDD8628-D001-4822-8878-5DEAFB0433DA}[2]。胃內(nèi)局部pH值可達(dá)到0.9-1.8，但H.pylori依然可存活、定殖和繁殖。主要原因如下：幽門(mén)螺桿菌產(chǎn)生尿素酶（Urease），分解尿素產(chǎn)生氨氣能夠中和胃的酸性環(huán)境ADDINNE.Ref.{705235D9-2BB9-4FD7-A8A0-FD28A72AC6C5}[3]；H.pylori借助鞭毛在胃中自由游走逃避宿主的免疫攻擊，或者阻礙了先天性免疫功能和適應(yīng)性免疫ADDINNE.Ref.{C9F21090-5AFD-48D2-9D24-A2DF13AADCCC}[4-6]應(yīng)答NE.Cms_Insert；另外，細(xì)胞毒素相關(guān)蛋白A(cytotoxin-associatedgeneA，CagA)、空泡毒素A(vacuolationassociatedgeneA，VacA)和γ-谷氨酰轉(zhuǎn)肽酶（γ-glutamyltranspeptidase，GGT）還可以誘導(dǎo)樹(shù)突狀細(xì)胞發(fā)生免疫耐受，抑制T細(xì)胞的增殖和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)導(dǎo)致細(xì)胞凋亡，使H.pylori免受T細(xì)胞的攻擊ADDINNE.Ref.{94BBC543-F01A-4386-B34C-DCA9B3662B3A}[7]。幽門(mén)螺桿菌感染導(dǎo)致人體胃消化不良，患萎縮性胃炎、腸化生、消化性潰瘍，甚至胃癌等疾病ADDINNE.Ref.{A26EBA53-0044-44CB-8D7F-32EC9FC5AF14}[8，9]。除了胃內(nèi)消化性疾病之外，H.pylori還會(huì)導(dǎo)致一些胃外疾病，比如神經(jīng)疾病阿爾茨海默癥ADDINNE.Ref.{8C45201D-84AD-4F8E-A865-C70256D941BF}[10]、血液疾病免疫性血小板減少癥ADDINNE.Ref.{AAD2EFEA-EB28-42B3-AC0E-9204260E07E5}[11]、肝膽疾病酒精性脂肪肝ADDINNE.Ref.{B21A0DD8-8B08-494B-99F0-1BCDB4B19394}[12]等。因此，根除H.pylori對(duì)于治療胃部疾病和其他與H.pylori相關(guān)疾病十分重要。目前臨床治療中H.pylori抗生素耐藥性不斷提高，甲硝唑、克拉霉素的耐藥性在亞洲高達(dá)99.5%、85.5%ADDINNE.Ref.{1AEB3BB1-F7F4-4396-82E2-1DFF71C917AA}[13，14]。隨著人們對(duì)HP的不斷研究，幽門(mén)螺桿菌的檢測(cè)方法也在改進(jìn)與創(chuàng)新，并且在臨床上得到廣泛應(yīng)用。根據(jù)HP檢測(cè)時(shí)是否需要從胃部取材，可以將檢測(cè)分為2類(lèi)：侵入性檢測(cè)和非侵入性檢測(cè)[15]。侵入性檢測(cè)主要包括病理學(xué)檢測(cè)法、病原學(xué)檢測(cè)法；非侵入性檢測(cè)主要有免疫學(xué)檢測(cè)法、尿素呼氣實(shí)驗(yàn)檢測(cè)法。尿素呼氣試驗(yàn)是目前最常用的HP感染診斷和用于根除效果評(píng)價(jià)方法[24]，敏感性、特異性、準(zhǔn)確性高，且操作簡(jiǎn)便、快速、無(wú)創(chuàng)傷，無(wú)交叉感染的風(fēng)險(xiǎn)。最大缺點(diǎn)是檢測(cè)費(fèi)用貴，14C有放射性，會(huì)受抗生素影響出現(xiàn)假陰性，所以會(huì)受到檢測(cè)近期藥物影響。從檢驗(yàn)工作者和患者的感受來(lái)講，一般認(rèn)為最好的方法是能簡(jiǎn)便、快速、無(wú)創(chuàng)、還有準(zhǔn)確測(cè)試的方法。因此，免疫學(xué)抗體檢測(cè)更易接受和采用且更有研究意義。1.幽門(mén)螺桿菌的流行病學(xué)幽門(mén)螺桿菌（HP）在胃內(nèi)定植，通過(guò)自身的鞭毛到達(dá)胃黏膜表面的保護(hù)性黏液層，并通過(guò)化學(xué)趨化法首先定居在沒(méi)有產(chǎn)酸細(xì)胞的胃竇以避開(kāi)低pH區(qū)域，同時(shí)它還產(chǎn)生尿素酶、中和胃酸，以利于自身生存。HP是多種疾病的高危因素，全球患病率約為58%，中國(guó)的患病率約為20.6%至81.8%不等，HP流行率在發(fā)達(dá)國(guó)家逐年下降，而在發(fā)展中國(guó)家和新興工業(yè)地區(qū)一直處于較高水平。這表明，HP感染在一定程度上延緩經(jīng)濟(jì)發(fā)展，加重國(guó)家醫(yī)療負(fù)擔(dān)。有研究表明，在未使用非甾體抗炎藥治療的情況下，對(duì)消化性潰瘍患者行根除HP治療通常會(huì)促進(jìn)潰瘍的愈合和消退。已證實(shí)HP是導(dǎo)致功能性消化不良的高危因素，功能性消化不良的不適癥狀通常在HP被根除后得到明顯改善[25]。HP所致的胃炎在全球的慢性胃炎類(lèi)型中最常見(jiàn)，認(rèn)識(shí)到這一點(diǎn)是為了在HP感染發(fā)展為更嚴(yán)重的并發(fā)癥之前對(duì)其進(jìn)行檢測(cè)和治療[26]。HP被認(rèn)為是非賁門(mén)胃癌從慢性非萎縮性胃炎向慢性萎縮性胃炎、腸化生逐步發(fā)展為異型增生和惡性腫瘤的主要驅(qū)動(dòng)力之一。Gawron等人的研究發(fā)現(xiàn)[27,28]，HP被根除后，患胃癌的相對(duì)風(fēng)險(xiǎn)大幅度降低，且胃癌死亡率可降低33%。在病因?qū)W上，MALT被認(rèn)為是由HP導(dǎo)致的慢性胃炎發(fā)展而來(lái)，MALT的臨床表現(xiàn)從消化不良癥狀到其他淋巴瘤觀察到的典型癥狀甚至更嚴(yán)重的急性并發(fā)癥，例如腸梗阻、穿孔和出血，是非特異性的。有研究發(fā)現(xiàn)感染HP并接受根除治療的MALT患者的EI期與EII期相比更有可能完全緩解。除此之外，HP感染也與EAC、大腸癌、嗜酸性食管炎、肝硬化、胰腺疾病、炎癥性腸病等密切相關(guān)[29]。HP感染的全球平均患病率處于中等，在中國(guó)各地區(qū)患病率不等，在發(fā)展中國(guó)家和新興工業(yè)地區(qū)的流行率一直處于較高水平，其中男性多于女性，而西方發(fā)達(dá)國(guó)家流行率逐年下降。HP的傳播途徑較多，主要如糞-口、母乳喂養(yǎng)、醫(yī)源性傳播，其他傳播途徑也包括飲用水傳播、基于牛奶攝入的傳播和食用未經(jīng)加工蔬菜的傳播。在西方國(guó)家CagA陽(yáng)性菌株為主的HP感染更為多見(jiàn)，HP感染在男性、農(nóng)村地區(qū)更常見(jiàn)。此外，HP的反復(fù)感染也容易發(fā)生，被認(rèn)為與少數(shù)民族群體、教育水平低下、胃癌家族史、居住于中國(guó)西部、華中地區(qū)等因素相關(guān)，每年HP的再感染率為1.5%[30]。HP在特定人群中的流行在一定程度上受到國(guó)家和社會(huì)經(jīng)濟(jì)發(fā)展程度的影響，除了不斷增加的抗生素抗藥性外，清潔用水、醫(yī)療保健措施、現(xiàn)代衛(wèi)生設(shè)施等基礎(chǔ)資源都是可能導(dǎo)致這種差距的重要因素。因此，是否應(yīng)對(duì)GERD患者根除HP治療是目前臨床關(guān)注的問(wèn)題。HP的臨床管理對(duì)多種疾病的預(yù)防是不可或缺的。2017年ACG指南建議檢測(cè)HP的適應(yīng)癥包括：活動(dòng)性消化性潰瘍病、既往患消化性潰瘍、MALT、早期胃癌切除史、60歲以下無(wú)報(bào)警癥狀的消化不良、典型GER癥狀、長(zhǎng)期口服阿司匹林、頻繁應(yīng)用非甾體抗炎藥、缺鐵性貧血、增生性胃息肉或胃癌家族史以及妊娠期劇烈嘔吐等。測(cè)試方法的選擇基于患者年齡、感染癥狀、用藥情況，以及測(cè)試的可靠性、可用性和成本，檢測(cè)應(yīng)至少在抗生素治療完成后4周和PPI治療暫停2周后進(jìn)行。根據(jù)檢測(cè)技術(shù)的不同，HP的診斷目前被大致分為三類(lèi)：內(nèi)窺鏡、侵入性檢測(cè)和非侵入性檢測(cè)。與其他方法相比，PCR法檢測(cè)HP被證實(shí)比胃活檢靈敏度更高，下一代測(cè)序在培養(yǎng)陰性的活檢中檢測(cè)多重耐藥性也具有較好的可行性。2免疫學(xué)抗體檢測(cè)方法2.1免疫印跡技術(shù)免疫印跡技術(shù)（immunoblotting）免疫印跡是一種新的免疫化學(xué)技術(shù)。用聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS–PAGE）將HP中分子量大小不同的蛋白組份分離，得到的不同區(qū)帶與待檢血清中相應(yīng)抗體相結(jié)合，通過(guò)顯色來(lái)判斷患者的HP感染情況。HP臨床分型一般將其分為兩類(lèi):即I型和II型。有研究顯示，HP分型檢測(cè)對(duì)臨床工作更有指導(dǎo)意義。若為I型感染，主張積極給予抗HP治療，若為II型感染，可不給予治療，隨訪后再觀察，避免了抗生素的濫用。臨床上使用于診斷HP感染的檢測(cè)方法很多，而免疫印跡法是非侵入性的診斷檢測(cè)方法，還因其具有敏感性高、特異性強(qiáng)、檢測(cè)方法簡(jiǎn)單、時(shí)間短等優(yōu)勢(shì)，免疫印跡法檢測(cè)門(mén)診消化不良患者的HP感染簡(jiǎn)便易行，同時(shí)在臨床上對(duì)抗HP的治療中也具有很好的指導(dǎo)意義[31]。免疫印跡法降低對(duì)檢查者的創(chuàng)傷，且檢查費(fèi)用較一般常規(guī)方法更經(jīng)濟(jì)實(shí)惠，減輕了經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)，使檢測(cè)幽門(mén)螺桿菌應(yīng)用率提高，從而有效避免其他疾病滋生。并用其他技術(shù)對(duì)菌株進(jìn)行特性分析，可控制最佳治療效果及毒副作用，把握治療HP的明確方向?？梢栽鰪?qiáng)診斷效果，為臨床治療感染幽門(mén)螺桿菌提供指導(dǎo)方向，值得在臨床推廣[32]。2.2膠乳免疫比濁法膠乳增強(qiáng)免疫比濁法是將一定量的抗原或抗體標(biāo)記到一定顆粒直徑大小的膠乳顆粒上，制備成膠乳溶液，與相應(yīng)的抗體或抗原溶液混合后，會(huì)發(fā)生抗原抗體反應(yīng)，形成一定的濁度，通過(guò)對(duì)濁度變化的檢測(cè)來(lái)判定抗體或抗原濃度的方法[33]。這是其他方法無(wú)法比擬的。有研究用膠乳免疫比濁法檢測(cè)HP抗體試劑的性能評(píng)價(jià)，得出其可用于全自動(dòng)生化分析儀，具有定量檢測(cè)、操作簡(jiǎn)便、通量大、成本低等優(yōu)勢(shì)，適合體檢人群HP感染的篩查和大規(guī)模人群的流行病學(xué)調(diào)查。并且認(rèn)為膠乳比濁法定量檢測(cè)血清胃HP抗體的準(zhǔn)確性、線(xiàn)性、精密度、抗干擾等各性能指標(biāo)均可以符合臨床檢測(cè)的要求。而另一項(xiàng)試驗(yàn)研究通過(guò)膠乳免疫比濁法與金標(biāo)法和14C呼氣試驗(yàn)分別對(duì)HP檢測(cè)，對(duì)其結(jié)果進(jìn)行比對(duì)分析得知，乳免疫比濁法的檢測(cè)結(jié)果假陽(yáng)性和假陰性率高，與尿素14C呼氣試驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果的一致性很不理想。該方法學(xué)敏感性較差，其方法學(xué)還有待改進(jìn)[34]。這點(diǎn)與前一個(gè)報(bào)道不一致?？赡苁窃噭┑牟町?。2.3膠體金法膠體金快速檢測(cè)法具有20min內(nèi)即可快速獲得檢測(cè)結(jié)果、操作簡(jiǎn)便、操作人員易于掌握、無(wú)需特殊儀器等特點(diǎn)和優(yōu)勢(shì)，作為一種快速篩查的有效方式，越來(lái)越多地應(yīng)用于基層醫(yī)療機(jī)構(gòu)在發(fā)生流感大流行時(shí)臨床診治和疫情處理中，其優(yōu)勢(shì)在于能在短短數(shù)分鐘時(shí)間內(nèi)快速做出定性診斷，陽(yáng)性則可以進(jìn)一步通過(guò)PCR法或病毒分離培養(yǎng)進(jìn)行亞型鑒定。膠體金法是檢測(cè)幽門(mén)螺桿菌抗體的方法，是利用先進(jìn)的金標(biāo)技術(shù)，用膠體金作為顯色劑或示蹤標(biāo)志物，用于抗原抗體反應(yīng)的一種新型的免疫標(biāo)記技術(shù)。這種方法具有明顯的易操作、無(wú)痛并且可在加樣五分鐘內(nèi)顯示結(jié)果的快捷特點(diǎn)[35]。在有做過(guò)的試驗(yàn)可以看出，在與胃鏡下的快速尿素酶試驗(yàn)進(jìn)行比較，膠體金法的HP陽(yáng)性檢出率為65.71%，快速尿素酶試驗(yàn)的HP陽(yáng)性檢出率為67.14%，相比得到的P>0.05，差異不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義，而且膠體金法檢測(cè)的敏感度為91.24%，特異性為89.76%，都明顯高于胃鏡下快速尿素酶試驗(yàn)，因此膠體金法在檢測(cè)HP時(shí)具有很高的可靠性?？傊z體金法檢測(cè)HP不僅具有很高的陽(yáng)性檢出率，而且檢測(cè)所需時(shí)間短，操作無(wú)需專(zhuān)業(yè)人士，檢測(cè)無(wú)疼痛，更易于被患者接受，無(wú)禁忌使用的患者，具有可高的可靠性，非常適合臨床使用[36]。2.4酶免疫法酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)（ELISA）是用酶標(biāo)記抗體，并將已知的抗原或抗體吸附在固相載體表面，使抗原抗體反應(yīng)在固相載體表面進(jìn)行，用洗滌法將液相中的游離成分洗滌，用最廣的技術(shù)。ELISA可以采集病人的血液、唾液、尿液及糞便等標(biāo)本檢測(cè)抗體。糞便抗原檢測(cè)是一種酶免疫測(cè)定法，可使用多克隆或單克隆抗HP抗體檢測(cè)糞便標(biāo)本中的HP抗原，有研究表明，糞便抗原檢測(cè)與其他檢測(cè)HP方法相比，也具有較高的準(zhǔn)確性，證實(shí)了其在檢測(cè)HP中的有用性。有研究血清HP抗體ELISA檢測(cè)法的優(yōu)勢(shì)和有效性，通過(guò)對(duì)200例疑似HP感染患者均進(jìn)行血清HP抗體ELISA檢測(cè)、14C-UBT法、嗜銀染色法檢測(cè)。其結(jié)果研究顯示，嗜銀染色法的Kappa值為0.915，14C-UBT法的Kappa值為0.853，血清HP抗體ELISA檢測(cè)法的Kappa值為0.882；三種檢測(cè)方法的特異度無(wú)明顯差異(P>0.05)，說(shuō)明嗜銀染色法診斷HP陽(yáng)性的一致性比其他兩種方法更佳，但三種檢測(cè)方法的一致性都為良好，并且都具有較好的特異度，則表明血清HP抗體ELISA檢測(cè)法、14C-UBT法都可以滿(mǎn)足臨床診斷HP陽(yáng)性的需求。而血清HP抗體ELISA檢測(cè)法和14C-UBT法的操作更簡(jiǎn)單，檢查費(fèi)用較低，且不具有侵入性，但血清HP抗體ELISA檢測(cè)法在適用人群方面比14C-UBT法更好。在此研究中，嗜銀染色法與血清HP抗體ELISA檢測(cè)法的靈敏度無(wú)明顯差異(P>0.05)；血清HP抗體ELISA檢測(cè)法的特異度、靈敏度、準(zhǔn)確度略高于14C-UBT法，但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。且較多研究顯示，14C-UBT法中的14C會(huì)對(duì)人體和環(huán)境造成一定污染傷害，且對(duì)孕婦和嬰幼兒不適用，則說(shuō)明選擇血清HP抗體ELISA檢測(cè)法的可行性更高[373]。因此應(yīng)用血清HP抗體ELISA檢測(cè)法診斷HP感染具有較好的效果，靈敏度及特異度都較高，而且操作更簡(jiǎn)便，無(wú)創(chuàng)傷性，患者更易接受。3小結(jié)免疫學(xué)抗體檢測(cè)包括免疫印跡分型技術(shù)、膠體金法、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)及膠乳免疫比濁法，檢測(cè)的抗體包括細(xì)胞毒抗體、空泡毒抗體和尿素酶亞單位A和B等抗原的抗體[38]，檢測(cè)的抗體是IgG，它反映了一段時(shí)間內(nèi)幽門(mén)螺桿菌感染的狀況，因?yàn)槟壳霸噭┖袡z測(cè)的準(zhǔn)確性差異比較大，而且與其他細(xì)菌抗原有一定的交叉反應(yīng)，所以可以出現(xiàn)幽門(mén)螺桿菌感染的假陽(yáng)性。這些方法均具有較高的特異性和敏感度，無(wú)創(chuàng)性，操作簡(jiǎn)單且檢測(cè)費(fèi)用低，適合大批量檢測(cè)[25]。其中免疫印跡法聯(lián)合分型能增強(qiáng)診斷效果；膠乳免疫比濁法能定量檢測(cè)，適合體檢初篩；ELISA可以選擇檢測(cè)抗體標(biāo)本更多。有研究結(jié)果顯示，以13C-尿素呼氣試驗(yàn)結(jié)果作標(biāo)準(zhǔn)，膠體金法聯(lián)合免疫印跡法評(píng)估HP感染的特異性、敏感性和陽(yáng)性符合率都比單一使用膠體金法、免疫印跡法高，且與13C-尿素呼氣試驗(yàn)結(jié)果的一致性較好。但是在某些方面尚有值得商榷的地方:研究發(fā)現(xiàn)，某些檢測(cè)出HPI型抗體陽(yáng)性的患者，其胃鏡和呼氣試驗(yàn)并不支持患者現(xiàn)在患有慢性胃炎、消化性潰瘍和胃癌等胃腸道疾病。其原因可能是抗體的水平高低與患者本身的免疫力有關(guān)系，或既往感染HP經(jīng)治療后康復(fù)的患者，其體內(nèi)HP抗體仍為陽(yáng)性，因?yàn)榭贵w含量下降緩慢，存在血液中長(zhǎng)達(dá)1a-2a[27]，因此HP的抗體檢測(cè)不能作為HP現(xiàn)癥感染或是療效觀察的指標(biāo)，須結(jié)合胃鏡或呼氣試驗(yàn)的結(jié)果來(lái)臨床治療及判斷疾病的預(yù)后[28]。參考文獻(xiàn)[1]張永芬,昝學(xué)凱.消化系統(tǒng)常見(jiàn)疾病與幽門(mén)螺桿菌感染的關(guān)系探討[J].基層醫(yī)學(xué)論壇,2020,24(31):4468-4469.[2]HirukawaS,SagaraH,KanetoS,etal.CharacterizationofmorphologicalconversionofHelicobacterpyloriunderanaerobicconditions[J].MicrobiolImmunol.2018,62(4):221-228.[3]ChristopheB,AnthonyA.EpidemiologyofHelicobacterpyloriinfection[J].Helicobacter.2017,22.[4]FuHY,KawanoS.[AmmoniaandmonochloraminegeneratedbyureaseinHelicobacterpyloricausegastricmucosalinjury][J].NihonRinsho.2002,60Suppl2:119-123.[5]GuH.RoleofFlagellainthePathogenesisofHelicobacterpylori[J].CurrMicrobiol.2017,74(7):863-869.[6]Mejias-LuqueR,GerhardM.ImmuneEvasionStrategiesandPersistenceofHelicobacterpylori[J].CurrTopMicrobiolImmunol.2017,400:53-71.[7]KimJH,NamgungB,JeonYJ,etal.Helicobacterpyloriflagellin:TLR5evasionandfusion-basedconversionintoaTLR5agonist[J].BiochemBiophysResCommun.2018,505(3):872-878.[8]RicciV,GiannouliM,RomanoM,etal.Helicobacterpylorigamma-glutamyltranspeptidaseanditspathogenicrole[J].WorldJGastroenterol.2014,20(3):630-638.[9]YeoSH,YangCH.[PepticUlcerDiseaseAssociatedwithHelicobacterpyloriInfection][J].KoreanJGastroenterol.2016,67(6):289-299.[10]SunaN,EtikD,OcalS,etal.Theeffectofhelicobacterpylorieradicationonatrophicgastritisandintestinalmetaplasia:aretrospectivesinglecenterresearch[J].ActaGastroenterolBelg.2020,83(3):381-384.[11]ZendehdelA,RohamM.RoleofHelicobacterpyloriinfectioninthemanifestationofoldage-relateddiseases[J].MolGenetGenomicMed.2020,8(4):e1157.[12]MichelM,KhellafM,DesforgesL,etal.AutoimmunethrombocytopenicPurpuraandHelicobacterpyloriinfection[J].ArchInternMed.2002,162(9):1033-1036.[13]TangDM,KumarS.TheAssociationBetweenHelicobacterpyloriInfectionandNonalcoholicFattyLiverDisease[J].CurrGastroenterolRep.2017,19(2):5.[14]O'ConnorA,LiouJM,GisbertJP,etal.Review:TreatmentofHelicobacterpyloriInfection2019[J].Helicobacter.2019,24Suppl1:e12640.[15]DuBoisS,KearneyDJ.Iron-DeficiencyAnemiaandHelicobacterpyloriInfection:AReviewoftheEvidence[J].TheAmericanJournalofGastroenterology,2005,100(2):453-459.[16] WoodlandW,GrassiF,NikakiK,etal.SuperficialEsophagealMucosalAfferentNervesMayContributetoRefluxHypersensitivityinNonerosiveRefluxDisease[J].Gastroenterology,2017,153(5):1230–1239.[17] DunbarKB,AgostonAT,OdzeRD,etal.AssociationofAcuteGastroesophagealRefluxDiseaseWithEsophagealHistologicChanges[J].JAMA,2016,315(19):2104-2112.[18] MariA,MahroumN,BragazziNL,etal.DemographicsandClinicalandEndoscopicCharacteristicsofPatientswithHelicobacterpyloriInfectionandGastroesophagealRefluxDisease:ACase-ControlStudy.2019,2019:3819893.[19] MoayyediP,TalleyNJ.Gastro-oesophagealrefluxdisease[J].Lancet,2006,367(9528):2086-100.[20] WongBCY,KinoshitaY.SystematicReviewonEpidemiologyofGastroesophagealRefluxDiseaseinAsia[J].ClinicalGastroenterologyandHepatology,2006,4(4):398–407.[21] BoeckxstaensG,EI-SeragHB,KahrilasPJ,etal.Symptomaticrefluxdisease:thepresent,thepastandthefuture[J].Gut,2014,63(7):1185–1193.[22] GuessoumM,GuechiZ,AdnaneM,etal.First-timeserologicalandmoleculardetectionofHelicobacterpyloriinmilkfromAlgerianlocal-breedcows[J].VeterinaryWorld,2018,11(9):1326-1330.[23] MorenoML,HortelanoI,MorenoY,etal.EvidenceofviableHelicobacterpyloriandotherbacteriaofpublichealthinterestassociatedwithfree-livingamoebaeinlettucesamplesbynextgenerationsequencingandothermoleculartechniques[J].InternationalJournalofFoodMicrobiology,2020,318:108477.[24] MezmaleL,CoelhoLG,BordinD,etal.Review:EpidemiologyofHelicobacterpylori[J].Helicobacter,2020,25(Suppl1):e12734.[25] 張志明,溫麗.免疫印跡法檢測(cè)幽門(mén)螺桿菌及其分型的臨床應(yīng)用價(jià)值探討[J].臨床醫(yī)藥文獻(xiàn)電子雜志,2018,5(41):133+136.[26]梁文燕.免疫印跡法檢測(cè)門(mén)診消化不良患者幽門(mén)螺桿菌感染及其分型[J].首都食品與醫(yī)藥,2017,24(10):156-1