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文檔簡介
37Determinationofamantadineinmarineorganisms—LiquidchromatographytandemI 2 2 3 4 5 5 5 6 8本文件按照GB/T1.1—2020《標(biāo)準(zhǔn)化工作導(dǎo)則第1部分:標(biāo)準(zhǔn)化文件的結(jié)構(gòu)和起草規(guī)則》的規(guī)定1海洋生物體中金剛烷胺的測定液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法儀器和設(shè)備、樣品、分析步驟、結(jié)果計(jì)算與表示、準(zhǔn)確剛烷胺檢出限為0.5μg/kg,測定下限為1.0μg/kg。GB/T6682分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和海洋生物體樣品用1%乙酸乙腈提取后,經(jīng)固相萃取柱凈化,液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定,內(nèi)標(biāo)法定):):):5.5氨水(NH4OH優(yōu)級純。):5.71%乙酸乙腈溶液(體積分?jǐn)?shù))。5.85%氨水甲醇溶液(體積分?jǐn)?shù))。25.100.1%甲酸乙腈定容液(體積分?jǐn)?shù))。將1mL甲酸與300mL乙腈,加入到700mL水中。5.13金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)貯備液。稱取金剛烷胺0.0100g,用乙腈溶解,并定容至10mL,配制成1.0mg/mL標(biāo)準(zhǔn)貯備液,-20℃下避光保存,有效期為90d。移取100μL金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)貯備液(5.13用乙腈溶解,并定作液,4℃下避光保存,有效期為30d。移取100μLD15-金剛烷胺內(nèi)標(biāo)溶液(5.12),用乙腈溶解,并定容至100mL,配制成1.0μg/mL內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)中間液,4℃下避光保存,有效期為30d。移取1mLD15-金剛烷胺內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)中間液(5.15用乙腈定容至10mL,配制成100μg/L內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)6.1液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀:配電噴霧電離源(E6.8固相萃取柱:MCX(混合型陽離子固相萃),6.11濾膜:聚偏氟乙烯濾膜,孔徑為0.22量新鮮或解凍的空白或供試組織,絞碎,并3稱取3.00(±0.01)g樣品至50mL離心管中,加入100μL內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)工作液(5.16)和15mL1%乙酸乙腈溶液(5.7),渦旋30s,超聲提取15min,8000r/min離心10min,待凈化。MCX固相萃取柱經(jīng)6mL甲醇(5.2)和6mL水(5.1)活化后,取5mL上清液移入固相萃取柱,3mL水(5.1)淋洗,6mL5%氨水甲醇溶液(5.8)洗脫,全程控制流速為2mL/min~3mL/min。收集洗脫液,用氮吹儀于40℃下吹至近干,用定容液(5.d)進(jìn)樣量:10μL;min%%555555a)離子化模式:ESI+;h)氬氣流速:0.12mL/min;),4m/zm/zV40.0μg/L、50.0μg/L、100μg/L,現(xiàn)用現(xiàn)配。以各標(biāo)準(zhǔn)工作液金剛烷胺峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積的比值為按照儀器條件(8.1分別測定金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)工作液(8.2)、試樣(7.3)、空白試金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)溶液、空白樣品和加標(biāo)樣品的色譜圖參9結(jié)果計(jì)算與表示9.1定性分析的校正標(biāo)準(zhǔn)溶液相對豐度一致。定性確證時相對離子豐度的允許偏差應(yīng)符合表%%>50>20~50>10~209.2定量分析9.3結(jié)果計(jì)算5x——樣品中金剛烷胺的含量,單位為微克每千克(μg/kg);c——試樣溶液中金剛烷胺的濃度,單位為微克每升(μg/Lc0——空白試樣溶液中金剛烷胺的濃度,單位為微克每升(μg/L9.4結(jié)果表示計(jì)算結(jié)果扣除空白值,測定結(jié)果用兩次平行測定的算術(shù)平均值表示,保留三位有效數(shù)字。本方法批內(nèi)相對標(biāo)準(zhǔn)偏差和批間相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于15%。詳見金剛烷胺在添加濃度1.0μg/kg~100μg/kg時,回收率為70%~120%。詳見表B.2。每20個樣品或每批次(少于20個樣品/批)應(yīng)至少測定一個平行樣。平行樣測定結(jié)果的相對偏差應(yīng)實(shí)驗(yàn)過程中產(chǎn)生的廢液和廢物應(yīng)分類收集,集中保管,委托有資質(zhì)的單6色譜圖
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