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1、儀器分析試驗(yàn)講義(第二版)授課人:李蓉王小剛西北大學(xué)化工學(xué)院食品科學(xué)系2004 年 6 月編制實(shí)驗(yàn)一 鄰二氮雜菲分光光度法測(cè)定鐵一實(shí)驗(yàn)?zāi)康? 了解752 型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)的構(gòu)造和使用方法。2掌握鄰二氮雜菲分光光度法測(cè)定鐵的方法。( 1)吸收曲線的測(cè)繪;( 2)標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)繪;( 3)未知樣中鐵含量的測(cè)定;二原理圖 1-1 分光光度計(jì)光學(xué)系統(tǒng)圖1- 光源 2- 進(jìn)光狹縫3 , 6- 反射鏡4 , 7- 透鏡 5- 棱鏡8- 出光狹縫9- 比色皿 10- 光電調(diào)節(jié)器11- 硒光電池12- 檢流計(jì)1 分光光度法及其測(cè)量的條件: 分光光度法主要利用的是物質(zhì)對(duì)光的選擇性吸收,按照郎伯比爾定律,在一定
2、的線性范圍內(nèi)(即濃度范圍內(nèi))找出吸光度A 與物質(zhì)含量之間的定量關(guān)系。主要受顯色條件和測(cè)量吸光度條件的影響,其中顯色條件主要與顯色劑的用量、介質(zhì)的酸度、顯色溫度、顯色時(shí)間以及干擾離子的消除等有關(guān);而測(cè)量吸光度的條件則與入射波長(zhǎng)入、吸光度范圍以及參比溶液等有關(guān)。2 .鄰二氮雜菲-亞鐵配合物:在顯色前,首先用鹽酸羥胺把Fe3+離子還原為Fe2+離子,其反應(yīng)式如下:在pH=2-9的條件下,F(xiàn)e2+離子與鄰二氮雜菲生成極穩(wěn)定的橘紅色配合物,其反應(yīng)式如下:該配合物的lgK穩(wěn)=21.3 ,摩爾吸光系數(shù)&10= 1.1 X 1040測(cè)定時(shí),溶液酸度控制在pH=5.0,以避免酸度過(guò)高導(dǎo)致反應(yīng)速度過(guò)慢,酸
3、度過(guò)低Fe2+離子水解,從而影響顯色;此外,若溶液中存在著可與顯色劑生成沉淀(Bi 3+、 Cd2+、 Hg2+、 Ag+、Zn2+)或有色配合物(CsT、Cu2+、Ni2+)的離子時(shí),應(yīng)注意它們的干擾作用。三 752型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)的使用1 打開電源開關(guān),使儀器預(yù)熱20 分鐘;2 .按“方式鍵” (MODE將測(cè)試方式設(shè)置為吸光度方式;3 .按“波長(zhǎng)設(shè)置”鍵(p,力設(shè)置想要的分析波長(zhǎng);4 .打開樣品室蓋,將盛有參比和被測(cè)溶液(約 2.5 cm)的比色皿分別插入 比色槽中,蓋上樣品室蓋;5 .將參比溶液推入光路中,按“ 100%T鍵調(diào)整零ABS 6將被測(cè)溶液拉入到光路中,此時(shí)顯示器上所顯示的
4、是被測(cè)樣品的吸光度值。四試劑10 Ng/mL的鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液;10%勺鹽酸羥胺溶液;0.1%的鄰二氮雜菲溶液;1 mol/L NaAc 溶液。五實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1 .吸收曲線的測(cè)繪:準(zhǔn)確移取 10 Ng/mL鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液5 mL于50 mL容量瓶中,加入10%fc酸 羥胺溶液1 mL,搖勻,稍冷,加入1 mol/L溶液5 mL和0.1%鄰二氮雜菲溶液3 mL,以蒸儲(chǔ)水 稀釋至刻度,在752 型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),用比色皿以蒸餾水為參比溶液,用不同的波長(zhǎng)從570 nm開始到430 nm為止,每隔10或20 nm測(cè)定一次吸光度(其中從 530-490 nm每隔10 nm 測(cè)一次)。然后以波長(zhǎng)為橫坐標(biāo),吸光度為縱
5、坐標(biāo)繪制出吸收曲線,從吸收曲線上確定該測(cè)定的適宜波長(zhǎng)。2 .標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)繪:取50 mL容量瓶6只,分別移取10 g/mL鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液2.0、4.0、6.0、3 .0和10.0 mL于5只容量瓶中,另一容量瓶中不加鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液。然后各加1 mL10%鹽酸羥胺,搖勻,經(jīng)2 min后,冉各加5 mL 1 mol/L NaAc溶液及3 mL 0.1%鄰二氮雜菲,以蒸儲(chǔ)水稀釋 至刻度,搖勻。在分光光度計(jì)上,用比色皿在最大吸收波長(zhǎng)( 510 nm)處,測(cè)定各溶液的吸光 度。以鐵含量為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。3.未知液中鐵含量的測(cè)定:吸取 5 mL未知液代替標(biāo)準(zhǔn)溶液,其他步驟均同上,測(cè)定吸光度。
6、 由未知液的吸光度在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出 5 m/知液中的鐵含量,然后以每毫升未知液中含鐵多少 微克表示結(jié)果。六.記錄及分析結(jié)果比色皿: 光源電壓:(1)吸收曲線的測(cè)繪波長(zhǎng)/ (nm)吸光度A570550530520510500490470430(2)標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)繪與鐵含量的測(cè)定試液編號(hào)標(biāo)準(zhǔn)溶液的量/mL總鐵含量/心g10022.02034.04046.06058.080610.0100未知液450吸光度七.課堂提問(wèn)1 .鄰二氮雜菲分光光度法測(cè)定鐵的原理、反應(yīng) pH條件、用什麼控制酸度、力口 NHOH-HCl的目 的?2 .為什麼繪制吸收曲線?為什麼在最大吸收波長(zhǎng)下測(cè)定?每改變?用參比液進(jìn)行重新調(diào)零
7、?3 .為什麼繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線?如何繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線?是否每測(cè)一點(diǎn)必須用參比液進(jìn)行調(diào)零?實(shí)驗(yàn)二 醋酸的電位滴定(間接電位法)一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? .掌握用酸堿電位滴定法測(cè)定醋酸的原理和方法。2 .學(xué)會(huì)用二階微商法計(jì)算終點(diǎn)體積(V終點(diǎn))的方法。3 .學(xué)會(huì)用電位滴定法測(cè)定和計(jì)算 HACfe離常數(shù)的原理和方法。二.原理圖2-1電位滴定儀器裝置1-滴定管2-滴定池3-指使電極4-參比電極5-攪拌棒6-電磁攪拌器 7-電位計(jì)1 .二階微商法計(jì)算終點(diǎn)體積(V終點(diǎn)):在酸堿滴定的過(guò)程中,利用酸堿中和反應(yīng),隨著滴定劑 的不斷加入,被測(cè)物與滴定劑發(fā)生酸堿中和反應(yīng),溶液的批pH值不斷變化。由加入滴定劑的體積V和測(cè)得的pH值,可
8、繪制 為H/V-V滴定曲線。根據(jù)等當(dāng)點(diǎn)時(shí),二階微商值等于零,計(jì)算 出滴定終點(diǎn)時(shí)所消耗的終點(diǎn)體積(V終點(diǎn))。2 . HAC4離常數(shù)的測(cè)定:醋酸在水溶液中的離解如下HAc= H Ac-其離解常數(shù)Ka =H Ac HAc當(dāng)醋酸被NaOHf定了一半時(shí),溶液中根據(jù)上式,此時(shí)H + = Ka或pH = pKa ;由此可知,醋酸電離常數(shù) Ka的負(fù)對(duì)數(shù)值,就 等于NaOHf定一半時(shí)所對(duì)應(yīng)的pH值。3 .PHS-2型酸度計(jì)的使用1 .在去離子水中過(guò)夜浸泡玻璃電極使電極活化;2 .安裝電極,調(diào)節(jié)零點(diǎn);3 .用鄰苯二甲酸氫甲標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液(pH=4.0)校準(zhǔn)儀器;4 .用蒸儲(chǔ)水洗凈電極;5 .將玻璃電極和甘汞電極插入
9、到待測(cè)溶液中,測(cè)量溶液的pH值。4 .儀器和試劑1 .儀器:PHS-2型酸度計(jì)一臺(tái);玻璃電極及飽和甘汞電極各一支。2 .試劑:0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液,0.1 mol/L 醋酸,鄰苯二甲酸氫鉀標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液。五.實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1 . HACfe位滴定過(guò)程中溶液pH值的測(cè)定:準(zhǔn)確吸取0.1 mol/L HAC溶液20 mL于150 mL燒杯 中,用蒸儲(chǔ)水稀釋至約100 mL加入酚酥2滴,放入電極及鐵芯攪拌棒,開動(dòng)電磁攪拌器,用0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定,測(cè)量并記錄消耗的 NaOH容液的體積(VNao)和相對(duì)應(yīng)的溶液pH 值。上述滴定實(shí)驗(yàn)做1次。2 .計(jì)算滴定終點(diǎn)時(shí)消耗的NaOH
10、§液的體積數(shù)(V終點(diǎn)):V終點(diǎn)=Vi +V2 -Vl(內(nèi)插法)3 .計(jì)算HAC勺準(zhǔn)確濃度(Ga& :其中GaoH為準(zhǔn)確標(biāo)定后的NaOH勺濃度4 .計(jì)算HAC勺pK值(2V終點(diǎn)時(shí)對(duì)應(yīng)的pH值):PK a = (ph 1 + 9H J,1父:v 終點(diǎn)Vi j (內(nèi)插法)V 2 - v 126 .記錄及分析結(jié)果VNao/mLpHpH/ V7 .課堂提問(wèn)1 .二階微商法確定滴定終點(diǎn)的方法原理?2 .為什麼鄰苯二甲酸氫甲溶液也可作為緩沖溶液?實(shí)驗(yàn)三 水的pH測(cè)定(直接電位法)一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? . 了解電位法測(cè)定水的pH值的原理與方法。2 .學(xué)習(xí)酸度計(jì)的使用方法。二.原理圖3-1玻璃電極測(cè)
11、定pH的工作電池示意圖1.玻璃電極與甘汞電極插入到被測(cè)溶液中組成原電池:赳拿繇嚴(yán)隔嬲學(xué)端品m紫"KCl (飽和),Hg2c12Hg但因式中K”無(wú)法測(cè)得,因此在實(shí)際工作中,用酸度計(jì)測(cè)定溶液的pH值時(shí),首先必須用已知pH值的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液來(lái)校正酸度計(jì)(即“定位”),根據(jù)上式測(cè)得測(cè)定液的相對(duì)pH值。校正時(shí)應(yīng)選用與被測(cè)溶液pH值相接近的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液,以減 少在測(cè)量過(guò)程中可能由于液接電位、不對(duì)稱電位以及溫度變化等引起的誤差。嚴(yán)格地講,一支電極應(yīng)用兩種不同pH值的緩沖溶液校正,在用一種pH值的緩沖溶液定位后,測(cè)第二種 緩沖溶液的pH值時(shí),誤差應(yīng)在0.05之內(nèi)。校正后的酸度計(jì)可直接用來(lái)測(cè)量水或其他溶
12、液的 pH值。三.221型玻璃電極的使用1 .在去離子水中過(guò)夜浸泡玻璃電極使其活化;2 .將玻璃電極和甘汞電極插入到標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液中溶液中,進(jìn)行pH值的校正;3 .用校正后的酸度計(jì)測(cè)量水溶液的 pH值。四.儀器和試劑1 .儀器:25型酸度計(jì)或PHS-29A型酸度計(jì)一臺(tái);221型玻璃電極及222型飽和甘汞電極各一支;100 mL燒杯4只。2 .試劑:pH=4.00的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液(20 C)。標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液通常能穩(wěn)定兩個(gè)月,其 pH隨溫度 不同稍有差異。五.實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1 .將電極和燒杯用蒸儲(chǔ)水沖洗干凈,用 pH=4.00的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液淌洗電極1-2次,電極用濾紙 吸干;2 .用pH=4.00的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶
13、液校正酸度計(jì),標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液用完后,可倒回原試劑瓶,反復(fù)使 用。3 .用水樣將電極淌洗4-5次后,測(cè)量水樣,由儀器刻度表上讀取 pH值,重復(fù) 測(cè)量三次。4 .測(cè)量完畢后,將電極和燒杯沖洗干凈,妥善保管。六.記錄及分析結(jié)果測(cè)量次數(shù)測(cè)量?jī)?nèi)行123pH個(gè)別絕對(duì)偏差相對(duì)平均偏差七.課堂提問(wèn)1 .電位法測(cè)定水的pH值原理?2 .酸度計(jì)為什麼要用已知pH的標(biāo)準(zhǔn)緩沖溶液校正?3 .玻璃電極在使用前應(yīng)如何處理?為什麼?實(shí)驗(yàn)四 水中微量氟的測(cè)定(離子選擇電極法)一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? . 了解用F-離子選擇電極測(cè)定水中微量氟的原理與方法。2 , 了解總離子強(qiáng)度調(diào)節(jié)緩沖溶液的意義和作用。3 .掌握標(biāo)準(zhǔn)加入法測(cè)定水中微量 F
14、離子的方法。二.原理圖4-1氟離子測(cè)量裝置1 氟離子電極:氟離子電極(LaF3 單晶敏感膜電極,內(nèi)裝0.1 mo/L NaCl-NaF 內(nèi)參比溶液和Ag-AgCl內(nèi)參比電極)是一種電化學(xué)傳感器,它將溶液中F-離子的活度轉(zhuǎn)換成相應(yīng)的電位。當(dāng)氟電極插入溶液時(shí),其敏感膜對(duì) F-離子產(chǎn)生響應(yīng),在膜和溶液間產(chǎn)生一定的膜電位:當(dāng)氟電極(指示電極)與飽和甘汞電極(參比電極)插入被測(cè)溶液中組成原電池時(shí),電池的電動(dòng)勢(shì)E與F-離子活度的關(guān)系當(dāng)加入TISAB (總離子強(qiáng)度調(diào)節(jié)緩沖溶液)時(shí),由于離子活度系數(shù)丫為一定值,則電動(dòng)勢(shì)E則與F離子濃度有如下的關(guān)系:2標(biāo)準(zhǔn)加入法:當(dāng)試液為離子強(qiáng)度比較大的金屬離子溶液,且溶液中存
15、在絡(luò)合劑,若要測(cè)定金屬離子的總濃度(包括游離的和絡(luò)合的),則應(yīng)采用標(biāo)準(zhǔn)加入法。該法是在原待測(cè)試樣(待測(cè)離子總濃度為Cx,體積為 V 中,加入少量體積(VS約為原試液體積的1/100)高濃度(Cs 約為Cx的100倍)的待測(cè)離子的標(biāo)準(zhǔn)溶液,根據(jù)加入標(biāo)準(zhǔn)溶液后試樣濃度的增加量Ac,以及標(biāo)準(zhǔn)溶液加入前后電動(dòng)勢(shì)的差值 AE,推算出待測(cè)金屬離子的總濃度 Cx。該法的優(yōu)點(diǎn)是僅需一種 標(biāo)準(zhǔn)溶液,操作簡(jiǎn)單快速,適用于組成比較復(fù)雜,份數(shù)較少的試樣。三 7601 型氟電極的使用1 在去離子水中過(guò)夜浸泡氟電極使其活化;2 .用去離子水洗到空白電位(E)為300 mV左右。3將氟電極和甘汞電極插入到待測(cè)溶液中,測(cè)量溶
16、液的E 值。四儀器和試劑1 儀器:7601 型氟電極;232 或 222 型甘汞電極;電磁攪拌器。2 .試劑:0.1000 mo/L氟標(biāo)準(zhǔn)溶液;TISAB (總離子強(qiáng)度調(diào)節(jié)緩沖溶液)。五實(shí)驗(yàn)內(nèi)容標(biāo)準(zhǔn)加入法測(cè)定水中微量F-離子的濃度:1 .準(zhǔn)確吸取50 mL F-離子試液于100 mL容量瓶中,加入10 mL TISAB溶液,用去離子水稀釋 至刻度,搖勻,吸取50 mL于燒杯中,測(cè)定Ei02 .在上述試液中準(zhǔn)確加入0.5 mL(VS)濃度約為10-2 mol/L(C s)的氟標(biāo)準(zhǔn)溶液,混勻,繼續(xù)測(cè)定 E2。3 .在測(cè)定過(guò)巳的試液中,力口 5 mL TISAB溶液及45 mL去離子水,混勻,測(cè)定
17、E3。4 .計(jì)算水中微量F-離子的濃度(G):六記錄及分析結(jié)果12EoEiE2E3CS1,用氟電極測(cè)定F-離子濃度的原理是什麼?2 . TIASB包含哪些組分?各組分的作用怎樣?3 .標(biāo)準(zhǔn)加入法測(cè)定水中微量F-離子的原理實(shí)驗(yàn)五 苯系物的分析(定性與定量)一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? .掌握SP-2100型氣相色譜儀的操作和苯系物的分析。2 .掌握用保留值定性的方法。3 .學(xué)習(xí)色譜校正因子的測(cè)定。4 .學(xué)習(xí)面積歸一化法計(jì)算各組分的含量。二.原理圖5-1氣相色譜分析流程圖1-載氣鋼瓶2-減壓閥3-凈化干燥器 4-針形閥5-流量計(jì)6-壓力表7-進(jìn)樣器、氣化室 8-色譜柱9-檢測(cè)器10-放大器11-記錄儀1 .氣相
18、色譜定性、定量原理(面積歸一化法):定性原理:利用物質(zhì)在氣固或氣液兩相中的分配系數(shù)差異進(jìn)行分離的分析方法,稱之為氣 相色譜法;按照同一物質(zhì)在相同色譜條件下保留時(shí)間(tR) 一致,進(jìn)行氣相色譜的定性分析。定量原理:確定各組分百分含量的方法,稱之為氣相色譜的定量。根據(jù)樣品洗脫情況,通 常的定量方法分為內(nèi)標(biāo)法、外標(biāo)法和面積歸一化法三種。當(dāng)混合樣中所有組分均被洗脫時(shí),可 用面積歸一化法計(jì)算各組分的含量,其計(jì)算公式如下所示:其中fi為相對(duì)校正因子,其值大小等于某物質(zhì)的絕對(duì)校正因子與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的絕對(duì)校正因子的比化2 .苯系物:苯系物指苯、甲苯、乙苯等混合物,在本實(shí)驗(yàn)中使用有機(jī)皂土配入適量的鄰苯二 甲酸二壬酯
19、作固定液,氫氣作載氣,在適當(dāng)?shù)纳V條件下(柱溫、進(jìn)樣器溫度、檢測(cè)器溫度、 熱絲溫度、橋電流、載氣流速等),能將各組分分開,其色譜圖如圖 4-2所示。圖4-2苯系物色譜圖1- 苯;2-甲苯;3-乙苯三.SP-2100型氣相色譜儀的操作1 .儀器的操作及參數(shù)的設(shè)定i .通載氣:打開H瓶總閥,輸出壓力調(diào)為0.4 MPa,調(diào)節(jié)儀器氣路箱版面的兩路載氣穩(wěn)壓 閥,以獲得TCD僉測(cè)器的流量;ii .通電:打開電源開關(guān);iii .檢查或設(shè)定儀器的工作參數(shù):A)設(shè)定柱箱溫度、進(jìn)樣器溫度、TCD僉測(cè)器溫度;待儀器顯示“就緒后,設(shè)定熱絲溫度、放大、極性;B)操作條件;TCD檢測(cè)器柱箱溫度60 c進(jìn)樣器溫度90 cT
20、CD檢測(cè)器溫度110 c熱絲溫度C橋電流130 mA放大10極性正載氣流速H:50 mL/min進(jìn)樣量15iv .穩(wěn)定儀器:先調(diào)零點(diǎn)平衡粗調(diào)(調(diào)節(jié)氣路板面后方的多圈電位器),將輸出調(diào)在土100 mV以內(nèi)檢測(cè)器達(dá)到熱平衡后,然后再按面板上的“調(diào)零”按鍵將基線調(diào)零;2 .進(jìn)樣:當(dāng)基線足夠穩(wěn)定時(shí),即可進(jìn)樣分析;i .用去離子水徹底清洗10小微量注射器;ii .用幾微開樣品溶劑潤(rùn)洗注射器 2-3次;iii .用注射器從樣品容器中慢慢抽出幾微開樣品,取出注射器,將注射器的推桿仔細(xì)地推 倒1人刻度處(注意將氣泡排出);iv .將注射器的針頭全部插入到進(jìn)樣器中,迅速進(jìn)樣并拔出注射器,同時(shí)按下數(shù)據(jù)處理裝 置的
21、“啟動(dòng)”按鈕,開始采集并顯示譜圖;3.譜圖的采集及數(shù)據(jù)處理i .譜圖的采集:A) “文件”“工作目錄”,在彈出的對(duì)話框中選擇某一文件夾作為程序的工作目錄;B) “文件”“褥塞;C) 在“譜圖參數(shù)表”的“信號(hào)通道”里選擇譜圖信號(hào)的采集通道;D) 選擇“操作”菜單中的“譜圖采集”命令,這時(shí)文檔窗口譜圖區(qū)內(nèi)開始有譜圖走 動(dòng);E) 當(dāng)所有峰出完后,選擇“操作”菜單中的“手動(dòng)終止”命令;ii .校正歸一法操作步驟:A) 檢查“定量組分表”里是否已含有校正因子。若無(wú),則應(yīng)按計(jì)算校正因子操作步驟 計(jì)算待測(cè)組分的校正因子:a)在譜圖中用鼠標(biāo)指著某一組分對(duì)應(yīng)的峰,按下鼠標(biāo)右鍵在彈出的菜單中選擇“自 動(dòng)填寫定量組
22、分表中套峰時(shí)間”命令。重復(fù)此步,將標(biāo)樣中全部組分所對(duì)應(yīng)的峰 選進(jìn)“定量組分表”;b) ”定量組分表”里填上標(biāo)樣中各組分的質(zhì)量(g);c)在“定量方法表”中選擇“計(jì)算校正因子”;d)選擇“操作”菜單中“定量計(jì)算”命令,程序隨即將計(jì)算結(jié)果填入“定量結(jié)果 表”中;e)在“定量組分表”中單擊“取校正因子”,將剛剛計(jì)算得到的但尚在“定量結(jié)果 表”中的校正因子取到“定量組分表”中;f)選擇“文件”菜單中的“存為摸板”命令將上述文檔窗口中的幾張表格保存到當(dāng) 前工作目錄下的“默認(rèn)模板.tab ” ;B)待測(cè)樣品質(zhì)量百分含量的計(jì)算:a)按譜圖處理操作步驟所述采集并處理待測(cè)樣品的譜圖據(jù):b)在“定量方法表”中選擇
23、“校正歸一”;c) 選擇“操作”菜單中“定量計(jì)算”命令,程序隨即將計(jì)算結(jié)果填入“定量結(jié)果表”中;4. 儀器的關(guān)閉:i. .將TCDB導(dǎo)檢測(cè)器熱絲溫度設(shè)定為關(guān)閉;ii. 關(guān)閉儀器的總電源,并從電源插座上拔下儀器的電源電纜插頭;iii. 關(guān)閉載氣氣瓶總閥;四儀器和試劑1.儀器:SP-2100型氣相色譜儀;微量注射器;氫氣鋼瓶。2試劑:101 白色擔(dān)體 ( 60-80 目) ;固定液:有機(jī)皂土-34 + 鄰苯二甲酸二壬酯。苯、甲苯、乙苯單樣的標(biāo)準(zhǔn)樣品(分析純);苯、甲苯、乙苯混合標(biāo)準(zhǔn)樣(分析純)。五實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1. 苯系物的定性分析:根據(jù)保留值用苯、甲苯和乙苯的單樣標(biāo)準(zhǔn)液定性混合液中的三組分;2. 苯系
24、物的定量分析:歸一化法計(jì)算各組分的含量i .校正因子的求?。簩⒁阎M分量(g)的標(biāo)準(zhǔn)混合溶液用“計(jì)算校正因子”法計(jì)算出校正因 子;ii 待測(cè)樣品百分含量的計(jì)算(“校正歸一”化法計(jì)算)六記錄及分析結(jié)果打印出實(shí)驗(yàn)結(jié)果:包括保留時(shí)間、組分名稱以及質(zhì)量百分含量等數(shù)據(jù)結(jié)果的色譜圖譜。七課堂提問(wèn)1保留值定性分析的原理?2 如何用面積歸一化法進(jìn)行定量?實(shí)驗(yàn)六 原子吸收光譜法測(cè)定自來(lái)水中鎂的含量一目的1 掌握原子吸收光譜分析法的基本原理;2了解原子吸收分光光度計(jì)的主要結(jié)構(gòu),并學(xué)習(xí)其操作和分析方法;3學(xué)習(xí)選擇操作條件和干擾抑制劑的應(yīng)用;4了解從回收率來(lái)評(píng)價(jià)分析方案和測(cè)得結(jié)果的方法。二原理1 標(biāo)準(zhǔn)曲線法測(cè)定鎂的含
25、量:溶液中的鎂離子在火焰溫度下變成鎂原子蒸汽,光源空心陰極鎂燈輻射出波長(zhǎng)為285.2 nm的鎂特征譜線,被鎂原子蒸汽強(qiáng)烈吸收,其吸收的強(qiáng)度與鎂原子蒸汽的濃度關(guān)系符合朗伯比爾定律,即鎂原子蒸汽濃度N 與溶液中鎂離子濃度c 成正比,當(dāng)測(cè)定條件固定時(shí),利用A與c的關(guān)系,用已知不同濃度的鎂離子標(biāo)準(zhǔn)溶液測(cè)出不同的吸光度,繪制成標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)測(cè)試液的吸光度值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線求出試液中鎂的含量。2干擾抑制劑:自來(lái)水中除鎂離子外還含有其他陰離子和陽(yáng)離子,這些離子鎂的測(cè)定能發(fā)生干擾,使測(cè)得結(jié)果偏低。加入鍶離子作干擾抑制劑,可以獲得正確的結(jié)果。3回收試驗(yàn):對(duì)于試樣的組成不完全清楚的或分析反應(yīng)不完全引起的系統(tǒng)誤差,可以
26、采用回收試驗(yàn)進(jìn)行校正。該法是向試樣中或標(biāo)準(zhǔn)試樣中加入已知含量的被測(cè)組分的純凈物質(zhì),然后用同一方法進(jìn)行測(cè)定,由測(cè)得的增加值與加入量之差,估算系統(tǒng)誤差,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行校正。三.TAS-990型原子吸收儀的操作1 開機(jī)依次打開打印機(jī),顯示器,計(jì)算機(jī)開關(guān),等計(jì)算機(jī)完全啟動(dòng)后,打開原子吸收主機(jī)電源,打開蓋箱。2儀器初始化i .雙擊“AAwin”圖標(biāo),選擇聯(lián)機(jī)方式,點(diǎn)擊“確定”,初始化 3-5分鐘;ii 選擇元素?zé)艉皖A(yù)熱等(雙擊元素?zé)粑恢茫筛臒粑恢蒙系脑胤?hào))。點(diǎn)擊“下一步”,出現(xiàn)“設(shè)置元素測(cè)量參數(shù)”窗口;iii 設(shè)定光譜帶寬,燃?xì)饬髁?,燃燒器高度等參?shù)(一般工作燈電流,預(yù)熱燈電流,負(fù)高壓以及燃燒器位
27、置不用更改),點(diǎn)擊“下一步”,出現(xiàn)“設(shè)置波長(zhǎng)窗口”:iv 不要更改默認(rèn)的波長(zhǎng)值,直接點(diǎn)擊“尋峰”,尋峰完畢,出現(xiàn)最大吸收波長(zhǎng)對(duì)應(yīng)的吸收峰,點(diǎn)擊“關(guān)閉”,點(diǎn)擊“下一步”,點(diǎn)擊“完成”。3火焰吸收的光路調(diào)整點(diǎn)擊“儀器”下的“燃燒器參數(shù)”,輸入燃?xì)饬髁亢透叨龋ㄖ苯佑绊懳罩礎(chǔ)的大?。c(diǎn)擊“執(zhí)行”,用白色濾紙觀察光電即燃燒頭是否在光路的正上方,若有偏離,更改相應(yīng)參數(shù),點(diǎn)擊“執(zhí)行”,可以反復(fù)調(diào)節(jié),直到燃燒頭和光路平行并位于光路正上方 (如不平行,可通過(guò)手動(dòng)調(diào)節(jié)燃燒頭角度來(lái)完成),點(diǎn)擊“確定”。4設(shè)置樣品:點(diǎn)擊“樣品”圖標(biāo)i 選擇校正方法(一般為標(biāo)準(zhǔn)曲線法),曲線方程(一般為一次方程),濃度單位,樣品名
28、稱和起始編號(hào),點(diǎn)擊“下一步”;ii 輸入標(biāo)準(zhǔn)樣品的濃度和個(gè)數(shù)(可依照提示增加和減少標(biāo)準(zhǔn)樣品的數(shù)量),點(diǎn)擊“下一步”;iii 選擇需要或不需要空白校正和靈敏度校正(一般為不要),然后點(diǎn)擊“下一步”;iv 輸入待測(cè)樣品數(shù)量,名稱,起始編號(hào),以及相應(yīng)的稀釋倍數(shù)等信息,點(diǎn)擊“完成”。5設(shè)置參數(shù):點(diǎn)擊“參數(shù)”圖標(biāo),彈出測(cè)量參數(shù)窗口。i “常規(guī)”:輸入標(biāo)準(zhǔn)樣品,空白樣品,未知樣品等的測(cè)量次數(shù)(測(cè)幾次計(jì)算出平均值),選擇測(cè)量方式(手動(dòng)或自動(dòng),一般為自動(dòng)),輸入間隔時(shí)間和采樣延時(shí)(一般均為1 秒);ii “顯示”:設(shè)置吸光值最小值和最大值(一般為 0-0.7 ),刷新時(shí)間(一般為300 秒);iii “信號(hào)處
29、理”:設(shè)置計(jì)算方式(一般火焰吸收為連續(xù)或高峰),積分時(shí)間和濾波系數(shù)(積分為 1,系數(shù)為0.3 秒);iv “質(zhì)量控制”:適用于帶自動(dòng)進(jìn)樣的設(shè)備;點(diǎn)擊“確定”,退出參數(shù)設(shè)置窗口。6測(cè)量i 依次打開空氣壓縮機(jī)的風(fēng)機(jī)開關(guān),工作開關(guān),調(diào)節(jié)壓力調(diào)節(jié)閥,使空氣壓力為0.2-0.25MPa打開乙烘鋼瓶主閥,調(diào)節(jié)出口壓力為0.05-0.06 MPa ,檢查水封;點(diǎn)擊“點(diǎn)火”圖標(biāo),火焰穩(wěn)定后,首先吸噴純凈水(將塑料管插入到蒸儲(chǔ)水中)15 min,防止燃燒頭結(jié)鹽;ii 點(diǎn)擊“測(cè)量”,吸噴空白液(將塑料管插入到空白液中)校零,即線平直后,吸噴標(biāo)準(zhǔn)溶液,點(diǎn)擊“開始”;每測(cè)一次標(biāo)準(zhǔn)溶液前,均需吸噴空白液校零,最終得到標(biāo)
30、準(zhǔn)曲線;按照相同操作方法測(cè)量未知樣;測(cè)量完后,點(diǎn)擊“終止”,退出測(cè)量窗口,關(guān)閉乙炔鋼瓶主閥,點(diǎn)擊“確定”,退出“熄火提示窗口”吸噴純水 1 分鐘;iii 點(diǎn)擊“視圖”下的“校正曲線”,查看曲線的相關(guān)系數(shù),決定測(cè)量數(shù)據(jù)的可靠性,點(diǎn)擊“保存”或“打印”處理;7關(guān)機(jī)依次關(guān)閉AAwin軟件,原子吸收主機(jī)電源。乙烘鋼瓶主閥,空壓機(jī)工作開關(guān),按放水閥, 排空氣壓縮機(jī)中的冷凝水,關(guān)閉風(fēng)機(jī)開關(guān),退出計(jì)算機(jī)windows操作程序,關(guān)閉打印機(jī),顯示器和計(jì)算機(jī)電源。蓋上儀器罩,檢查乙炔是否已經(jīng)關(guān)閉,清理實(shí)驗(yàn)室。四、儀器和試劑1、儀器:TAS-990型原子吸收分光光度計(jì),鎂元素空心陰極燈,乙烘,空氣供氣設(shè)備;容量瓶(
31、 50 mL 17 支, 100 mL 1 支);吸量管(1 mL 1 支, 5 mL 3 支)。2、試劑:10.00 ug/mL 鎂的標(biāo)準(zhǔn)溶液;10.00 mg/mL 鍶溶液;二級(jí)純鹽酸,硝酸,去離子水,自來(lái)水樣五.實(shí)驗(yàn)內(nèi)容調(diào)整波長(zhǎng)到285.2 nm,燈電流3 mA;1、燃?xì)夂椭細(xì)獗壤倪x擇:調(diào)整空氣壓力為 0.2 MP價(jià)口流量,使霧化器處于最佳霧化狀態(tài)。再用去離子水調(diào)A=0,然后固定乙快壓力為0.05 MPa改變乙快流量,測(cè)量50 mL0.4 ug/mL 鎂標(biāo)準(zhǔn)液(含2.0 mL鍬溶液)的A值。記錄各種壓力、流量下的 A值(注意:每改變乙快 流量,都要用去離子水調(diào)節(jié) A至零。),經(jīng)若干次
32、測(cè)試后,從記錄結(jié)果選擇出穩(wěn)定性好且 A 值又較大時(shí)的乙快-空氣的壓力和流量。2、燃燒器高度的選擇:改變?nèi)細(xì)飧叨龋瑴y(cè)定上述標(biāo)準(zhǔn)鎂溶液的A值,選擇出穩(wěn)定性好且A值又較大的燃燒器高度。3、干擾抑制劑鍬溶液加入量的選擇:移取自來(lái)水樣 5 mL,分別放入6只50 mL容量瓶中,分 別加入2 mL 1:1 HCl;六瓶中分別加入0、1、2、3、4、5 mL鍬溶液,用水稀釋至刻度, 搖勻。每次用去離子水調(diào)A為零,依次測(cè)定各瓶試樣的吸光度,由測(cè)得的穩(wěn)定性好且A值較大的結(jié)果,選擇出抑制干擾最佳的鍬溶液加入量。4、標(biāo)準(zhǔn)曲線白繪制:于6只50 mL容量瓶中,分別加入0、10、20、30、40、50 ug鎂的標(biāo)準(zhǔn) 溶
33、液,每瓶中加入選得的最佳量鍬溶液,每次用去離子水調(diào)零,依次測(cè)得各瓶溶液的 A值,以此數(shù)據(jù)繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線。5、自來(lái)水樣的測(cè)定:準(zhǔn)確移取 5 mL自來(lái)水樣兩份,分別置于50 mL容量瓶中加入最佳量的鍬 溶液,用去離子水稀釋至刻度,搖勻;用去離子水調(diào)零,測(cè)出其 A值,再由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出 水樣中鎂的含量R!6、回收率的測(cè)定:準(zhǔn)確移取 5 mL自來(lái)水樣兩份,分別置于50 mL容量瓶中,加入已知量的鎂 標(biāo)準(zhǔn)溶液,再加最佳量的鍬溶液,用去離子水稀釋至刻度,搖勻;用去離子水調(diào)零,測(cè)出 其A值,再由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出鎂的含量,根據(jù)回收率公式計(jì)算出樣品的回收率。六.記錄及分析結(jié)果波長(zhǎng): 燈電流: 乙快-空氣壓力:乙快-空
34、氣流量: 助燃器高度: (1)鍬溶液加入量的選擇試液編號(hào)鋰溶液的量/mL吸光度1.02.03.04.05.0(2)標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)繪與鎂含量的測(cè)定試液編號(hào)鎂含量/ 11 g吸光度(3)七.1.2.3、10210320430540650未知液根據(jù)下式計(jì)算出鎂的濃度:回收率的測(cè)定試液編號(hào)加入的鎂量/心g 吸光度總的鎂含量/心g根據(jù)下式計(jì)算出鎂的回收率:課堂提問(wèn)原子吸收光譜分析法的原理?連續(xù)測(cè)定幾個(gè)試樣為什麼每次都要用去離子水調(diào)零?是否可用回收率來(lái)校正測(cè)量結(jié)果?如何校正?實(shí)驗(yàn)七離子交換液相色譜法分離標(biāo)準(zhǔn)蛋白混合物一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? .掌握AKTA Purifier-900 型液相色譜儀的操作。2 .掌握離子
35、交換色譜分離蛋白的原理。3 .掌握液相色譜定性分析方法。4 .掌握液相色譜定量分析方法。二原理圖 7-1 高效液相色譜示意圖1 液相色譜定性、定量原理(面積歸一化法):定性原理:利用物質(zhì)在液固兩相中的分配系數(shù)差異進(jìn)行分離的分析方法,稱之為液相色譜法;按照同一蛋白在相同色譜條件下保留時(shí)間(tR) 一致,進(jìn)行液相色譜的定性分析。定量原理:確定各組分百分含量的方法,稱之為液相色譜的定量。根據(jù)樣品洗脫情況,通常的定量方法分為內(nèi)標(biāo)法、外標(biāo)法和面積歸一化法三種。當(dāng)混合蛋白樣中所有組分均被洗脫時(shí),可用面積歸一化法計(jì)算各組分的含量,其計(jì)算公式如下所示:.f 一 , 一 一 -一 , 一 -一 , 其中fi為相
36、對(duì)校正因子,其值大小等于某物質(zhì)的絕對(duì)校正因子與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的絕對(duì)校正因子的比值:2離子交換色譜分離蛋白的原理:利用各蛋白質(zhì)與固定相間的靜電作用大小的差異性,在適當(dāng)?shù)纳V條件下(色譜柱、流動(dòng)相、洗脫方式等),能將各蛋白組分分開,其色譜圖如圖6-2所示。圖 7-2 IDA- 裸柱分離標(biāo)準(zhǔn)蛋白混合物色譜圖1. BSA 2. RNase 3. Cyt-C 中雜蛋白4. Cyt-C 5. Lys色譜條件:色譜柱:IDA-柱(100 X 4.6 mm I.D.); 流動(dòng)相:A: 0.02 mol/L KH 2PO (pH 6.0);B: 0.02 mol/L KH 2PO4 (pH 6.0) + 0.5 mo
37、l/L NaCl;梯度洗脫: 20 min B 從 0 到 100%;流速:1 mL/min ; 檢測(cè)器:UV (入=280 nm);進(jìn)樣量:15 g L;各蛋白濃度:2.0 mg/mL.三 AKTA Purifier-900 型生物色譜儀的操作1 開機(jī):依次打開計(jì)算機(jī)、生物色譜儀主機(jī),待色譜儀初始化完畢后,點(diǎn)擊“Unicorn ”圖標(biāo),輸入用戶名和密碼(均為“default ”),則 UNICORN Message、 r Method Editor 、System Control 、 Evaluation 四個(gè)窗口同時(shí)出現(xiàn)。2樣品測(cè)試操作i 手動(dòng)式操作:A.色譜柱的平衡:點(diǎn)擊“ System
38、 Control 窗口下“ Manual”菜單,選擇“ Alarm & Mon”窗 口,設(shè)定色譜柱最大限壓和操作波長(zhǎng),點(diǎn)擊“ insert ;選擇“ Pump窗口,設(shè)定操作流 速,點(diǎn)擊“insert ”,再點(diǎn)擊“ Execute”,讓色譜柱在上述條件下平衡;待基線平直后, 在“Alarm & Morn"窗口中點(diǎn)擊“ Autozero UV ,進(jìn)行自動(dòng)校零,再在此條件下讓柱子平衡 幾個(gè)柱體積。B.樣品測(cè)試:選擇“ Flowpath”窗口,選擇“inject ”,點(diǎn)擊“insert ,選擇“ Pump窗口,設(shè)定洗脫方式和洗脫時(shí)間,點(diǎn)擊“insert ”;回到“Flowpa
39、th ”窗口,將樣品注入樣品環(huán),選擇“inject ”, 點(diǎn)擊“ Execute ”,開始進(jìn)行樣品的測(cè)試;當(dāng)圖譜中紅線出現(xiàn)時(shí)(表明樣品已進(jìn)入系統(tǒng)),將選擇“Flowpath ”窗口中的“l(fā)oad ”,讓樣品環(huán)復(fù)位。C.系統(tǒng)清洗:選擇“ Pump窗口,設(shè)定清洗流速,依次將泵頭放入水、10%勺乙醇中清洗。ii 自動(dòng)操作:A.方法編*5:在“ Method Editor ”中選擇“新建”圖標(biāo),選中“ Method Editor ",點(diǎn)擊 “OK ,進(jìn)入梯度編寫程序,按照梯度要求編寫成序。編寫好后,在“ File ”中選擇 “save as”,將編輯好的方法保存到設(shè)定的文件夾下(一般為C:
40、'defaultMethod)。B.方法運(yùn)彳T:在“ System Control 中選擇“ Run”,然后從編輯的方法文件中選擇出自己的 方法文件,點(diǎn)擊“ OK ,在"Result name ”對(duì)話框中,點(diǎn)擊“ Browse”,選中保存實(shí)驗(yàn) 結(jié)果數(shù)據(jù)的文件夾,給出文件名;將待測(cè)樣品注入樣品環(huán),點(diǎn)擊“Start ”,開始進(jìn)行樣品的測(cè)試。C.系統(tǒng)清洗:選擇“ Pump窗口,設(shè)定清洗流速,依次將泵頭放入水、10%勺乙醇中清洗。3數(shù)據(jù)處理:在“Evaluation ”窗口中打開保存的數(shù)據(jù)文件,手動(dòng)操作的數(shù)據(jù)結(jié)果應(yīng)在“C:.default中的Manual Runs( System 1
41、)”中按時(shí)間順序查找;自動(dòng)操作的數(shù)據(jù)結(jié)果應(yīng)在"C: 'default中自己設(shè)定的文件中查找。選擇“ File ”里“ Open to Compare”中的“Curves”進(jìn)行圖譜的對(duì)比。4數(shù)據(jù)輸出:在“Evaluation ”窗口中打開保存的數(shù)據(jù)文件,得到色譜圖,選擇“File ”里“Export”中的“Curves”,選中圖譜的波長(zhǎng),點(diǎn)擊“ Select ”確認(rèn)后,點(diǎn)擊 “Export" ;選擇圖譜輸出路徑以及文件名,點(diǎn)擊“ OK ,從"Excel”中打開該文件,即 可將色譜圖由ACSII碼轉(zhuǎn)化為原始數(shù)據(jù),該數(shù)據(jù)可用“ Excel”或“Origin ”作
42、圖軟件,做 出對(duì)應(yīng)的色譜圖。5.關(guān)機(jī):點(diǎn)擊 “ System Control 中的 “End'鍵,關(guān)閉 " UNICORN Message r,點(diǎn)擊 “System Control,選中“ Unlock”,點(diǎn)擊“ OK ,生物色譜儀主機(jī)系統(tǒng)退出(計(jì)算機(jī)與主機(jī)脫機(jī)),依次關(guān)閉生物色譜儀和計(jì)算機(jī)。四儀器和試劑1 .儀器:AKTA Purifier-900 型液相色譜儀;IDA-硅膠柱;微量注射器。2 .試劑:BSA RNase Cyt-C、Lys標(biāo)準(zhǔn)液(1 mg/mL ,以及標(biāo)準(zhǔn)蛋白混合液;其它試劑均為 分析純;水為二次蒸餾水。五實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1 .標(biāo)準(zhǔn)蛋白的定性分析:根據(jù)保留信用蛋白
43、單樣標(biāo)準(zhǔn)液定性混合液中的四組分;C=1 mg/mL,進(jìn)樣量 10山標(biāo)準(zhǔn)蛋白混合物BSACyt-CRNaseLyst R2 .標(biāo)準(zhǔn)蛋白的定量分析:歸一化法計(jì)算各托白組分的含量i .校正因子的求?。簩⒁阎M分量(g)的標(biāo)準(zhǔn)混合溶液用“計(jì)算校正因子”法計(jì)算出校正因子;C=1 mg/mL,進(jìn)樣量 10 L標(biāo)準(zhǔn)蛋白混合物BSACyt-CRNaseLysm (g)ii .待測(cè)樣品百分含量的計(jì)算(“校正歸一”化法計(jì)算):六.記錄及分析結(jié)果打印出實(shí)驗(yàn)結(jié)果:包括保留時(shí)間、組分名稱以及質(zhì)量百分含量等數(shù)據(jù)結(jié)果的色譜圖譜。七.課堂提問(wèn)1 .離子交換色譜分離蛋白的機(jī)理?2 .保留值定性分析的原理?3 .如何用面積歸一化
44、法進(jìn)行定量?實(shí)驗(yàn)八小鼠腎臟組織蛋白的雙向電泳分離一.實(shí)驗(yàn)?zāi)康? .掌握2-DE電泳儀(PROTEAN IEF Cell等點(diǎn)聚焦儀,PROTEAN! Xi垂直電泳槽)的操作2 .掌握2-DE分離蛋白質(zhì)組的原理。3 .掌握2-DE定性分析方法。4 .掌握2-DE定量分析方法。圖8-1 2-DE 電泳儀1. 2-DE分離原理:2-DE的第一向電泳等電聚焦是基于等電點(diǎn)不同而將蛋白粗步分離,第二向 SDS-PAGE基于蛋白質(zhì)分子量不同,而將一向分離后的蛋白進(jìn)一步分離。這樣就從兩方面 對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行分離,最終得到蛋白質(zhì)等電點(diǎn)和分子量的信息。如圖 8-2所示:圖8-2被動(dòng)式再水合低分子區(qū)小鼠腎臟組織蛋白的2-
45、D圖譜17cm pH 3-10 IPG 膠條,200X 200X 1.0mm SD照一月里(12%), 120ug 上樣量,銀染2. 2-DE定性原理:通過(guò)蛋白質(zhì)組凝膠圖譜的對(duì)比,根據(jù)同一蛋白點(diǎn)在凝膠上所處的位置相同 進(jìn)行定性。3. 2-DE定量原理:通過(guò)蛋白質(zhì)組凝膠圖譜的對(duì)比,根據(jù)蛋白點(diǎn)顏色的深淺、以及蛋白點(diǎn)的大小進(jìn)行初步定量。三、2-DE操作步驟(一)第一向等電聚焦1. 水化液的制備:i從冰箱中取-20 C冷凍保存的水化上樣緩沖液(I )(不含DTT;不含Bio-Lyte ) 一小管(1ml/ 管),置室溫溶解。ii 在小管中加入 0.01g DTT,澳酚蘭,3.5ul (0.5%v/v)
46、 IPG buffer (pH 3-10) 振蕩混勻, 13200rpm離心15min除雜質(zhì),取上清。iii從小管中取出400ml水化上樣緩沖液,加入100ml樣品,振蕩器上振蕩混合,13200rpm離心 15min除雜質(zhì),取上清。2. 點(diǎn)樣、上樣i從冰箱中取-20 C冷凍保存的IPG預(yù)制膠條(17cm pH 3-10),室溫中放置10分鐘。ii沿著聚焦盤或水化盤中槽的邊緣至左而右線性加入樣品。在槽兩端各1cm左右不要加樣,中間的樣品液一定要連貫。注意:不要產(chǎn)生氣泡。否則影響到膠條中蛋白質(zhì)的分布。iii當(dāng)所有的蛋白質(zhì)樣品都已經(jīng)加入到聚焦盤或水化盤中后,用銀子輕輕的去除預(yù)制IPG膠條上的保護(hù)層。
47、iv將IPG膠條膠面朝下置于聚焦盤或水化盤中樣品溶液上,使得膠條的正極(標(biāo)有+)對(duì)應(yīng)于聚焦盤的正極。確保膠條與電極緊密接觸。不要使樣品溶液弄到膠條背面的塑料支撐膜上。同樣還要注意不使膠條下面的溶液產(chǎn)生氣泡。如果已經(jīng)產(chǎn)生氣泡,用鑷子輕輕地提起膠條的一端,上下移動(dòng)膠條,直到氣泡被趕到膠條以外。v 在每根膠條上覆蓋2-3ml 礦物油,防止膠條水化過(guò)程中液體的蒸發(fā)。需緩慢的加入礦物油,沿著膠條,使礦物油一滴一滴慢慢加在塑料支撐膜上。3. IPG聚焦系統(tǒng)跑膠程序的設(shè)定(跑膠溫度為 20C)i 對(duì)好正、負(fù)極,蓋上蓋子,設(shè)置等電聚焦程序:S1 、 S2 、 S3 、 S4 、 S5 ;其中S1用于泡脹水化膠
48、條,S2和S3用于去小離子,S4和S5用于聚焦ii聚焦結(jié)束的膠條,立即進(jìn)行平衡、第二向 SDS-PAG電泳,否則將膠條置于樣品水化盤-20 冰箱保存。(二)平衡1 配制膠條平衡緩沖液I 。在桌上先放置干的厚濾紙,聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另一份厚濾紙用MilliQ 水浸濕,擠去多余水分,然后直接置于膠條上,輕輕吸干膠條上的礦物油及多余樣品。將膠條轉(zhuǎn)移至溶漲盤中,每個(gè)槽一根膠條,在有膠條的槽中加入5ml 膠條平衡緩沖液I 。將樣品水化盤放在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。2 配制膠條平衡緩沖液II 。第一次平衡結(jié)束后,徹底倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液 I 。并濾紙吸取多余的平
49、衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。再加入膠條平衡緩沖液II ,繼續(xù)在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。(三)第二向SDS-PAG電泳1. 配膠、灌膠i配制10%勺丙烯酰胺凝膠兩塊。配80ml凝膠溶液,每塊凝膠40ml,將溶液分別注入玻璃板 夾層中,上部留1cm的空間,用MilliQ 水、乙醇或水飽和正丁醇封面,保持膠面平整,聚 合 30 分鐘。ii 待凝膠凝固后,倒去分離膠表面的MilliQ 水、乙醇或水飽和正丁醇,用MilliQ 水沖洗2. 轉(zhuǎn)移i從-20 C冰箱中取出的膠條,先于室溫放置 10分鐘,使其溶解。用濾紙吸去 SDS-PAG限內(nèi) 烯酰胺凝膠上方玻璃板間多余的液體。將
50、處理好的第二向凝膠放在桌面上,長(zhǎng)玻璃板在下,短玻璃板朝上,凝膠的頂部對(duì)著自己。ii 將瓊脂糖封膠液進(jìn)行加熱溶解。11. 將 10倍電泳緩沖液,用量筒稀釋10倍,制成1 倍電泳緩沖液。趕去緩沖液表面的氣泡。iii 第二次平衡結(jié)束后,徹底倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液II 。并用濾紙吸取多余的平衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。將IPG膠條從樣品水化盤中移出,用鑷子夾住膠條的一端使膠面完全浸末在1 倍電泳緩沖液中。然后將膠條膠面朝上放在凝膠的長(zhǎng)玻璃板上。其余膠條同樣操作。將放有膠條的SDS-PAGEE膠轉(zhuǎn)移到灌膠架上,短玻璃板一面對(duì)著自己。在凝膠的上方加入低熔點(diǎn)瓊脂糖封
51、膠液。iv 用鑷子、壓舌板或是平頭的針頭,輕輕地將膠條向下推,使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面完全接觸。注意不要在膠條下方產(chǎn)生任何氣泡。在用鑷子、壓舌板或平頭針頭推膠條時(shí),要注意是推動(dòng)凝膠背面的支撐膜,不要碰到膠面。放置5 分鐘,使低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液徹底凝固。在低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液完全凝固后,將凝膠轉(zhuǎn)移至電泳槽中。3跑膠i在電泳槽加入電泳緩沖液后,接通電源,起始時(shí)用的低電流(5mA/gel/17cm)或低電壓,待樣品在完全走出IPG膠條,濃縮成一條線后,再加大電流 (或電壓)(20-30mA/gel/17cm), 待澳酚藍(lán)指示劑達(dá)到底部邊緣時(shí)即可停止電泳。ii電泳結(jié)束后,輕輕撬開兩層玻璃,取出凝膠,并切
52、角以作記號(hào)(戴手套,防止污染膠面)。(四)銀染固定 一敏化 一洗滌 一銀染 一洗滌WT?顯影? 找B? 洗滌? 注:整個(gè)雙向電泳實(shí)驗(yàn)中全部使用超純水,盡量減少離子的影響。四.儀器和試劑1 .儀器:PROTEAN IEF Cell等點(diǎn)聚焦儀,PROTEAN! Xi垂直電泳槽(Bio-Rad公司);玻 璃勻漿器(陜西化玻器械有限公司);TGL-16G-A高速冷凍離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀 器廠);電熱恒溫水浴鍋(北京化玻聯(lián)醫(yī)療器械有限公司);ULTFreezer (美國(guó)Thermo Forma公司)。2 .試劑:三羥甲基氨基甲烷(Tris ),兩性離子表面活性劑(CHAPS,苯甲基磺酰氟(PMSF),
53、 二硫蘇糖(DTT ,丙烯酰胺(Acrylamide ) , N,N -甲叉雙丙烯酰胺(N,N -Methylene bisacrylamide ),過(guò)硫酸?。ˋPS,十二烷基磺酸鈉(SDS,四甲基乙二胺(TEMER 澳酚藍(lán)(Bromophenol Bule) , 2-琉基乙醇(2-ME),低分子量標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)均購(gòu)自華 美生物工程公司;載體兩性電解質(zhì)(CA pH=3.5-9.5 ),購(gòu)自北京經(jīng)科宏達(dá)生物技術(shù) 有限公司;礦物油(Silicon Oil ) , IPG干膠條均購(gòu)自Bio-Rad公司;其他試劑均 為國(guó)產(chǎn)分析純。五.實(shí)驗(yàn)內(nèi)容1 .樣品的溶解預(yù)冷生理鹽水沖洗鼠腎臟組織 3次,迅速將清洗的組
54、織分割成適宜的小塊,濾紙吸取多余 的液體,稱量50mg濕組織,放入玻璃組織勻漿器中加 1mL裂解液(裂解液I : 9.5 mol/L Urea+ 40mmol/L Tris+ 4%w/v CHAPS 裂解液 口 : 9.8 mol/L Urea+ 40mmol/L Tris+4%w/v CHAPS+1mmol/L PMSF+1mmol/L EDTA+65mmol/L DTT+ 0.5%v/v IPG buffer ,冰浴中勻漿,冰 上靜置10-15min, 17c下,15000rpm離心10min;取上清,用LOWORY定量5 ,蛋白濃度約為 20 mg/mL ,分裝于小離心管中,-78 C下
55、凍存?zhèn)溆?;取一定量上述樣品液,加再水合液?mol/L Urea+2%w/v CHAPS +微量澳芬蘭)稀釋至終體積 300仙L,混勻后室溫下靜置1hr, 離心后即為含樣品的再水合液。2 .凝膠電泳移取含有適量蛋白濃度的泡脹液 300uL,采用被動(dòng)式和主動(dòng)式(加 50V低壓)的膠內(nèi)樣品 再水合法泡脹17cm的IPG膠條16 hr。按照IEF程序20c下恒溫等電聚焦:0150V40min(線 性);150500V 40min (線性);5001000V1hr (線性);5001000V1hr (線性);1000 2000V1hr (線性);20003000V1hr (線性);30004000V 1hr (線性);40006000V 1hr (線性);60008000V 1hr (線性)8000V 4hr (快速)。聚焦后IPG膠條在6mL平衡緩沖液中( 1.5 mol/L Tris-HCl(pH=8.8)+ 6 molL Urea + 2%(w/v) SDS+30%(
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