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文檔簡介
1、各項指標(biāo)的測定方法生物學(xué)指標(biāo)的測定6 高,薹粗,節(jié)數(shù),單株產(chǎn)量和葉面積。株高測定菜薹長度為第一片真葉基部至生長點的距離,取平均值。薹粗測定用游標(biāo)卡尺測量第 5 與第 6 片葉之間的粗度,取平均值。節(jié)數(shù)和節(jié)間長度測定節(jié)數(shù)為第一片真葉基部起至生長點的節(jié)數(shù),節(jié)間長度=株高/節(jié)數(shù)單株產(chǎn)量測定取第 4 節(jié)位以上植株進行測定,求單株鮮重。蠟粉含量的測定S 方法測定(r S,19871.0,10ml 30 。重復(fù)三次。光和系統(tǒng)指標(biāo)的測定葉面積的測定取第5片及以上共6Li-COR 公司生產(chǎn)Li-3000A 型葉面積儀測量葉面積。用直尺測量芥藍葉片的長度(L,葉柄基部到葉尖的距離)和寬度(W,與主脈垂直的最大寬
2、度),用Li-COR公司的Li- 3000A葉片長乘以寬面積之間的回歸方程,找出最佳回歸系數(shù)。比葉重測定100.8mm打孔器,在葉片最寬處離主脈兩側(cè)的1010510min80恒重。比葉重=總?cè)~干重/總?cè)~面積(g/m2)葉綠素含量測定95乙醇浸泡法(李合生,20000.1g 用 95%的乙醇 15ml,在黑暗條件下浸泡 24h,至葉片表皮變白,取上清夜在波665nm、649nm、470nm 下測定吸光度。計算公式:葉綠素a(mg/L)=13.95A6656.88A649(1)葉綠素b(mg/L)=24.96A6497.32A665類胡蘿卜素(mg/L)=(1000A470-2.05Ca114.8
3、Cb)/245光和特性測定LI-CORLI-6400型便攜式自動光合作用測定儀測定光合CO29:0011:00。根系指標(biāo)的測定根體積測定用排水法測根系體積。根系直徑測定采用 WinRHIZO 根系分析系統(tǒng)對芥藍根系進行掃描。根系活力測定參照李合生(2000)的方法,略有改進。于菜薹采收期,稱取根尖樣品 10mL0.4%TTC371-3h1mol/L(與此同時做一空白實驗,先加硫酸,再加根樣品,37下暗保溫后加硫酸,其溶液濃度、操作步驟同上4 mL 乙酸3mL 乙酸乙酯10 mL 。用分光光度計在波長485nm TTC 還原量。單位根鮮重的四氮唑還原強度=四氮唑還原量/(根重時間)mg/(gh)
4、氮物質(zhì)含量及代謝酶活力的測定硝酸鹽含量的測定參照李合生(2000)0.5g6mL去離30 min后取出,用自來水冷卻,將提取液過濾100mL0.1mL,然后加入5水楊酸硫酸溶液0.4m30min9.5mL 8氫氧化鈉溶液,待冷卻至室溫后,在波長 410nm 處測定其吸光度,再根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線查得硝酸鹽的含量。結(jié)果按下式計算:單位鮮重樣品中硝態(tài)氮含量(mg/g)=(CV1)/(WV2) C:回歸方程中硝態(tài)氮濃度,ug/ mL; W:樣品鮮重,g;V1:樣品定容體積,mL;V2:測定用提取液體積,mL。硝酸還原酶活性的測定(20000.5g30min,4mL4C4000rpm 15min0.4mL10
5、mL1.20.1mol/LKNO3 0.4mL2mg/mLNADH25C1mL 1mL 15min 后于4000rpm5min540nm波長下比色測定吸光度,根據(jù)回歸方程計算出反應(yīng)液中所產(chǎn)生的亞硝態(tài)氮總量。單位樣品中硝酸還原酶活性=(xV1)/X:回歸后亞硝態(tài)氮的含量,ug; V1;提取酶時加入的緩沖液體積,mL; V2;酶反應(yīng)時加入的粗酶液體積,mL; W:樣品鮮重,g;t:反應(yīng)時間,h。游離氨基酸含量的測定采用(李合生,2000),稱取新鮮樣品,洗凈、剪碎、混勻后,迅速稱取0.5g5mL10100mL,混20 mL 干燥試1.0mL3.0mL0.1mL,搖勻, 置沸水中加熱 15min,取
6、出后用冷水迅速冷卻并不時搖動,使加熱時形成的紅的6020mL1cm 570nm 波長下測吸光度。氨基態(tài)氮(ug/g)=CV1/(WV2)C:V1:稀釋總體積,mL; V2:比色用體積,mL; W:樣品中,g??扇苄缘鞍踪|(zhì)含量的測定采用考馬斯亮藍染色法(5mL蒸餾水研磨成勻漿后,10000rpm10min0.2mL5mL考馬斯亮藍G-2502min595nm處測定吸光度,并通過標(biāo)準(zhǔn)曲線查得蛋白質(zhì)的含量。樣品中蛋白質(zhì)的含量(mg/g)= CV1/(WV21000) C:查標(biāo)曲得到的蛋白含量,ug; V1:總提取液體積,mL; V2:測定時加樣量,mL;W:樣品鮮重,g??寡趸到y(tǒng)的測定膜透性的測定
7、參照李錦樹等(1986)的方法,用直徑 10mm 的打孔器從芥藍葉片組織上打10 50mL 20mL DDS-307 30min 后,冷卻至室溫,再測定其電導(dǎo)率,以相對電導(dǎo)率表示細胞膜透性。相對電導(dǎo)率=(初電導(dǎo)率/終電導(dǎo)率)100%C參照比色法(李合生,200022草酸研磨至勻漿,100mL 11mL30硫酸鋅,搖勻, 1mL1514mL 于具塞大試管中,依次加入染料 2mL,二甲苯 (SK96-A)萃取約 20 500nm 處測定其吸光度,并通C 的含量。Vc 含量(mg/g)=XV1/(WV2)X:4mLVc的量,mg; V1:提取液總體積,mL; V2:測定用體積,mL; W:樣品鮮重。
8、脯氨酸含量的測定(20000.5g,5mL3% 的磺基水楊酸溶液,在沸水浴中10min(提取過程要經(jīng)常搖動,冷卻后過濾至干凈的試管中,濾液即為脯2 mL 2mL 2 mL 30min4 mL 甲苯, 用快速混勻器(SK96-A)20 10mL 離心管中,在3000 r/min 5min520nm 處吸光值。脯氨酸含量(ug/g)=5X/(2W) X:標(biāo)曲查得的脯氨酸含量,ug; W:樣品鮮重,g。丙二醛(MDA)含量的測定參照李合生等(2000)0.5g5%5 mL 研3000r/min 10min2 0.67%硫代巴比2 mL 10030 1500rpm 10 450nm530nm 600n
9、m 光度。計算公式:MDA 含量(umolL1)=6.45(A532-A600)-0.56A450過氧化物酶(POD)活性的測定(1988)1g0.2g(PVP) 0.15 mol1磷酸緩沖液(pH 7.0415,000 rpm20min3 mL0.2%愈創(chuàng)木酚0.9 mL 0.1 OD470值的變化,以每分鐘OD470 變化 0.01 表示一個酶活性單位。POD總活性g1mi1/(2WT0.001)A V1:提取酶液總體積,mL; V2:測定用酶液體積,mL; W:樣品鮮重。 T:反應(yīng)時間,min。過氧化氫酶(CAT)活性測定Chance 等(1995)POD 方法。3 毫1mL 0.2%過
10、氧化氫、1.9mL3min240nm 0.01為一個酶活力單位。T總活性gmi)=1/(2WT0.001)A V1:提取酶液總體積,mL; V2:測定用酶液體積,mL; W:樣品鮮重; T:反應(yīng)時間,min。抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性的測定Nakano 1g 芥藍葉片組織, 1.6mL(PBS-(pH7.1mmol1A, 3mmol1巰基乙醇,0.5mmol1PMS,2%PVP,1mMEDT。用液氮研4 200.10ml 酶液(可視情況調(diào)整1.70ml1M2S(0.05mol/,pH7.0.10ml 5 mMAs0.10ml20mMH22,立即在20紫外AsA 并求酶活性(室溫下測定,緩
11、沖液調(diào)零。APX(ug1min=OD/dVtWt)OD:反應(yīng)時間內(nèi)吸光度的變化;t:反應(yīng)時間,min; mL; A:消光系數(shù),2.8mM-1cm-1;d:比色杯厚度,1cm; Vt:測定液體積,mL; W:樣品鮮重,g。菜薹內(nèi)源激素(GA3,IAA,ABA,ZT)含量的測定采用吳頌如(1998)、錢利生(1996)、陳昆松等(2003)的方法,并略加 1。 采用美國安捷倫科技有限公司Agilent1100 C18 柱(250mm4.6mm,5u,Hypersil)(0.02mol/L,Ph3.5)=15:15:701mL/min,35,(GA3、21025410uL定。菜薹混合樣 1g6 毫升 80%預(yù)冷甲醇冰浴研磨,4浸提 20 小時離心(12000rpm,4,10分鐘)殘渣合并上清液3毫升80%甲醇浸提并離心兩次加吸附色素(12000rpm,4,10 分鐘) C18 小柱甲醇液真空干燥儀蒸干pH3.0NA2HPO4-檸檬酸緩沖液 1ml 溶解,乙酸乙酯等體積萃取 3 次3ml酯相(上層)1ml水相(下層
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