標準解讀
《GB 4789.2-2022 食品安全國家標準 食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定》相較于《GB 4789.2-2016 食品安全國家標準 食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定》,在內容上進行了部分調整和補充,主要變化包括:
- 在術語定義方面,《GB 4789.2-2022》對“菌落”、“菌落形成單位(CFU)”等關鍵概念給出了更加明確的定義,有助于統(tǒng)一理解和應用。
- 對于樣品處理方法,《GB 4789.2-2022》增加了不同類型食品的具體預處理指導,比如液體食品、固體食品以及半固態(tài)食品如何取樣與稀釋,使得操作更具針對性。
- 新標準細化了培養(yǎng)基的選擇依據(jù),并且推薦使用經(jīng)過驗證的商品化預制平板作為替代選項之一,這不僅提高了實驗效率,也保證了結果的一致性。
- 在計數(shù)規(guī)則上,《GB 4789.2-2022》明確了當平板上的菌落數(shù)目過多或過少時應采取的操作步驟,確保數(shù)據(jù)的有效性和準確性。
- 報告方式也有更新,《GB 4789.2-2022》規(guī)定了更為詳細的報告格式要求,包括但不限于樣品信息、檢測條件、結果表達形式等內容,增強了報告的專業(yè)性和規(guī)范性。
這些調整旨在提高檢測過程中的標準化水平,增強不同實驗室之間結果的可比性。
如需獲取更多詳盡信息,請直接參考下方經(jīng)官方授權發(fā)布的權威標準文檔。
....
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- 現(xiàn)行
- 正在執(zhí)行有效
- 2022-06-30 頒布
- 2022-12-30 實施
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文檔簡介
中 華 人 民 共 和 國 國 家 標 準
犌犅4789.2—202
食品安全國家標準
食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定
2020630發(fā)布 2021230實施
發(fā)布
中華人民共和國國家衛(wèi)生健康委員會國 家 市 場 監(jiān) 督 管 理 總 局
犌犅4789.2—202
前 言
本標準代替GB4789.2—2016《食品安全國家標準 食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定》。本標準與GB4789.2—2016相比,主要變化如下:
——增加了附錄B;
——修改了設備和材料;
——修改了培養(yǎng)基和試劑;
——修改了檢驗程序;
——修改了操作步驟;
——修改了附錄A。
Ⅰ
1范圍
食品安全國家標準
食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定
本標準規(guī)定了食品中菌落總數(shù)(Aerobicplatecount)的測定方法。本標準適用于食品中菌落總數(shù)的測定。
2術語和定義
2.1
菌落總數(shù)犪犲狉狅犫犻犮狆犾犪狋犲犮狅狌狀狋
食品檢樣經(jīng)過處理,在一定條件下(如培養(yǎng)基、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時間等)培養(yǎng)后,所得每g(mL)檢樣中形成的微生物菌落總數(shù)。
3設備和材料
除微生物實驗室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設備外,其他設備和材料如下:
a)恒溫培養(yǎng)箱:36℃±1℃,30℃±1℃。
b)冰箱:2℃~5℃。
c)恒溫裝置:48℃±2℃。d)天平:感量為0.1g。e)均質器。
f)振蕩器。
g)無菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸頭。
h)無菌錐形瓶:容量250mL、50mL。i)無菌培養(yǎng)皿:直徑90mm。
j)pH計或pH比色管或精密pH試紙。
k)放大鏡或/和菌落計數(shù)器。
4培養(yǎng)基和試劑
4.1平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基:見A.1。
4.2菌落總數(shù)測試片:應符合GB4789.28中平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基質量控制要求,且主要營養(yǎng)成分與平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基配方一致。
4.3無菌磷酸鹽緩沖液:見A.2。
4.4無菌生理鹽水:見A.3。
5檢驗程序
菌落總數(shù)的檢驗程序見圖1。
1
圖1菌落總數(shù)的檢驗程序
6操作步驟
6.1樣品的稀釋
6.1.1固體和半固體樣品:稱取25g樣品置于盛有25mL無菌磷酸鹽緩沖液或無菌生理鹽水的無菌均質杯內,800r/min~1000r/min均質1min~2min,或放入盛有25mL稀釋液的無菌均質袋中,用拍擊式均質器拍打1min~2min,制成1∶10的樣品勻液。
6.1.2液體樣品:以無菌吸管吸?。玻担恚虡悠分糜谑⒂校玻担恚虩o菌磷酸鹽緩沖液或無菌生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內可預置適當數(shù)量的無菌玻璃珠)中,充分混勻,或放入盛有25mL稀釋液的無菌均質袋中,用拍擊式均質器拍打1min~2min,制成1∶10的樣品勻液。當結果要求為每g樣品中菌落總數(shù)時,按6.1.1操作。
2
6.1.3用1mL無菌吸管或微量移液器吸取1∶10樣品勻液1mL,沿管壁緩慢注于盛有9mL稀釋液的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面),在振蕩器上振蕩混勻,制成1∶10的樣品勻液。
6.1.4按6.1.3操作,制備10倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次,換用1次1mL無菌吸管或吸頭。
6.1.5根據(jù)對樣品污染狀況的估計,選擇1個~3個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),吸?。保恚虡悠穭蛞河跓o菌培養(yǎng)皿內,每個稀釋度做兩個培養(yǎng)皿。同時,分別吸?。保恚炭瞻紫♂屢杭尤雰蓚€無菌培養(yǎng)皿內作空白對照。
6.1.6及時將15mL~20mL冷卻至46℃~50℃的平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(可放置于48℃±2℃恒溫裝置中保溫)傾注培養(yǎng)皿,并轉動培養(yǎng)皿使其混合均勻。
6.2培養(yǎng)
6.2.1水平放置待瓊脂凝固后,將平板翻轉,36℃±1℃培養(yǎng)48h±2h。水產品30℃±1℃培養(yǎng)72h±3h。如果樣品中可能含有在瓊脂培養(yǎng)基表面蔓延生長的菌落,可在凝固后的瓊脂培養(yǎng)基表面覆蓋一薄層平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(約4mL),凝固后翻轉平板,進行培養(yǎng)。
6.2.2如使用菌落總數(shù)測試片,應按照測試片所提供的相關技術規(guī)程操作。
6.3菌落計數(shù)
6.3.1可用肉眼觀察,必要時用放大鏡或菌落計數(shù)器,記錄稀釋倍數(shù)和相應的菌落數(shù)量。菌落計數(shù)以菌落形成單位(colonyformingunit,CFU)表示。
6.3.2選取菌落數(shù)在30CFU~30CFU之間、無蔓延菌落生長的平板計數(shù)菌落總數(shù)。低于30CFU的平板記錄具體菌落數(shù),大于30CFU的可記錄為多不可計。
6.3.3其中一個平板有較大片狀菌落生長時,則不宜采用,而應以無較大片狀菌落生長的平板作為該
稀釋度的菌落數(shù);若片狀菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均勻,可計算半個平板后乘以2,代表一個平板菌落數(shù)。
6.3.4當平板上出現(xiàn)菌落間無明顯界線的鏈狀生長時,則將每條單鏈作為一個菌落計數(shù)。
7結果與報告
7.1菌落總數(shù)的計算方法
7.1.1若只有一個稀釋度平板上的菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內,計算兩個平板菌落數(shù)的平均值,再將平均值乘以相應稀釋倍數(shù),作為每g(mL)樣品中菌落總數(shù)結果,示例見B.1。
7.1.2若有兩個連續(xù)稀釋度的平板菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內時,按式(1)計算,示例見B.2。
犖=(狀
∑犆 )
…………(1)
式中:
犖 ——樣品中菌落數(shù);
1+0.1狀2犱
∑犆——平板(含適宜范圍菌落數(shù)的平板)菌落數(shù)之和;
狀1——第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))平板個數(shù);狀2——第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))平板個數(shù);犱——稀釋因子(第一稀釋度)。
7.1.3若所有稀釋度的平板上菌落數(shù)均大于30CFU,則對稀釋度最高的平板進行計數(shù),其他平板可記錄為多不可計,結果按平均菌落數(shù)乘以最高稀釋倍數(shù)計算,示例見B.3。
3
7.1.4若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均小于30CFU,則應按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算,示例見B.4。
7.1.5若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無菌落生長,則以小于1乘以最低稀釋倍數(shù)計算,示例見B.5。
7.1.6若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均不在30CFU~30CFU之間,其中一部分小于30CFU或大于
30CFU時,則以最接近30CFU或30CFU的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算,示例見B.6。
7.2菌落總數(shù)的報告
7.2.1菌落總數(shù)小于10CFU時,按“四舍五入”原則修約,以整數(shù)報告。
7.2.2菌落總數(shù)大于或等于10CFU時,第三位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數(shù)字,后面用0代替位數(shù);也可用10的指數(shù)形式來表示,按“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數(shù)字。7.2.3若空白對照上有菌落生長,則此次檢驗結果無效。
7.2.4稱重取樣以CFU/g為單位報告,體積取樣以CFU/mL為單位報告。
4
附 錄犃
培養(yǎng)基和試劑
犃.1平板計數(shù)瓊脂(狆犾犪狋犲犮狅狌狀狋犪犵犲狉,犘犆犃)培養(yǎng)基
犃.1.1成分
胰蛋白胨(主要營養(yǎng)成分) 5.0g
酵母浸膏(主要營養(yǎng)成分) 2.5g
葡萄糖(主要營養(yǎng)成分) 1.0g
瓊脂 15.0g
蒸餾水 100mL
犃.1.2制法
將上述成分加于蒸餾水中,煮沸溶解,調節(jié)pH至7.0±0.2。分裝于適宜容器,121℃高壓滅菌15min。
犃.2無菌磷酸鹽緩沖液
犃.2.1成分
磷酸二氫鉀(KH2PO4) 34.0g
蒸餾水 50mL
犃.2.2制法
貯存液:稱?。常矗埃绲牧姿岫溻浫苡冢担埃恚陶麴s水中,用大約175mL的1mol/L氫氧化鈉溶液調節(jié)pH至7.2,用蒸餾水稀釋至100mL后貯存于冰箱。
稀釋液:取貯存液1.25mL,用蒸餾水稀釋至100mL,分裝于適宜容器中,121℃高壓滅菌
15min。
犃.3無菌生理鹽水
犃.3.1成分
氯化鈉 8.5g
蒸餾水 100mL
犃.3.2制法
稱?。福担缏然c溶于100mL蒸餾水中,121℃高壓滅菌15min。
5
附 錄犅
示 例
犅.1示例1
稀釋度
1∶10
1∶10
1∶100
計算結果
菌落數(shù)/CFU
多不可計,多不可計
124,138
1,14
1310
上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為1300或1.3×104。
犅.2示例2
稀釋度
1∶10(第一稀釋度)
1∶100(第二稀釋度)
計算結果
菌落數(shù)/CFU
232,24
3,35
24727
上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為2500或2.5×104。
犅.3示例3
稀釋度
1∶10
1∶10
1∶100
計算結果
菌落數(shù)/CFU
多不可計,多不可計
多不可計,多不可計
42,420
43100
上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為43000或4.3×105。
犅.4示例4
稀釋度
1∶10
1∶10
1∶100
計算結果
菌落數(shù)/CFU
14,15
1,0
0,0
145
上述數(shù)據(jù)按7.
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