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核酸的提取技術(shù)主要技術(shù)DNA分子的分離和鑒定切割技術(shù)載體DNA分離、鑒定宿主細(xì)胞:原核細(xì)胞、酵母、真核細(xì)胞DNA導(dǎo)入技術(shù):轉(zhuǎn)化、轉(zhuǎn)染、轉(zhuǎn)導(dǎo)重組子鑒定:酶切、PCR技術(shù)表達(dá)產(chǎn)物的鑒定及活性測(cè)定基因克隆示意圖核酸的提取一、實(shí)驗(yàn)原理1、核酸的分類
DNA
主要存在于細(xì)胞核的染色體中。核外也有少量DNA,如線粒體DNA(mtDNA),葉綠體DNA(cpDNA),質(zhì)粒DNA。
RNA
存在于細(xì)胞質(zhì)中,如mRNA,rRNA,tRNA等。除上述DNA,RNA外,還有非細(xì)胞形式存在的病毒和噬菌體,其或只含DNA,或只含有RNA。分離純化核酸總的原則:
①應(yīng)保證核酸一級(jí)結(jié)構(gòu)的完整性;②排除其它分子的污染。核酸純化應(yīng)達(dá)到的要求:
①核酸樣品中不應(yīng)存在對(duì)酶有抑制作用的有機(jī)溶劑和過高濃度的金屬離子;②其它生物大分子的污染應(yīng)降低到最低程度;③排除其它核酸分子的污染。2、核酸制備的一般原則一、實(shí)驗(yàn)原理核酸制備時(shí)應(yīng)注意的事項(xiàng):①盡量簡(jiǎn)化操作步驟,縮短提取過程。②減少化學(xué)因素對(duì)核酸的降解。③減少物理因素對(duì)核酸的降解:機(jī)械剪切力和高溫④防止核酸的生物降解。
3、核酸制備的一般原則一、實(shí)驗(yàn)原理核酸制備的步驟:破碎細(xì)胞提取純化I.材料準(zhǔn)備II.破碎細(xì)胞或包膜-內(nèi)容物釋放III.核酸分離、純化IV.沉淀或吸附核酸,并去除雜質(zhì)
V.核酸溶解在適量緩沖液或水中核酸酶的抑制和抑制劑
DNase抑制
①加入少量金屬離子螯合劑,如0.01mol/LEDTA或檸檬酸鈉,DNase基本可以全部失活。②去垢劑、蛋白變性劑及DNase抑制劑也可使DNase失活。核酸制備中常用的去垢劑核酸本身帶負(fù)電荷,結(jié)合帶正電荷的蛋白質(zhì)。用于核酸提取的去垢劑,一般都是陰離子去垢劑,去垢劑的作用:
1.溶解膜蛋白及脂肪,使細(xì)胞膜破裂;
2.溶解核糖體上面的蛋白質(zhì),使其解聚,將核酸釋放出來;
3.對(duì)RNase、DNase有一定的抑制作用。如:SDS、脫氧膽酸鈉、4-氨基水楊酸鈉、萘-1.5-二磺酸鈉、三異丙基萘磺酸鈉核酸制備中常用的酶
DNase
RNase
蛋白酶K
溶菌酶
核酸提取的一般過程1)破碎細(xì)胞(防止核酸酶的作用)
微生物:溶菌酶、SDS裂解。
高等植物:搗碎器破碎、液氮研磨。酶法:蛋白酶,如胰蛋白酶,冰凍法:反復(fù)凍融或液氮凍后組織搗碎。
動(dòng)物:液氮處理后用勻漿器破碎。
細(xì)胞器DNA:首先純化細(xì)胞器。
以上處理時(shí)均要同時(shí)加入核酸酶抑制劑核酸提取的一般過程2)破碎抽提核酸除去雜質(zhì)
1.首先使脫氧核糖核蛋白、核糖體、病毒的核蛋白與其它成分分離
2.使核酸與蛋白質(zhì)分離
3.除去脂類
4.多糖的除去核酸提取的一般過程
3)核酸的純化根據(jù)所需核酸的性質(zhì)和特點(diǎn)除去其它核酸污染,并除去提取過程中的系列試劑(鹽、有機(jī)溶劑等)雜質(zhì),最后得到均一的核酸樣品。
4)核酸樣品的保存核酸保存的主要條件是溫度和介質(zhì)
溫度:4℃(5℃)最佳和最簡(jiǎn)單-70℃是長(zhǎng)期保存的良好溫度,為一次性保存-20℃保存
保存介質(zhì):TE緩沖溶液(最常用)10mmol/LTris-ClpH8.01mmol/LEDTApH8.01、1.5ml菌液(每組兩管)4℃12000rpm離心30sec,棄去上清,倒置試管于吸水紙上吸干。2、每管加入400μl裂解液,用移液槍槍頭反復(fù)抽吸輔助裂解,37℃水浴30min。3、每管加入132μl的5MNaCl溶液,顛倒試管,充分混勻后,13000rpm離心15min。用粗口的槍頭(用剪刀剪去1ml槍頭的尖端)小心取出上清液轉(zhuǎn)倒兩支新的eppendorf管中。4、加入等體積的飽和苯酚,充分混勻后,12000rpm離心3min,離心后的水層如混濁則說明仍含有蛋白質(zhì),則需將上清液轉(zhuǎn)入新的試管,重復(fù)上述步驟直到水層透明,水層和酚層之間不再白色沉淀物為止(約2次)。三、操作步驟5、將上層清液轉(zhuǎn)入新的eppendorf管,加等體積的氯仿,混勻后13000rpm離心3min,除去苯酚。6、小心吸出上清液轉(zhuǎn)入新的eppendorf管,用預(yù)冷的兩倍體積的無水乙醇沉淀,放置-20℃冰箱30min,然后13000rpm離心15min,可見白色絲狀沉淀物。7、小心吸出液體,棄上清液,用預(yù)冷的400μl70%乙醇洗滌2次,室溫干燥后,用50μlTE(含20μg/ml的Rnase)溶解DNA,-20℃冰箱放置備用。
四、注意事項(xiàng)——細(xì)胞裂解材料應(yīng)適量,過多會(huì)影響裂解,導(dǎo)致DNA量少,純度低針對(duì)不同材料,選擇適當(dāng)?shù)牧呀忸A(yù)處理方式:植物材料--液氮研磨動(dòng)物組織--勻漿或液氮研磨組培細(xì)胞--蛋白酶K細(xì)菌--溶菌酶破壁酵母--破壁酶或玻璃珠高溫溫浴時(shí),定時(shí)輕柔振蕩四、注意事項(xiàng)——核酸分離、純化采用吸附材料吸附的方式分離DNA時(shí),應(yīng)提供相應(yīng)的緩沖體系采用有機(jī)(酚/氯仿)抽提時(shí)應(yīng)充分混勻,但動(dòng)作要輕柔離心分離兩相時(shí),應(yīng)保證一定的轉(zhuǎn)速和時(shí)間針對(duì)不同材料的特點(diǎn),在提取過程中輔以相應(yīng)的去雜質(zhì)的方法DNA中含有蛋白、多糖、多酚類雜質(zhì)DNA在溶解前,有酒精殘留,酒精抑制后續(xù)酶解反應(yīng)DNA中殘留有金屬離子重新純化DNA,去除蛋白、多糖、多酚等雜質(zhì)重新沉淀DNA,讓酒精充分揮發(fā)增加70%乙醇洗滌的次數(shù)(2-3次)五、DNA提取常見問題問題一:DNA樣品不純,抑制后續(xù)酶解和PCR反應(yīng)。
原因?qū)Σ卟牧喜恍迈r或反復(fù)凍融未很好抑制內(nèi)源核酸酶的活性提取過程操作過于劇烈,DNA被機(jī)械打斷外源核酸酶污染反復(fù)凍融盡量取新鮮材料,低溫保存材料避免反復(fù)凍融液氮研磨或勻漿組織后,應(yīng)在解凍前加入裂解緩沖液在提取內(nèi)源核酸酶含量豐富的材料的DNA時(shí),可增加裂解液中螯合劑的含量細(xì)胞裂解后的后續(xù)操作應(yīng)盡量輕柔所有試劑用無菌水配制,耗材經(jīng)高溫滅菌將DNA分裝保存于緩沖液中,避免反復(fù)凍融問題二:DNA降解對(duì)策
原因五、DNA提取常見問題實(shí)驗(yàn)材料不佳或量少破壁或裂解不充分沉淀不完全洗滌時(shí)D
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