標(biāo)準(zhǔn)解讀

《GB 5413.16-2010 食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定》相比于《GB/T 5413.16-1997 嬰幼兒配方食品和乳粉 葉酸(葉酸鹽活性)的測定》,主要在以下幾個方面進(jìn)行了調(diào)整和更新:

  1. 標(biāo)準(zhǔn)性質(zhì)變化:最顯著的變化是標(biāo)準(zhǔn)從推薦性標(biāo)準(zhǔn)(GB/T)升級為強(qiáng)制性標(biāo)準(zhǔn)(GB),意味著該標(biāo)準(zhǔn)中的要求對相關(guān)企業(yè)而言從自愿執(zhí)行變?yōu)楸仨氉袷?,體現(xiàn)了國家對嬰幼兒食品安全及營養(yǎng)強(qiáng)化劑檢測的重視程度提高。

  2. 適用范圍擴(kuò)展:新標(biāo)準(zhǔn)不僅涵蓋了嬰幼兒配方食品和乳粉,還擴(kuò)展到了更廣泛的嬰幼兒食品和乳品,這表明監(jiān)管范圍擴(kuò)大,旨在全面保障嬰幼兒攝入食品中的葉酸含量符合安全與營養(yǎng)需求。

  3. 檢測方法更新:GB 5413.16-2010標(biāo)準(zhǔn)引入或修訂了檢測方法,可能包括采用了更精確、靈敏的分析技術(shù),如高效液相色譜法(HPLC)等現(xiàn)代分析手段,以提高檢測的準(zhǔn)確性和效率。這些改進(jìn)有助于確保測試結(jié)果的可靠性,更好地控制產(chǎn)品質(zhì)量。

  4. 限量要求明確:新標(biāo)準(zhǔn)可能對嬰幼兒食品和乳品中的葉酸含量設(shè)定了更具體或嚴(yán)格的限量要求,以防止過量或不足,保障嬰幼兒健康成長。這反映了基于最新科學(xué)研究對葉酸營養(yǎng)需求的重新評估。

  5. 規(guī)范性引用文件更新:標(biāo)準(zhǔn)中引用的相關(guān)國際標(biāo)準(zhǔn)、國家標(biāo)準(zhǔn)或行業(yè)規(guī)范得到了更新,確保了檢測方法與國際先進(jìn)水平保持一致,提高了標(biāo)準(zhǔn)的科學(xué)性和適用性。

  6. 術(shù)語和定義的完善:新標(biāo)準(zhǔn)可能對葉酸、葉酸鹽活性等相關(guān)術(shù)語給出了更清晰、準(zhǔn)確的定義,便于理解和執(zhí)行,同時統(tǒng)一了行業(yè)內(nèi)的語言和理解。

  7. 樣品處理與預(yù)處理方法優(yōu)化:為了提高檢測效率和減少誤差,新標(biāo)準(zhǔn)可能對樣品的前處理步驟進(jìn)行了優(yōu)化,比如簡化提取過程、減少操作時間或采用更有效的凈化手段。


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  • 2010-03-26 頒布
  • 2010-06-01 實(shí)施
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【國家標(biāo)準(zhǔn)】GB 5413.16-2010 嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活(發(fā)布稿.僅供參考-標(biāo)準(zhǔn)分享網(wǎng))_第1頁
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文檔簡介

中華人民共和國國家標(biāo)準(zhǔn)010中華人民共和國衛(wèi)生部發(fā)布 2010布 2010施食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定 of in 010 I 前 言 本標(biāo)準(zhǔn)代替 幼兒配方食品和乳粉 葉酸(葉酸鹽活性)測定 。 本標(biāo)準(zhǔn)與 要變化如下: 對磷酸鹽緩沖液作了調(diào)整; 增加了米粉的處理方法; 增加了光密度法測定步驟。 本標(biāo)準(zhǔn)所代替標(biāo)準(zhǔn)的歷次版本發(fā)布情況為: 413 010 1 食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定 1 范圍 本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定方法。 本標(biāo)準(zhǔn)適用于嬰幼兒食品和乳品中葉酸(葉酸鹽活性)的測定。 2 規(guī)范性引用文件 本標(biāo)準(zhǔn)中引用的文件對于本標(biāo)準(zhǔn)的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本適用于本標(biāo)準(zhǔn)。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本標(biāo)準(zhǔn)。 3 原理 利用干酪乳桿菌( 469 對葉酸的特異性,在含有葉酸的樣品中生長產(chǎn)生的酸度和形成的光密度來測定葉酸的含量。 4 試劑和材料 除非另有規(guī)定,本方法所用試劑均為分析純,水為 6682 規(guī)定的二級水。 胰腺: 稱取 100 燥的雞胰腺, 加 20 餾水, 攪拌 15 離心 10 3000 轉(zhuǎn) /分鐘) ,取上清液,臨用前配制。 生理鹽水:稱取 9.0 g 氯化鈉溶解于 1000 中,分裝于具塞試管中,每管 10 121滅菌 15 周準(zhǔn)備一次。 酸鹽緩沖液 酸鹽緩沖液( ):稱取 g 磷酸二氫鉀, g 磷酸氫二鉀,用 1000 溶解。臨用前按 0.5 g/100 入抗壞血酸。 酸鹽緩沖液(用于谷物及谷物制品前處理):稱取 14.2 g 磷酸氫二鈉,用 1000 溶解。臨用前按 1.0 g/100 入抗壞血酸,用氫氧化鈉溶液 A( 酸鹽緩沖液 于谷物及谷物制品測試):稱取 14.2 g 磷酸氫二鈉,用 1000 溶解。臨用前按 1.0 g/100 入抗壞血酸,用氫氧化鈉溶液 A( 酸鹽緩沖液( 0.1 )(用于谷物及谷物制品標(biāo)準(zhǔn)溶液制備):溶解 g 磷酸二氫鉀于水中稀釋到 1000 氫氧化鉀溶液( 酸標(biāo)準(zhǔn)品。 水( )。 苯( 壞血酸( 株:干酪乳桿菌( 469。 010 2 養(yǎng)基 酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基:胨化乳 15 g,酵母浸膏 5 g,葡萄糖 10 g,番茄汁 100 酸二氫鉀2 g,聚山梨糖單油酸酯 1 g,瓊 脂 10 g,加蒸餾水至 1000 20 25 )。 121高壓滅菌 15用。 酸桿菌肉湯培養(yǎng)基:胨化乳 15 g,酵母浸膏 5 g,葡萄糖 10 g,番茄汁 100 酸二氫鉀2 g,聚山梨糖單油酸酯 1 g,加蒸餾水至 1000 20 25 )。 121高壓滅菌 15用。 酸測定用培養(yǎng)基:酪蛋白胨 10 g,葡萄糖 40 g,乙酸鈉 40 g,磷酸氫二鉀 1 g,磷酸二氫鉀 1 g, .2 g, .6 g, .5 g,硫酸腺嘌呤 10 酸鳥嘌呤 10 嘧啶 10 嘌呤 20 山梨糖 0.1 g,谷光甘肽 5 酸鎂 0.4 g,氯化鈉 20 酸亞鐵 20 酸錳 15 黃素 1 生素 酸硫胺素 400 g,泛酸鈣 800 g,煙酸 800 g,生物素 20 g,加蒸餾水至 1000 20 25 )。 注: 市售商業(yè)化合成培養(yǎng)基效果更穩(wěn)定。 氧化鉀溶液( 4 ):稱取 224 g 氫氧化鉀于 1000 杯中,用 400 溶解,冷卻至室溫后,轉(zhuǎn)移至 1000 量瓶中,用水定容。 瓜蛋白酶溶液: 1 g 蛋白酶(活力 6000 U/ 40 )溶于 100 酸鹽緩沖液( 。臨用前配制。 1 g )溶于 100 酸鹽緩沖液( 。臨用前配制。 m 滅菌濾膜。 準(zhǔn)溶液的制備 酸標(biāo)準(zhǔn)貯備液( 500 g/稱取 55 56 確至 0.1 酸標(biāo)準(zhǔn)品( 用50 餾水轉(zhuǎn)入 100 量瓶中,加 2 水( 溶液制備后,按式( 1)計(jì)算溶液的體積,要求貯備液中葉酸鹽的濃度為 500 g/ 貯備液體積( =5001001000 貯備液體積( =50 ( 1) 式中: m葉酸標(biāo)準(zhǔn)品的質(zhì)量,單位為毫克( ; c葉酸標(biāo)準(zhǔn)品的純度,單位為克每百克( g/100 g) 。 用水稀釋溶液至刻度,用吸管加水至計(jì)算要求的體積,充分混合,放入棕色試劑瓶中 2 4 冰箱冷藏,保存期為 4 個月。 酸標(biāo)準(zhǔn)中間液( 50 g/吸取 10 酸標(biāo)準(zhǔn)貯備液( 100 色容量瓶中,用水定容至刻度,充分混勻, 2 4 冰箱冷藏,保存期為 1 個月。 酸標(biāo)準(zhǔn)工作液( ng/0.1 ng/吸取 1 酸標(biāo)準(zhǔn)中間液( 100 水定容至刻度,混合。再吸該液 1 100 色容量瓶中,定容,混合。 從上液中分別吸取 5 250 500 色容量瓶中,用磷酸鹽緩沖液( 容到刻度,混勻,即為高濃度標(biāo)準(zhǔn)工作液( 0.1 ng/低濃度標(biāo)準(zhǔn)工作液( ng/臨用前配制。 酸( 1 ):量取 83.0 酸溶于水中,冷卻后定容至 1000 010 3 氧化鈉溶液 A( 4 ):稱取 160 g 氫氧化鈉于 1000 杯中,用 400 溶解,冷卻至室溫后,轉(zhuǎn)移至 1000 量瓶中,用水定容。 氧化鈉溶液 B( 0.1 ):吸取 2.5 氧化鈉溶液 A( 移至 100 量瓶中用水定容。 氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液( 0.1 ):稱取 4 g(精確至 g)氫氧化鈉用水稀釋至 1000 鄰苯二甲酸氫鉀標(biāo)定。保存此溶液的容器要密封,以防二氧化碳滲入。 氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液的標(biāo)定:稱取約 g(精確至 g)于 105 110 烘至恒重的鄰苯二甲酸氫鉀,用 50 二氧化碳的水溶于錐形瓶中,加兩滴 5 g/L 的酚酞指示劑,用配好的氫氧化鈉溶液滴定至粉紅色,同時作空白實(shí)驗(yàn)。按式( 2)計(jì)算氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度: c=( 2) 式中: c氫氧化鈉的濃度,單位為摩爾每升( ) ; m稱取的鄰苯二甲酸氫鉀的質(zhì)量,單位為克( g) ; 氫氧化鈉溶液的用量,單位為毫升( ; 空白試驗(yàn)氫氧化鈉溶液的用量,單位為毫升( 。 酞溶液:取 0.5 g 酚酞溶于 75 積分?jǐn)?shù)為 95 %的乙醇中,加入 20 ,再加入氫氧化鈉溶液( 直至加入一滴立即變成粉紅色,再用水定容至 100 麝香草酚藍(lán)指示劑:稱取 0.1 g 溴麝香草酚藍(lán)于研缽中,加入 1.6 氧化鈉溶液 B( 磨,加少許水至完全溶解,轉(zhuǎn)移至 250 量瓶中用水定容。 5 儀器和設(shè)備 5.1 :精度為 心機(jī):轉(zhuǎn)速 2000 轉(zhuǎn) /分鐘。 光光度儀。 平:感量為 0.1 化培養(yǎng)箱: 36 1 定管:分刻度值為 0.1 渦旋振蕩器。 6 分析步驟 試菌液的制備 酪乳桿菌 ( 469 凍干菌粉轉(zhuǎn)入乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基 ( 中, 36 1 培養(yǎng) 24 h 后,轉(zhuǎn)接至乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基( 管中,再 36 1 培養(yǎng) 24 h。培養(yǎng)好的乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基( 管的培養(yǎng)物作為貯備菌種。 010 4 貯備菌種培養(yǎng)基上分別轉(zhuǎn)接到三個乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基 ( 試管中, 放入培養(yǎng)箱中 36 1 培養(yǎng) 24 h。每月轉(zhuǎn)接一次,作為月接種管貯于冰箱中。每月定期從月接種管中重新接種 3 個轉(zhuǎn)接管保存新菌株。 月接種的培養(yǎng)管中的一支再接種一支乳酸桿菌瓊脂培養(yǎng)基 ( 試管, 36 1 培養(yǎng) 24 h,作為日接種管每日測定用。 日接種管中接種一管乳酸桿菌肉湯培養(yǎng)基( 36 1 培養(yǎng) 24 h。在無菌條件下離心該培養(yǎng)液 10 2000 轉(zhuǎn) /分鐘),棄去上清液。用 10 理鹽水( 蕩洗滌菌體,離心 10 2000 轉(zhuǎn) /分鐘),棄去上清液,用 10 理鹽水( 蕩清洗。如前離心操作,棄去上清液。再加 10 理鹽水( 混勻。吸 1 菌懸液于 10 理鹽水( ,混勻制成測試菌液。 生理鹽水( 對照,用分光光度計(jì),于 550 長下,測測試菌液( 光密度值,此值應(yīng)在 60 % 80 %之間。 樣的制備 制品 稱取 2 g(精確至 g)試樣(約含葉酸 5 g)于 100 杯中,用 25 30 復(fù)原樣品,轉(zhuǎn)入 100 量瓶中,用水定容至刻度,溶液中葉酸的質(zhì)量濃度大約為 g/取 1 胰腺( 一個 180 5 帶螺旋蓋的試管中,充分混合。加 18 抗壞血酸的磷酸緩沖液( ,再加 1 苯( 。同時制備 空白對照管,吸 1 餾水和 1 空白管中,加 18 抗壞血酸的磷酸緩沖液( 1 苯( 。在 37 下,樣品管和空白管保溫 16 h 后,于 100 水浴加熱 5 磷酸鹽緩沖液( 適當(dāng)稀釋,得到濃度約為 0.1 ng/葉酸鹽溶液。 若確定樣品中強(qiáng)化葉酸與原生葉酸相比所占比例很大,則可以用 1 液加 19 抗壞血酸的磷酸緩沖液( 100 水浴加熱 5 用磷酸鹽緩沖液( 釋,得到濃度約為 0.1 ng/葉酸鹽溶液。 物及谷物制品 稱取大約含 1 g 葉酸的試樣于 150 角燒瓶中。加 20 mL 酸緩沖溶液( ,混勻后加 50 和 1.0 苯( 。加蓋后 121 15 菌,然后迅速冷卻。加 1 瓜蛋白酶溶液( ,于 36 1 保溫 3h 后 100 加熱 3 卻。加 1 , 36 1 保溫 2 h 后加 4 胰腺 ( , 加蓋, 36 1保溫 16 h 后 100 加熱 3 冷卻。 用 1 鹽酸( 水稀釋定容到 100 濾得到澄清濾液,然后吸取 1 清濾液用磷酸鹽緩沖液 容至 100 到濃度約為 0.1 ng/葉酸鹽溶液。 若確定樣品中強(qiáng)化葉酸與原生葉酸相比所占比例很大則可以直接在樣品中加 20 含抗壞血酸的磷酸緩沖液( 50 ,于 121 滅菌 15 后吸取 1清濾液, 磷酸鹽緩沖液 釋,得到濃度約為 0.1 ng/葉酸鹽溶液。 準(zhǔn)曲線管的制作 按表 1 順序加入蒸餾水、標(biāo)準(zhǔn)工作液( (測定谷物及谷物制品的標(biāo)準(zhǔn)溶液用磷酸鹽緩沖液( 替磷酸鹽緩沖液( )和葉酸測定用培養(yǎng)基( 培養(yǎng)管中。表 1 中每一編號需制作 3 管。試管 ,相當(dāng)葉酸含量為 010 5 表 1 標(biāo)準(zhǔn)曲線管的制作 試管號 2 4 6 8 10 蒸餾水( 5 5 4 3 2 1 0 2 1 0 標(biāo)準(zhǔn)溶液( 0 0 1 2 3 4 5 3 4 5 培養(yǎng)基( 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 注1: 試管 加低濃度標(biāo)準(zhǔn)工作液。 注2: 試管 加高濃度標(biāo)準(zhǔn)工作液。 樣管的制作 按表 2 順序加入蒸餾水、試樣和葉酸測定用培養(yǎng)基于試管中,表中每一編號需制作 3 管。 表 2 試樣管的制作 試管號 1 2 3 4 蒸餾水( 4 3 2 1 樣 品( 1 2 3 4 培養(yǎng)基( 5 5 5 5 菌 將標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管 121 滅菌 5 速冷卻到室溫(商品化培養(yǎng)基按標(biāo)簽說明進(jìn)行滅菌 )。 注 :保證加熱和冷卻過程中條件均勻,滅菌管數(shù)過多或距離太近,在滅菌鍋中都可產(chǎn)生不良影響。 種 無菌條件下每管中均加入一滴(約 50 L)菌懸液( ,加蓋,充分振蕩混勻所有試管(標(biāo)準(zhǔn)曲線未接種空白管 外) 。 養(yǎng) 度法: 36 1 培養(yǎng) 72 h。對每支試管進(jìn)行目測檢查,未接種管內(nèi)培養(yǎng)液應(yīng)是澄清的,標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管中培養(yǎng)液的濁度應(yīng)有梯度。未接種管中若出現(xiàn)混濁,則測定無效。 密度法:在 36 1 ,培養(yǎng) 16 h 24 h。其他同 定 度法 10 將未接種空白管 接種空白管 培養(yǎng)物轉(zhuǎn)至三角燒瓶中,以溴麝香草酚藍(lán)( 指示劑,或用 以 滴定終點(diǎn)用氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液( 定標(biāo)準(zhǔn)曲線未接種空白管 S 1 和接種空白管 S 2。記錄下消耗的氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液體積。 注: 如果接種空白滴定反應(yīng)消耗的氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液體積數(shù)等于或高于未接種空白水平的 1.5 測定結(jié)果無效。 10 將標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管中的培養(yǎng)物轉(zhuǎn)至三角燒瓶中,以溴麝香草酚藍(lán)( 指示劑,或用 以 滴定終點(diǎn)用氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液( 定標(biāo)準(zhǔn)曲線管和試樣管的培養(yǎng)物。記錄下消耗的氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液體積。 注: 通常標(biāo)準(zhǔn)曲線管 耗的 0.1 的氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液體積數(shù)在 8 12 間。 密度法 010 6 以接種空白管(表 1 中試管號 S 2)作對照,取出最高濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線管 蕩 5 s,在波長 550 回重新培養(yǎng)。 2 h 后同等條件重新測該管的光密度,如果兩次光密度的絕對差結(jié)果 2 %,則取出全部檢驗(yàn)管測定標(biāo)準(zhǔn)溶液和試樣的光密度。 準(zhǔn)曲線的繪制 以標(biāo)準(zhǔn)曲線管葉酸含量作橫坐標(biāo), 以消耗氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的毫升數(shù)或光密度值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。 樣管中葉酸含量的計(jì)算 按照 個試樣管測定的消耗氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的毫升數(shù)或光密度值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線中查得對應(yīng)的葉酸含量。每一編號的三個試樣管應(yīng)計(jì)算管中每毫升測定液葉酸的含量,并與其平均值相比較。相對偏差小于 15 %的試管為有效試管,無效試樣管應(yīng)舍去,有效試樣管總數(shù)應(yīng)大于所有試樣管總數(shù)的2/3。重新計(jì)算每一編號的有效試樣管中每毫升測定液葉酸含量的平均值,以此平均值計(jì)算全部編號試樣管的總平均值 注: 樣品管

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