間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)方法

間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)方法間充質(zhì)干細(xì)胞MSC基本形態(tài)干細(xì)胞應(yīng)用與干細(xì)胞調(diào)控。間充質(zhì)干細(xì)胞MSC生長過程間充質(zhì)干細(xì)胞MSC培養(yǎng)的合適氣體環(huán)境細(xì)胞培養(yǎng)板的選擇如何選用細(xì)胞培養(yǎng)基如何維持培養(yǎng)液pH血清與干細(xì)胞的培養(yǎng)胎牛血清（FBS）是否需要滅活細(xì)胞的細(xì)菌、真菌污染及排除細(xì)胞培養(yǎng)污染的預(yù)防使用胰蛋白酶時(shí)加入EDTA的目的是什么膠原酶的種類和選型膠原酶VS胰酶干細(xì)胞的種類和表面標(biāo)記間質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)原理概述間質(zhì)干細(xì)胞成脂和成骨誘導(dǎo)分化干細(xì)胞老化的表現(xiàn)和處理細(xì)胞傳代消化過程指導(dǎo)冷凍保護(hù)劑作用和選擇細(xì)胞凍存指導(dǎo)干細(xì)胞冷凍和復(fù)蘇移植細(xì)胞的基因修飾1?間充質(zhì)干細(xì)胞MSC基本形態(tài)體外培養(yǎng)細(xì)胞根據(jù)它們?cè)谂囵B(yǎng)器皿是否能貼附于支持物上生長特征，可分為貼附型生長細(xì)胞，常表現(xiàn)為成纖維型細(xì)胞和上皮細(xì)胞。懸浮型細(xì)胞在培養(yǎng)中懸浮生長。間充質(zhì)干細(xì)胞MSC基本形態(tài)：形態(tài)與成纖維細(xì)胞類似，細(xì)胞在支持物表面呈梭形或不規(guī)則三角形生長，細(xì)胞中央有卵圓形核，胞質(zhì)向外伸出2-3厘米個(gè)長短不同的突起?？煽吹郊?xì)胞成螺旋狀生長。2.干細(xì)胞應(yīng)用與干細(xì)胞調(diào)控干細(xì)胞的調(diào)控是指給出適當(dāng)?shù)囊蜃訔l件，對(duì)干細(xì)胞的增殖和分化進(jìn)行調(diào)控，使之向指定的方向發(fā)展。內(nèi)源性調(diào)控干細(xì)胞自身有許多調(diào)控因子可對(duì)外界信號(hào)起反應(yīng)從而調(diào)節(jié)其增殖和分化，包括調(diào)節(jié)細(xì)胞不對(duì)稱分裂的蛋白，控制基因表達(dá)的核因子等。另外，干細(xì)胞在終末分化之前所進(jìn)行的分裂次數(shù)也受到細(xì)胞內(nèi)調(diào)控因子的制約。胞內(nèi)蛋白對(duì)干細(xì)胞分裂的調(diào)控干細(xì)胞分裂可能產(chǎn)生新的干細(xì)胞或分化的功能細(xì)胞。這種分化的不對(duì)稱是由于細(xì)胞本身成分的不均等分配和周圍環(huán)境的作用造成的。細(xì)胞的結(jié)構(gòu)蛋白，特別是細(xì)胞骨架成分對(duì)細(xì)胞的發(fā)育非常重要。如在果蠅卵巢中，調(diào)控干細(xì)胞不對(duì)稱分裂的是一種稱為收縮體的細(xì)胞器，包含有許多調(diào)節(jié)蛋白，如膜收縮蛋白和細(xì)胞周期素A。收縮體與紡錘體的結(jié)合決定了干細(xì)胞分裂的部位，從而把維持干細(xì)胞性狀所必需的成分保留在子代干細(xì)胞中。轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控在脊椎動(dòng)物中，轉(zhuǎn)錄因子對(duì)干細(xì)胞分化的調(diào)節(jié)非常重要。比如在胚胎干細(xì)胞的發(fā)生中，轉(zhuǎn)錄因子Oct4是必需的°Oct4是一種哺乳動(dòng)物早期胚胎細(xì)胞表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子，它誘導(dǎo)表達(dá)的靶基因產(chǎn)物是FGF-4等生長因子，能夠通過生長因子的旁分泌作用調(diào)節(jié)干細(xì)胞以及周圍滋養(yǎng)層的進(jìn)一步分化。Oct4缺失突變的胚胎只能發(fā)育到囊胚期，其內(nèi)部細(xì)胞不能發(fā)育成內(nèi)層細(xì)胞團(tuán)。另外白血病抑制因子(LIF)對(duì)培養(yǎng)的小鼠ES細(xì)胞的自我更新有促進(jìn)作用，而對(duì)人的成體干細(xì)胞無作用，說明不同種屬間的轉(zhuǎn)錄調(diào)控是不完全一致的。又如Tcf/Lef轉(zhuǎn)錄因子家族對(duì)上皮干細(xì)胞的分化非常重要。Tcf/Lef是Wnt信號(hào)通路的中間介質(zhì)，當(dāng)與8-Catenin形成轉(zhuǎn)錄復(fù)合物后，促使角質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化為多能狀態(tài)并分化為毛囊。外源性調(diào)控除內(nèi)源性調(diào)控外，干細(xì)胞的分化還可受到其周圍組織及細(xì)胞外基質(zhì)等外源性因素的影響。分泌因子間質(zhì)細(xì)胞能夠分泌許多因子，維持干細(xì)胞的增殖，分化和存活。有兩類因子在不同組織甚至不同種屬中都發(fā)揮重要作用，它們是TGF8家族和Wnt信號(hào)通路。比如TGF家族中至少有兩個(gè)成員能夠調(diào)節(jié)神經(jīng)嵴干細(xì)胞的分化。最近研究發(fā)現(xiàn)，膠質(zhì)細(xì)胞衍生的神經(jīng)營養(yǎng)因子(GDNF)不僅能夠促進(jìn)多種神經(jīng)元的存活和分化，還對(duì)精原細(xì)胞的再生和分化有決定作用。GDNF缺失的小鼠表現(xiàn)為干細(xì)胞數(shù)量的減少，而GDNF的過度表達(dá)導(dǎo)致未分化的精原細(xì)胞的累積。Wnts的作用機(jī)制是通過阻止P-Catenin分解從而激活Tcf/Lef介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄，促進(jìn)干細(xì)胞的分化。比如在線蟲卵裂球的分裂中，鄰近細(xì)胞誘導(dǎo)的Wnt信號(hào)通路能夠控制紡錘體的起始點(diǎn)和內(nèi)胚層的分化。膜蛋白介導(dǎo)的細(xì)胞間的相互作用有些信號(hào)是通過細(xì)胞-細(xì)胞的直接接觸起作用的。P-Catenin就是一種介導(dǎo)細(xì)胞粘附連接的結(jié)構(gòu)成分。除此之外，穿膜蛋白Notch及其配體Delta或Jagged也對(duì)干細(xì)胞分化有重要影響。在果蠅的感覺器官前體細(xì)胞，脊椎動(dòng)物的胚胎及成年組織包括視網(wǎng)膜神經(jīng)上皮、骨骼肌和血液系統(tǒng)中，Notch信號(hào)都起著非常重要的作用。當(dāng)Notch與其配體結(jié)合時(shí)，干細(xì)胞進(jìn)行非分化性增殖；當(dāng)Notch活性被抑制時(shí)，干細(xì)胞進(jìn)入分化程序，發(fā)育為功能細(xì)胞。整合素(Integrin)與細(xì)胞外基質(zhì)整合素家族是介導(dǎo)干細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)粘附的最主要的分子。整合素與其配體的相互作用為干細(xì)胞的非分化增殖提供了適當(dāng)?shù)奈h(huán)境。比如當(dāng)P1整合素喪失功能時(shí)，上皮干細(xì)胞逃脫了微環(huán)境的制約，分化成角質(zhì)細(xì)胞。此外細(xì)胞外基質(zhì)通過調(diào)節(jié)P1整合素的表達(dá)和激活，從而影響干細(xì)胞的分布和分化方向。干細(xì)胞的可塑性越來越多的證據(jù)表明，當(dāng)成體干細(xì)胞被移植入受體中，它們表現(xiàn)出很強(qiáng)的可塑性。通常情況下，供體的干細(xì)胞在受體中分化為與其組織來源一致的細(xì)胞。而在某些情況下干細(xì)胞的分化并不遵循這種規(guī)律。1999年Goodell等人分離出小鼠的肌肉干細(xì)胞，體外培養(yǎng)5天后，與少量的骨髓間質(zhì)細(xì)胞一起移植入接受致死量輻射的小鼠中，結(jié)果發(fā)現(xiàn)肌肉干細(xì)胞會(huì)分化為各種血細(xì)胞系。這種現(xiàn)象被稱為干細(xì)胞的橫向分化(trans-differentiation)。關(guān)于橫向分化的調(diào)控機(jī)制目前還不清楚。大多數(shù)觀點(diǎn)3認(rèn)為干細(xì)胞的分化與微環(huán)境密切相關(guān)?？赡艿臋C(jī)制是，干細(xì)胞進(jìn)入新的微環(huán)境后，對(duì)分化信號(hào)的反應(yīng)受到周圍正在進(jìn)行分化的細(xì)胞的影響，從而對(duì)新的微環(huán)境中的調(diào)節(jié)信號(hào)做出反應(yīng)。3?間充質(zhì)干細(xì)胞MSC生長過程潛伏期T指數(shù)增生期T停滯期潛伏期(latentphase)細(xì)胞接種后，先經(jīng)過一個(gè)在培養(yǎng)液中呈懸浮狀態(tài)的懸浮期。此時(shí)，細(xì)胞質(zhì)回縮，胞體呈圓球形，然后細(xì)胞貼附于載體表面,稱貼壁，懸浮期結(jié)束。細(xì)胞貼壁速度與細(xì)胞種類，培養(yǎng)基成分,載體的理化性質(zhì)等密切相關(guān)。一般情況下，原代培養(yǎng)細(xì)胞貼壁速度慢，可達(dá)10-24小時(shí)或更多，而傳代細(xì)胞系貼壁速度快，通常10-30分鐘即可貼壁。細(xì)胞貼壁后還需經(jīng)過一個(gè)潛伏階段，才進(jìn)入生長和增殖期。原代培養(yǎng)細(xì)胞潛伏期長，約24-96小時(shí)或更長，連續(xù)細(xì)胞系和腫瘤細(xì)胞潛伏期短，僅需6-24小時(shí)。指數(shù)增生期(logarithmicgrowthphase)這是細(xì)胞增殖最旺盛的階段，分裂相細(xì)胞增多。指數(shù)增生期細(xì)胞分裂相數(shù)量可作為判定細(xì)胞生長是否旺盛的一個(gè)重要標(biāo)志。通常以細(xì)胞分裂相指數(shù)(Mitoticindex，MI)表示，即細(xì)胞群中每1000個(gè)細(xì)胞中的分裂相數(shù)。一般細(xì)胞的分裂指數(shù)介于％%，原代細(xì)胞分裂指數(shù)較低，而連續(xù)細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞分裂相指數(shù)可高達(dá)3%—5%。指數(shù)增生期的細(xì)胞活力最好時(shí)期，是進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)最佳時(shí)期，也是凍存細(xì)胞的最好時(shí)機(jī)。在接種細(xì)胞數(shù)量適宜情況下，指數(shù)增生期持續(xù)3—5天后，隨著細(xì)胞數(shù)量不斷增多、生長空間減少，最后細(xì)胞相互接觸匯合成片。正常細(xì)胞相互接觸后能抑制細(xì)胞運(yùn)動(dòng)，這種現(xiàn)象稱接觸抑制現(xiàn)象(contactinhibition)。而惡性腫瘤細(xì)胞無接觸抑制現(xiàn)象，能繼續(xù)移動(dòng)和增殖，導(dǎo)致細(xì)胞向三維空間擴(kuò)展，使細(xì)胞發(fā)生堆積(piledup)。細(xì)胞接觸匯合成片后，雖然發(fā)生接觸抑制，但只要營養(yǎng)充分，細(xì)胞仍能進(jìn)行增殖分裂，因此細(xì)胞數(shù)仍然在增多。但是，當(dāng)細(xì)胞密度進(jìn)一步增大，培養(yǎng)液中營養(yǎng)成分減少，代謝產(chǎn)物增多時(shí)，細(xì)胞因營養(yǎng)枯竭和代謝產(chǎn)物的影響，導(dǎo)致細(xì)胞分裂停止，這種現(xiàn)象稱密度抑制現(xiàn)象(DensityInhibition)。停滯期(Stagnatephase)細(xì)胞數(shù)量達(dá)到飽和密度后，如不及時(shí)進(jìn)行傳代，細(xì)胞就會(huì)停止增殖，進(jìn)入停止期。此時(shí)細(xì)胞數(shù)持平，故也稱平臺(tái)期(Plateauphase)。停滯期細(xì)胞雖不增殖，但仍有代謝活動(dòng)。如不進(jìn)行分離傳代，細(xì)胞會(huì)因培養(yǎng)液中營養(yǎng)耗盡、代謝產(chǎn)物積聚、pH下降等因素中毒，出現(xiàn)形態(tài)改變，貼壁細(xì)胞會(huì)脫落，嚴(yán)重的會(huì)發(fā)生死亡，因此，應(yīng)及時(shí)傳代。4?間充質(zhì)干細(xì)胞MSC培養(yǎng)的合適氣體環(huán)境干細(xì)胞相關(guān)的培養(yǎng)液都必須在5%CO2的氣體環(huán)境中培養(yǎng)使用。否則會(huì)對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生影響。氣體是哺乳動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)生存必需條件之一，所需氣體主要有氧氣和二氧化碳。氧氣參與三羧酸循環(huán)，產(chǎn)生供給細(xì)胞生長增殖的能量和合成細(xì)胞生長所需用的各種成分。開放培養(yǎng)時(shí)一般把細(xì)胞置于95%空氣加5%二氧化碳混合氣體環(huán)境中。二氧化碳既是細(xì)胞代謝產(chǎn)物也是細(xì)胞生長繁殖所需成分，它在細(xì)胞培養(yǎng)中的主要作用在于維持培養(yǎng)基的pH值。大多數(shù)細(xì)胞的適宜pH為，偏離這一范圍對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)將產(chǎn)生有害的影響。一般情況下，細(xì)胞耐酸性比耐堿性大一些，在偏酸環(huán)境中更利于細(xì)胞生長。細(xì)胞培養(yǎng)板的選擇細(xì)胞培養(yǎng)板依底部形狀的不同可分為平底和圓底(U型和V型)；培養(yǎng)孔的孔數(shù)有6、12、24、48、96、384、1536孔等；根據(jù)材質(zhì)的不同有Terasaki板和普通細(xì)胞培養(yǎng)板。具體選擇時(shí)根據(jù)培養(yǎng)細(xì)胞的類型、所需培養(yǎng)體積及不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康亩?。平底和圓底(U型和V型)培養(yǎng)板的區(qū)別和選擇不同形狀的培養(yǎng)板有不同用途。培養(yǎng)細(xì)胞，通常是選用平底的，這樣便于鏡下觀測(cè)、有明確的底面積、細(xì)胞培養(yǎng)液面高度相對(duì)一致。因此做MTT等實(shí)驗(yàn)時(shí)，無論是貼壁和懸浮細(xì)胞，一般選用平底板。測(cè)吸光值一定要使用平底的培養(yǎng)板。要特別注意材質(zhì)，標(biāo)示“TissueCulture(TC)Treated”是養(yǎng)細(xì)胞用的。U型或V型板，一般在某些特殊要求日寺才使用。如在免疫學(xué)方面，當(dāng)做兩種不同淋巴細(xì)胞混合培養(yǎng)日寺，需要二者相互接觸刺激，這時(shí)一般會(huì)選用U型板，因?yàn)榧?xì)胞會(huì)由于重力的作用而聚集在很小的范圍內(nèi)內(nèi)。圓底培養(yǎng)板還會(huì)用于同位素?fù)饺氲膶?shí)驗(yàn)，需要用細(xì)胞收集儀收集細(xì)胞的培養(yǎng)，如“混合淋巴細(xì)胞培養(yǎng)”等°V型板常用做細(xì)胞殺傷、免疫學(xué)血凝集實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞殺傷這種實(shí)驗(yàn)也可用U型板替代(加入細(xì)胞后，低速離心)。Terasaki板和普通細(xì)胞培養(yǎng)板的區(qū)別Terasakiplate主要是用于晶體學(xué)研究，產(chǎn)品設(shè)計(jì)便于對(duì)晶體的觀察與結(jié)構(gòu)分析。有兩種sitting和handingdrop兩種方法，兩種方法應(yīng)用產(chǎn)品的外形結(jié)構(gòu)也不同。材料上選擇crystalclasspolymer，特殊的材料有利觀察晶體結(jié)構(gòu)。細(xì)胞培養(yǎng)板主要是PS材料，材料是treatedsufface，便于細(xì)胞貼壁生長與伸展。當(dāng)然還有浮游細(xì)胞的生長材料，同時(shí)還有l(wèi)owbindingsurface（3） 細(xì)胞培養(yǎng)板與酶標(biāo)板的區(qū)別酶標(biāo)板一般要比細(xì)胞培養(yǎng)板貴，細(xì)胞板主要做細(xì)胞培養(yǎng)，也可以用來測(cè)蛋白濃度；酶標(biāo)板包括包被板和反應(yīng)板，一般不用做細(xì)胞培養(yǎng)，它主要做免疫酶聯(lián)反應(yīng)后的蛋白檢測(cè)，需要更高的要求和特定的酶標(biāo)工作液。（4） 常用不同培養(yǎng)板的孔底面積及推薦加液量不同孔板所加培養(yǎng)液的液面都不宜太深，一般在2~3mm范圍，結(jié)合不同孔的底面積就可算出各培養(yǎng)孔的適宜加液量（參考下表）。若加液量過多會(huì)影響氣體（氧氣）交換，而且在搬動(dòng)過程中易溢出造成污染。具體所加細(xì)胞密度依實(shí)驗(yàn)的目的不同靈活掌握。常用的培養(yǎng)器皿培養(yǎng)器皿底面積（cm2）加培養(yǎng)液量（mL）可獲細(xì)胞量96孔培養(yǎng)板10524孔培養(yǎng)板25X10512孔培養(yǎng)板1066孔培養(yǎng)板 X1064孔培養(yǎng)板287X106培養(yǎng)皿8X1066cm培養(yǎng)皿21X1069cm培養(yǎng)皿49X10610cm培養(yǎng)皿55X10625cm塑料培養(yǎng)瓶25X10675cm塑料培養(yǎng)瓶7515~302X10725cm玻璃培養(yǎng)瓶193X106100cm玻璃培養(yǎng)瓶6X106250cm玻璃培養(yǎng)瓶782X1072500cm旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶700100~250X108注：各種單層生長的細(xì)胞在培養(yǎng)皿中長滿的細(xì)胞數(shù)，主要取決于器皿底表面積和細(xì)胞體積的大小。上表以293細(xì)胞為例給出的可獲細(xì)胞量僅作參考。如何選用細(xì)胞培養(yǎng)基培養(yǎng)基是維持體外細(xì)胞生存和生長的基本溶液，是組織細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)最重要的條件。細(xì)胞培養(yǎng)基大致有:合成培養(yǎng)基主要成分為：氨基酸、維生素、碳水化合物、無機(jī)鹽、輔助物質(zhì)(核酸降解物、氧化還原劑等)。常用的有：199細(xì)胞培養(yǎng)基及其改良品種。1950年由Morgan等設(shè)計(jì)，除BSS夕卜，含有53種成分，添加適量的血清后，可廣泛用于多種細(xì)胞培養(yǎng)、病毒學(xué)、疫苗生產(chǎn)等。199(HB)細(xì)胞培養(yǎng)基，主要應(yīng)用于Vero細(xì)胞、地鼠腎細(xì)胞轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)生產(chǎn)狂犬、乙腦等疫苗，具有高緩沖性能，能夠有效提高病毒滴度。BME細(xì)胞培養(yǎng)基?；A(chǔ)Eagle培養(yǎng)基(BasalMediumEagle)，1955年由Eagle設(shè)計(jì)，BSS+12種氨基酸+谷氨酰胺+8種維生素。簡(jiǎn)單、便于添加，適于各種傳代細(xì)胞系和特殊研究用，在此基礎(chǔ)上改良的細(xì)胞培養(yǎng)基品種有MEM、DMEM、IMDM等。MEM細(xì)胞培養(yǎng)基。低限量Eagle培養(yǎng)基(MinimalEssentialMedium)，1959年修改配方，刪去賴氨酸、生物素，增加氨基酸濃度，適合多種細(xì)胞單層生長，是一種最基本、適用范圍最廣的培養(yǎng)基，是一種被廣泛應(yīng)用的培養(yǎng)基。需要注意的是，MEM細(xì)胞培養(yǎng)基有含Earle's平衡鹽的類型，也有含Hanks'平衡鹽的類型；有高壓滅菌型的，也有過濾除菌型的；還有含非必需氨基酸的類型。生產(chǎn)和科研時(shí)，應(yīng)根據(jù)實(shí)際情況注意選擇合適的MEM細(xì)胞培養(yǎng)基。另外，因MEM培養(yǎng)基營養(yǎng)成分所限，針對(duì)生產(chǎn)之特定細(xì)胞培養(yǎng)與表達(dá)時(shí)，并不一定是使用效果最佳或者最經(jīng)濟(jì)的培養(yǎng)基。DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基及其改良品種。DMEM由Dulbecco改良的Eagle培養(yǎng)基，各成份量加倍，分低糖(1000mg/L)、高糖(4500mg/L)。細(xì)胞生長快。附著稍差的腫瘤細(xì)胞、克隆培養(yǎng)用高糖效果較好，常用于雜交瘤的骨髓瘤細(xì)胞和DNA轉(zhuǎn)染的轉(zhuǎn)化細(xì)胞培養(yǎng)。例如CHO細(xì)胞表達(dá)生產(chǎn)乙肝疫苗、CHO細(xì)胞表達(dá)EPO。IMDM細(xì)胞培養(yǎng)基。IMDM是由Iscove's改良的Eagle培養(yǎng)基，增加了幾種氨基酸和胱氨酸量。可用于雜交瘤細(xì)胞培養(yǎng)，以及無血清培養(yǎng)的基礎(chǔ)培養(yǎng)基。RPMI-1640細(xì)胞培養(yǎng)基。Moore等人于1967年在RoswellParkMemorialInstitute研制，針對(duì)淋巴細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)計(jì)，BSS+21種氨基酸+維生素11種等，廣泛適于許多種正常細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞，也用做懸浮細(xì)胞培養(yǎng)。Fischer’s細(xì)胞培養(yǎng)基。用于白血病微粒細(xì)胞培養(yǎng)。HamF10、F12細(xì)胞培養(yǎng)基。1963年、1969年由Ham設(shè)計(jì)，含微量元素，可在血清含量低時(shí)用，適用于克隆化培養(yǎng)。F10適用于倉鼠、人二倍體細(xì)胞，F(xiàn)12適用于CHO細(xì)胞。DMEM/F12細(xì)胞培養(yǎng)基。DMEM和F12細(xì)胞培養(yǎng)基按照1:1比例混合效果最佳，營養(yǎng)成分豐富，且可以使用較少血清，或作為無血清培養(yǎng)基的基礎(chǔ)培養(yǎng)基。低血清細(xì)胞培養(yǎng)基主要應(yīng)用于VERO細(xì)胞、BHK21細(xì)胞等細(xì)胞在轉(zhuǎn)瓶、微載體反應(yīng)器中的培養(yǎng)。無血清培養(yǎng)基是設(shè)計(jì)用來在無血清條件下促使特殊類型的細(xì)胞生長或進(jìn)行專門應(yīng)用的培養(yǎng)基。需要添加生長因子和或細(xì)胞因子，含有個(gè)別蛋白或大量蛋白組分。替代天然培養(yǎng)基培養(yǎng)基中不包含有蛋白、水解產(chǎn)物或未知結(jié)構(gòu)的組分，所有的成分均有已知的化學(xué)結(jié)構(gòu)。面對(duì)如此多的細(xì)胞培養(yǎng)基，對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)基的選用，建議：可以查閱相關(guān)文獻(xiàn)，或在購買細(xì)胞株時(shí)咨詢選用最適合細(xì)胞株的培養(yǎng)基，或購買相配套的細(xì)胞培養(yǎng)基產(chǎn)品。許多培養(yǎng)基都適合多種細(xì)胞株的培養(yǎng)，可以采用現(xiàn)有的培養(yǎng)基進(jìn)行試驗(yàn)。根據(jù)細(xì)胞株的特點(diǎn)、實(shí)驗(yàn)的需要來選擇培養(yǎng)基。如小鼠細(xì)胞株多選1640；進(jìn)行細(xì)胞雜交、基因轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)，可選擇IMDM。結(jié)合細(xì)胞特性及培養(yǎng)基的培養(yǎng)效能，用多種培養(yǎng)基培養(yǎng)目的細(xì)胞，觀察其生長狀態(tài)，可以用生長曲線、克隆形成率等指標(biāo)判斷，根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果選擇最佳培養(yǎng)基。注：目前也有不少商業(yè)化的msc培養(yǎng)基，如百恩維的間充質(zhì)干細(xì)胞無血清培養(yǎng)基，間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)基(低血清)如何維持培養(yǎng)液pH配好的培養(yǎng)液變堿(變紫紅)是正常的現(xiàn)象。暴露在空氣中的培養(yǎng)液，因?yàn)榇髿庵卸趸嫉臐舛群艿?，培養(yǎng)液中的HCO3-被漸漸耗掉，培養(yǎng)液的pH值也逐漸升高，變成了紫紅色。如果培養(yǎng)基pH值偏堿的程度不大，可將裝培養(yǎng)液的瓶口擰松，放置于二氧化碳培養(yǎng)箱中一段時(shí)間，讓培養(yǎng)箱中的CO2進(jìn)入培養(yǎng)液，pH值就可以糾正。如果pH值偏離的程度很大，可以通過添加少量無菌的HCl或者NaOH調(diào)節(jié)pH，便可以使用。將配制好的培養(yǎng)基小劑量分裝，可以避免反復(fù)開蓋引起其中的二氧化碳逸出而造成pH升高。同時(shí)因NaHCO3遇熱不穩(wěn)定，會(huì)分解釋放出CO2，而使培養(yǎng)基的pH升高，偏堿。因此在配置使用培養(yǎng)的過程中應(yīng)注意：動(dòng)作迅速，不可使培養(yǎng)液長時(shí)間處于較高室溫下；配置過程中，混勻時(shí)切不可加熱?；靹蚝髴?yīng)立即放入4°C冰箱，待過濾時(shí)再取出；使用完畢應(yīng)盡快將瓶口封好，放于4°C冰箱保存。通過在培養(yǎng)液中同時(shí)添加Hepes也可以有效的穩(wěn)定pH值。Hepes(羥乙基哌嗪乙硫磺酸)是一種非離子兩性緩沖液，它在pH?范圍內(nèi)具有較好的緩沖能力。其最大優(yōu)點(diǎn)是在開放式培養(yǎng)或細(xì)胞觀察時(shí)能維持較恒定的pH值。在這種培養(yǎng)條件下，細(xì)胞培養(yǎng)瓶的蓋子應(yīng)擰緊，以防止培養(yǎng)液中所需的少量碳酸鹽散入空氣中。該緩沖液使用的終濃度為10?50mmol/L，一般培養(yǎng)液內(nèi)含20mmol/LHepes便可達(dá)到緩沖能力。Hepes的使用方法有以下兩種：Hepes可按所需的濃度直接加入到配制的培養(yǎng)液中，再過濾除菌。每1000ml培養(yǎng)液中加入克HEPES，溶解后用1NNaOH調(diào)pH至，過濾除菌后使用。此時(shí)HEPES的使用濃度為10mmol/L。配成100x貯存液(1mol/L),使用前取99mL培養(yǎng)液加入lmL貯存液，最終應(yīng)用濃度仍為10mmol/Lo1mol/L(100x)Hepes貯存液配制方法：取Hepes溶于90ml雙蒸水中，用1NNaOH調(diào)pH至?，然后用水定容至100mL，過濾除菌，分裝小瓶(2mL/瓶)，4°C或-20°C保存。血清與干細(xì)胞的培養(yǎng)干細(xì)胞在體內(nèi)存在的量很少，處在一個(gè)個(gè)環(huán)境相對(duì)穩(wěn)定的“niche”中，所以一旦完成分離進(jìn)入體外環(huán)境，最重要的就是保證細(xì)胞的活力不受影響，那么就必須提供一個(gè)相對(duì)穩(wěn)定的培養(yǎng)環(huán)境。這些環(huán)境就是靠培養(yǎng)基和培養(yǎng)箱來提供了。培養(yǎng)液中最重要的莫過----血清，特別是對(duì)干細(xì)胞來說。所以為了最優(yōu)的干細(xì)胞培養(yǎng)效果，推薦選用對(duì)應(yīng)的干細(xì)胞專用血清。牛血清是最常用的，但是根據(jù)血清的來源不同又可以分為小牛血清、新牛血清、胎牛血清。胎牛血清應(yīng)取自剖腹產(chǎn)的胎牛；新牛血清取自出生24小時(shí)之內(nèi)的新生牛；小牛血清取自出生10—30天的小牛。顯然，胎牛血清是品質(zhì)最高的，因?yàn)樘ヅ＿€未接觸外界，血清中所含的抗體、補(bǔ)體等對(duì)細(xì)胞有害的成分最少，所以也成為了干細(xì)胞培養(yǎng)的首選。培養(yǎng)中如何正確的使用血清避免不好的影響呢？血清的濃度：對(duì)大部分的干細(xì)胞，最佳的血清濃度是10%°過高的血清濃度會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞出現(xiàn)分化的現(xiàn)象，如果是需要高濃度的血清，培養(yǎng)的時(shí)間也不能超過兩周，否則會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞分化能力下降。過低的血清會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞的增殖速度下降。血清的溶解：必須在4C進(jìn)行，最好過夜溶解。這樣可以減少沉淀的產(chǎn)生，避免營養(yǎng)物質(zhì)的流式。同時(shí)也要避免血清的過濾，如果需要過濾可以和培養(yǎng)基一起過濾。細(xì)胞培養(yǎng)液中添加的血清有牛血清、馬血清、人血清等，其中牛血清是最常用的血清，分為胎牛血清和新生小牛血清。胎牛血清是從母牛破腹取出的胎牛中分離出的血清，價(jià)格昂貴。新生小牛血清是從剛出生的尚未哺乳的小牛中分離出來的血清，如廠家能做到這一點(diǎn)，新生小牛血清的質(zhì)量與胎牛血清的質(zhì)量相差不大。如小牛出生后已哺乳，從這種小牛中取出的血清中可能含有較多的生物活性物質(zhì)，其質(zhì)量明顯不如前兩種。血清的質(zhì)量，種類及使用的濃度都有可能影響細(xì)胞的生長，而不同批次的血清支持細(xì)胞生長的能力也不同，尤其是對(duì)克隆細(xì)胞的生長，某些批次血清可能含有毒性或抑制細(xì)胞生長的物質(zhì)。注意以下幾點(diǎn)：需要長期保存的血清必須儲(chǔ)存于-20C或-80C低溫冰箱中°4C冰箱中保存時(shí)間切勿超過1個(gè)月。由于血清結(jié)冰時(shí)體積會(huì)增加約10%，因此，血清在凍入低溫冰箱前，必須預(yù)留一定體積空間，否則易發(fā)生污染或玻璃瓶凍裂。瓶裝血清解凍需采用逐步解凍法：-20C或-80C低溫冰箱中的血清放入41冰箱中溶解1天。然后移入室溫，待全部溶解后再分裝。在溶解過程中需不斷輕輕搖晃均勻(小心勿造成氣泡)，使溫度與成分均一，減少沉淀的發(fā)生。切勿直接將血清從-201進(jìn)入37C解凍，這樣因溫度改變太大，容易造成蛋白質(zhì)凝集而出現(xiàn)沉淀。影響使用效果！熱滅活是指56°C,30分鐘加熱已完全解凍的血清。加熱過程中^規(guī)則搖晃均勻。此熱處理的目的是使血清中的補(bǔ)體成分(complement)滅活。除非必須，一般不建議作此熱處理，因?yàn)闊崽幚頃?huì)造成血清沉淀物顯著增多，而且還會(huì)影響血清的質(zhì)量。補(bǔ)體參與反應(yīng)有：細(xì)胞毒作用，平滑肌細(xì)胞收縮，肥大細(xì)胞和血小板釋放組胺，增強(qiáng)吞噬作用，促進(jìn)淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞發(fā)生化學(xué)趨化和活化。(4)切勿將血清在37C放置太久，否則血清會(huì)變得渾濁，同時(shí)血清中的有效成分會(huì)破壞而影響血清質(zhì)量。血清中的沉淀物絮狀物：主要是血清中的脂蛋白變性及解凍后血清中纖維蛋白造成，這些絮狀物不會(huì)影響血清本身的質(zhì)量。可用離心3000rpm,5分鐘去除，也可不用處理。顯微鏡下“小黑點(diǎn)”：經(jīng)過熱處理過的血清，沉淀物的形成會(huì)顯著增多。有些沉淀物在顯微鏡下觀察象“小黑點(diǎn)”，常誤認(rèn)為血清受污染。一般情況下，此小黑點(diǎn)不會(huì)影響細(xì)胞生長。胎牛血清(FBS)是否需要滅活滅活的目的是去除血清中的補(bǔ)體成分，避免補(bǔ)體對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生細(xì)胞毒害作用。胎牛血清(FBS)對(duì)許多細(xì)胞系均有促生長作用，主要適用于細(xì)胞株的保藏及特殊用途的細(xì)胞株的體外培養(yǎng)。胎牛血清是取自剖腹產(chǎn)的胎牛。因?yàn)樘ヅ＿€未接觸外界，血清中所含的抗體、補(bǔ)體等對(duì)細(xì)胞生長有害的成分最少，質(zhì)量是最高的。所以不必要滅活。細(xì)胞的細(xì)菌、真菌污染及排除真菌污染是細(xì)胞培養(yǎng)過程中最常見的一種，尤其在梅雨季節(jié)進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)更易污染。污染培養(yǎng)細(xì)胞的多為煙曲霉、黑曲霉、毛霉菌、孢子霉、白念珠菌、酵母菌等。霉菌污染后多數(shù)在培養(yǎng)液中形成白色或淺黃色漂浮物。一般肉眼可見，較易被發(fā)現(xiàn)，短期內(nèi)培養(yǎng)液多不混濁，倒置顯微鏡下可見于細(xì)胞之間縱橫交錯(cuò)穿行的絲狀、管狀、及樹枝狀菌絲，并懸浮飄蕩在培養(yǎng)液中。很多菌絲在高倍鏡可見到有鏈狀排列的菌珠；念珠菌或酵母菌形態(tài)呈卵形，散在細(xì)胞周邊和細(xì)胞之間生長。鏡下看時(shí)，要將培養(yǎng)瓶用酒精棉球擦干凈，以防止與瓶外尤其瓶底外面生長的菌絲相混淆。真菌污染后，細(xì)胞生長變慢，但最后由于營養(yǎng)耗盡及毒性作用而使細(xì)胞脫落死亡。細(xì)菌是一種原核細(xì)胞微生物，其大小以微米(mm)計(jì)。常見的污染細(xì)菌有革蘭氏陰性菌和大腸桿菌、假單胞菌等，革蘭氏陰性菌中白色葡萄球菌等比較常見。一旦發(fā)生細(xì)菌污染較易發(fā)現(xiàn)，多數(shù)情況下培養(yǎng)液短期內(nèi)顏色變黃，表明有大量酸性物質(zhì)產(chǎn)生，出現(xiàn)明顯混濁現(xiàn)象；有時(shí)靜置的培養(yǎng)液液體初看不混濁，但稍加振蕩，就有很多混濁物漂起。倒置顯微鏡下觀察，可見培養(yǎng)液中有大量圓球狀顆粒漂浮。必要時(shí)可取少量培養(yǎng)液涂片染色檢查以證實(shí)細(xì)菌種類；有的培養(yǎng)液改變不明顯而又疑有污染，可取出11少量培養(yǎng)液用普通肉湯接種或用未加雙抗藥物的培養(yǎng)液接種，也可取10ml細(xì)胞懸液以100rpm離心5min,沉淀中加入無抗生素的培養(yǎng)液2ml，置于37°C培養(yǎng)，24h可得結(jié)果。污染后細(xì)胞發(fā)生病理改變，胞內(nèi)顆粒增多、增粗，最后變圓脫落死亡，造成試驗(yàn)失敗和細(xì)胞株（系）丟失。細(xì)菌和真菌污染多在傳代、換液、加樣等開放性操作之后發(fā)生，而且由于增生迅速，多再發(fā)生污染48h以內(nèi)就已明顯。在實(shí)驗(yàn)的最初兩天密切觀察實(shí)驗(yàn)樣品是否有污染發(fā)生，有利于及時(shí)采取措施予以補(bǔ)救或排除。培養(yǎng)細(xì)胞一經(jīng)污染，多數(shù)較難處理。如果污染細(xì)胞價(jià)值不大，宜棄之；有細(xì)胞株留存的或可購置的，可在尋找原因后徹底消毒操作室和二氧化碳培養(yǎng)箱（若發(fā)現(xiàn)真菌污染，可在污染孔內(nèi)加入1mol/L氫氧化鈉或硫酸銅細(xì)胞培養(yǎng)污染的預(yù)防溶液處理（具體操作方法可參考細(xì)胞培養(yǎng)污染的預(yù)防），復(fù)蘇或重新購置細(xì)胞，再培養(yǎng)。若污染細(xì)胞價(jià)值較大，又難于重新得到，可采用5?10倍于常用量的抗生素沖擊，加入高濃度抗生素后作用24?48h，再換入常規(guī)培養(yǎng)液，有時(shí)可能奏效。細(xì)胞培養(yǎng)中常用的抗生素及用量見下表。常用抗生素用量和效應(yīng)抗生素抗菌譜濃度（量/mL）細(xì)菌真菌支原體青霉素G+100?1000|ig鏈霉素G-100?1000|ig慶大霉素G+/G-+50?200|Jg四環(huán)素G+/G-+10?50|ig卡那霉素G+/G-+100?1000|ig兩性霉素+常用2|ig/mL制霉菌素+常用25|ig/mL+表示效應(yīng)程度高濃度的抗生素和抗霉菌素可能對(duì)一些細(xì)胞系有毒性，因而，做劑量反應(yīng)實(shí)驗(yàn)確定抗生素和抗霉菌素產(chǎn)生毒性的劑量水平。這點(diǎn)在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時(shí)尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養(yǎng)污染的實(shí)驗(yàn)步驟。在無抗生素的培養(yǎng)基中消化、計(jì)數(shù)和稀釋細(xì)胞，稀釋到常規(guī)細(xì)胞傳代的濃度。分散細(xì)胞懸液到多孔培養(yǎng)板中，或幾個(gè)小培養(yǎng)瓶中。在一個(gè)濃度梯度范圍內(nèi)，把選擇抗生素加入到每一個(gè)孔中。例如，兩性霉素B推薦下列濃度，，，，，，mg/ml。每天觀測(cè)細(xì)胞毒性指標(biāo)，如脫落，出現(xiàn)空泡，匯合度下降和變圓。確定抗生素毒性水平后，使用低于毒性濃度2?3倍濃度的抗生素的培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞2?3代。在無抗生素的培養(yǎng)基中培養(yǎng)細(xì)胞一代。重復(fù)步驟4。在無抗生素的培養(yǎng)基中培養(yǎng)4?6代，確定污染是否以已被消除。使用胰蛋白酶時(shí)加入EDTA的目的是什么體外培養(yǎng)的細(xì)胞受到嚴(yán)重污染時(shí)，有時(shí)即使想盡各種辦法也難以挽回。因此，防止污染，預(yù)防是關(guān)鍵。只有將預(yù)防措施貫穿于整個(gè)細(xì)胞培養(yǎng)的始終，才能將發(fā)生污染的可能性降到最小程度。一般預(yù)防可從以下幾方面著手：添加抗生素各種抗生素性質(zhì)不同，對(duì)各種微生物的作用也不同，聯(lián)合應(yīng)用比單用效果好，預(yù)防性應(yīng)用比污染后使用好(但迄今尚無對(duì)抗支原體特效抗生素)。但反復(fù)使用抗生素會(huì)使微生物產(chǎn)生耐藥性，且對(duì)細(xì)胞本身也有一定影響，因此為避免誘導(dǎo)抗藥細(xì)菌，應(yīng)定期更換培養(yǎng)系統(tǒng)中的抗生素，或盡可能不用抗生素處理。從物品、用品消毒滅菌著手細(xì)胞培養(yǎng)所用物品清洗、消毒要徹底，各種溶液滅菌除菌要仔細(xì)，并在取樣檢菌一周后確認(rèn)無菌才能使用。同時(shí)，在無菌過濾操作中，隨著濾過體積的增大，濾膜破損的可能性增加，故應(yīng)選擇最后過濾的液體進(jìn)行檢測(cè)。定期對(duì)二氧化碳培養(yǎng)箱進(jìn)行消毒。具體操作：75%的酒精搽拭培養(yǎng)箱后，使用可移動(dòng)的紫外燈至少消毒30min，加入高壓滅菌過的超純水于培養(yǎng)箱水槽中保持濕度。也可配制300ml的飽和硫酸銅加3L滅菌超純水混合成硫酸銅溶液加入水槽中。從操作者做起進(jìn)無菌室前要徹底洗手，按規(guī)定穿隔離衣。開始操作前要用75%酒精棉球擦手、擦瓶口和燒灼瓶口。操作者動(dòng)作要輕，安裝吸管帽、打開或封閉瓶口等操作應(yīng)在火焰近處并經(jīng)過燒灼進(jìn)行。但要注意，金屬器械不能在火焰中長時(shí)間燒灼，以防退火；燒過的器械要冷卻后才能使用；已吸過培養(yǎng)液的吸管不能再用火焰燒灼，因殘留在吸管內(nèi)的培養(yǎng)液成分如蛋白質(zhì)等燒焦后會(huì)產(chǎn)生有害物質(zhì)，吸管再用時(shí)會(huì)將其帶到培養(yǎng)液中；膠塞、橡皮乳頭及塑料的細(xì)胞培養(yǎng)用品過火焰是也不能時(shí)間太長，以免燒焦產(chǎn)生有毒氣體，危害培養(yǎng)細(xì)胞，同時(shí)塑料細(xì)胞培養(yǎng)用品也會(huì)產(chǎn)生變形影響使用。使用培養(yǎng)液前不宜過早開瓶，開瓶后的培養(yǎng)液應(yīng)保持斜位，避免直立，以防止下落細(xì)菌的污染。不再使用的培養(yǎng)液應(yīng)立即封閉瓶口，培養(yǎng)的細(xì)胞在處理之前勿過早暴露在空氣中。操作時(shí)盡量不要談話，咳嗽以防止來自唾沫和呼出的氣流所造成的污染。吸取培養(yǎng)液、細(xì)胞懸液時(shí)，應(yīng)專管專用，一旦發(fā)現(xiàn)吸管口接觸了手和其他污染物品應(yīng)棄去，以防止污染擴(kuò)大或造成培養(yǎng)物之間的交叉污染。操作完畢后應(yīng)整理好工作臺(tái)面，用消毒水浸泡的紗布擦拭臺(tái)面。（4） 防止細(xì)胞交叉污染所有從別處轉(zhuǎn)來的或是自己所建的細(xì)胞系都要早期留有的充足的凍存儲(chǔ)備，一旦懷疑發(fā)生交叉污染，可做細(xì)胞遺傳學(xué)方面的鑒定，如發(fā)現(xiàn)原有的細(xì)胞遺傳物發(fā)生改變，可以復(fù)蘇早期凍存的細(xì)胞使用。重要細(xì)胞系（株）的傳代工作應(yīng)由兩人獨(dú)立進(jìn)行。（5） 無菌室的徹底消毒新潔爾滅全面徹底擦洗無菌室。使用前應(yīng)稀釋即配即用。新潔爾滅和酒精相比，最大的優(yōu)點(diǎn)是便宜，因?yàn)樾聺崰枩?00ml只需5元，而且可以稀釋50倍用，而同樣量的酒精價(jià)格可能是新潔爾滅的幾十倍。甲醛熏蒸法：甲醛是一種廣譜滅菌劑菌，其水溶液和氣體對(duì)各種細(xì)菌、芽孢及真菌等微生物均有殺滅作用。甲醛價(jià)廉，熏蒸消毒時(shí)不損壞衣服、家具、皮革、橡膠等。市售的甲醛水溶液中一般含37-40%的甲醛。膠原酶的種類和選型在細(xì)胞的取材中，各種消化酶經(jīng)常用于組織的分散，在組織中取得目的細(xì)胞。例如脂肪間質(zhì)干細(xì)胞（ADSCs）、軟骨細(xì)胞培養(yǎng)等。其中膠原酶是最常用的一種。種類：I-IV型選擇：結(jié)締組織I，III型；骨組織、脂肪組織I型；軟骨組織II型；胰島細(xì)胞IV型。崩裂酶Dispase作用：用于增強(qiáng)膠原酶的消化能力，對(duì)細(xì)胞損傷最小。膠原酶VS胰酶胰蛋白酶（Trypsin），簡(jiǎn)稱胰酶，可使細(xì)胞間的蛋白質(zhì)水解從而達(dá)到細(xì)胞離散的目的，是目前應(yīng)用最為廣泛的消化劑，主要采自牛或豬的胰臟，呈白色粉末狀，易潮解，應(yīng)在低溫干燥處保存。胰酶適用于細(xì)胞間質(zhì)較少的軟組織（如胚胎、上皮、羊膜、肝、腎等軟組織）及傳代細(xì)胞的消化，但對(duì)于纖維性組織或較硬的癌組織則效果較差。胰酶活性可用消化酪蛋白的能力表示，常見有1：125和1：250,即一份胰酶可消化125或250份酪蛋白。組織培養(yǎng)用胰酶溶液一般配制成~%濃度，常用％，特別敏感的可以使用％。胰酶的消化效果主要于pH值、溫度、胰酶的濃度、組織塊的大小和硬度有關(guān)。胰酶作用及溶解的最佳pH是8~9,配制胰酶溶液可將液體調(diào)至pH8左右，充分溶解，過濾除菌，過濾后再調(diào)至左右。胰酶作用的最適溫度為37°C，在夏季室溫25°C以上對(duì)一般傳代細(xì)胞也能達(dá)到消化效果。一般新鮮配制的胰酶消化能力較強(qiáng)。消化時(shí)間要根據(jù)不同的情況而定，胰酶對(duì)細(xì)胞的分離效果與細(xì)胞的類型、特性和瓶壁表面特性有關(guān)。一般來說，溫度低，組織塊大、胰酶濃度低者，消化時(shí)間長，反之則相應(yīng)減少時(shí)間。酶的濃度過大或消化時(shí)間太長，會(huì)導(dǎo)致消化過度，對(duì)細(xì)胞的活性損傷較大，并有部分細(xì)胞漂浮，被消化掉；消化時(shí)間太短，消化不足則細(xì)胞難于從瓶壁上吹下，反復(fù)吹打同樣也會(huì)損傷細(xì)胞活性，也達(dá)不到分散細(xì)胞的目的。影響消化速度的因素較多，主要有胰酶溶液的活性（配制條件、凍存或4C保存時(shí)間長短、是否反復(fù)凍融、化凍后存放時(shí)間及溫度等）、消化時(shí)的溫度（氣溫、細(xì)胞培養(yǎng)瓶及胰酶溶液的溫度）以及所加胰酶溶液的多少等。在使用胰酶進(jìn)行消化時(shí)，可改變不同參數(shù)以確定出最佳消化效果。胰酶的配置方法：（1）稱取胰酶：按胰酶液濃度為％，用電子天平準(zhǔn)確稱取粉劑溶入PBS或D-hanks中，低速攪拌3~4小時(shí)或者置于4C過夜混勻（低速很重要，機(jī)械攪拌對(duì)酶是一種沖擊，如果起沫嚴(yán)重，有可能導(dǎo)致酶的變性）。（0）調(diào)節(jié)pH值為左右。用注射濾器過濾除菌，因蛋白制劑不宜4C長期保存，忌反復(fù)凍融，建議分裝成小瓶（離心管）于-20C凍存或置4C保存?zhèn)溆?。注意事?xiàng)：是否需要4C放置過夜，取決于胰酶的純度。過去的胰酶純度不高，所以難以溶解，需要4C過夜。而現(xiàn)在的胰酶純度都很高，就沒有必要4C過夜。從理論上來說，4C放置過夜，給細(xì)菌生長的機(jī)會(huì)，盡管過濾可以除去細(xì)菌，但除不掉其代謝產(chǎn)物。如果胰酶不溶、有絮狀物，考慮可能的原因有：胰酶過期或是已經(jīng)部分變性；溶液pH值不對(duì)；在沒過濾之前的絮狀沉淀是正常現(xiàn)象，因胰酶多取自動(dòng)物胰腺，沉淀為組織塊，過濾后即可。Ca2+、Mg2+、血清和蛋白質(zhì)對(duì)胰酶的活性有一定的抑制作用，所以需用不含Ca2+、Mg2+、這些離子的BSS如D-Hanks或者PBS來配制。正是這個(gè)道理，開始消化前，需用PBS將培養(yǎng)液沖洗干凈后方加入胰酶進(jìn)行消化，否則會(huì)大大影響胰酶的作用效果。終止消化時(shí)，可用含有血清培養(yǎng)液或者胰酶抑制劑終止胰酶對(duì)細(xì)胞的作用。對(duì)于一些貼壁特別牢固的細(xì)胞，可在上述配方中，加入%的EDTA，將胰酶與EDTA（乙二胺四乙酸）混合來進(jìn)行消化。EDTA可通過結(jié)合（螯合）細(xì)胞間質(zhì)中的二價(jià)陽離子從而破壞細(xì)胞連接從而增加消化效力。但因EDTA不能被血清中和，終止消化后，需用培養(yǎng)液或PBS徹底沖洗培養(yǎng)瓶（板），使得更好的再次利用培養(yǎng)瓶（板），否則再培養(yǎng)時(shí)可能會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞容易脫壁。EDTA在常溫下難溶于酸，微溶于水（20°C時(shí)溶解度只有），但在堿性溶液中溶解性較大。因此為了更快的溶解EDTA可采取調(diào)節(jié)PH或者是加熱的辦法。但須注意：由于胰酶不耐高溫，因此待EDTA溶解后，溫度有所下降才能加入胰酶。如果是單獨(dú)配置EDTA溶液，配制后可過濾除菌，也可高溫消毒滅菌。膠原酶（collagenase）是從溶組織梭狀細(xì)胞芽孢桿菌提取制備的，主要水解結(jié)締組織中膠原蛋白成分。當(dāng)擬消化的組織較硬，內(nèi)含較多結(jié)締組織或膠原成分時(shí)，用胰蛋白酶解離細(xì)胞的效果較差，這時(shí)可采用膠原酶解離細(xì)胞法。膠原酶僅對(duì)細(xì)胞間質(zhì)有消化作用而對(duì)上皮細(xì)胞影響不大。因此適于消化分離纖維性組織、上皮及癌組織，可使上皮細(xì)胞與膠原成分分離而不受損害。常用劑量為最終濃度200U/ml（約為1mg/mL）或%~%。膠原酶分為l\ll、lll\IV、V型以及肝細(xì)胞專用膠原酶，要根據(jù)所要分離消化的組織類型選擇膠原酶類型。具體可見膠原酶的種類和選型。膠原酶消化緩和、無須機(jī)械振蕩，因而可進(jìn)一步提高細(xì)胞成活率，但膠原酶價(jià)格較高，大量使用將增加實(shí)驗(yàn)成本。膠原酶的配置膠原酶溶液同胰蛋白酶一樣配制、消毒滅菌和儲(chǔ)藏。關(guān)于胰蛋白酶配置方法可見：胰蛋白酶消化法。注意：因?yàn)閘型膠原酶分子顆粒比胰酶大，不容易過濾，因此可以用蔡式濾器過濾除菌。鈣、鎂離子和血清成分不會(huì)影響膠原酶的消化作用，因而可用BSS（如D-hanks或者PBS）或含血清的培養(yǎng)液配制。膠原酶的使用：（1） 將漂洗、修剪干凈的組織剪成1~2mm3左右小塊（2） 將組織塊放入離心管（三角燒瓶）中加入30~50倍體積的膠原酶溶液，旋緊蓋子（密封燒瓶）。（3） 將燒瓶放入37C水浴或者37C孵箱內(nèi)，每隔3min振搖一次，如能放在37C的恒溫震蕩水浴箱中則更好。消化時(shí)間與組織的類別很有關(guān)系，對(duì)于某些腫瘤組織或其他較致密結(jié)締組織，消化時(shí)間4~48h，對(duì)于容易消化的組織可以采用37C震蕩消化15~45min，也可以根據(jù)具體情況而定。如組織塊已分散而失去塊的形狀，一經(jīng)搖動(dòng)即成細(xì)胞團(tuán)或單個(gè)細(xì)胞，可以認(rèn)為已消化充分。上皮組織經(jīng)膠原酶消化后，由于上皮細(xì)胞對(duì)此酶有耐受性，可能仍有一些細(xì)胞團(tuán)未完全分散，但成團(tuán)的上皮細(xì)胞比分散的單個(gè)上皮細(xì)胞更易生長，因此，如無特殊需要可以不必再進(jìn)一步處理。（4）收集消化液（有時(shí)含個(gè)別組織塊及沒有充分消化的組織碎屑則需用100目不銹鋼網(wǎng)過濾），離心1000r/min，5min，去除上清，用Hanks液或者無血清培養(yǎng)液離心漂洗1~2次，去除上清，加培養(yǎng)液制成細(xì)胞懸液，接種培養(yǎng)瓶。膠原酶Vs胰蛋白酶胰蛋白酶和膠原酶消化時(shí)間與濃度上的差異，依消化溫度而異。另外這兩種酶也可混合應(yīng)用，濃度為：胰蛋白酶+膠原酶mL。兩酶相比的差別見表1和表2。表1胰蛋白酶和膠原酶生物活性的差別項(xiàng)目胰蛋白酶膠原酶消化特性適用于消化軟組織適用于消化纖維多的組織用量％~%~mg/mL（200U/mL）消化時(shí)間~2h1~12hpH8~9~作用強(qiáng)度強(qiáng)烈緩和細(xì)胞影響時(shí)間過長有影響無大影響血清抑活有無Ca2+和Mg2+有影響無影響表2胰蛋白酶和膠原酶在不同溫度下消化各種組織小塊（~1cm3）時(shí)所需時(shí)間（h）酶種類和用量較硬組織軟組織4°C室溫37°C4°C室溫37°C胰蛋白酶（%）24~481~61~212~241~2~1膠原酶（1200U/mL）246123胰蛋白酶（%）+膠原酶（200U/mL）12~4612~244~1212~246~121~2干細(xì)胞的種類和表面標(biāo)記通過流式細(xì)胞儀分析，間充質(zhì)干細(xì)胞特異性表面抗原有：SH2、SH3、CD29、CD44、CD71、CD90、CD106、CD120a、CD124。BMSC：是骨髓中除HSC以外的非造血性干細(xì)胞，骨髓中絕大多數(shù)是HSC，BMSC只占骨髓有核細(xì)胞的％?％。因此鑒定BMSC的方法是在骨髓的干細(xì)胞中排除HSC——BMSC：CD45-、CD34-\CD29+、CD14+/HSC：CD34+。間質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)原理概述間質(zhì)干細(xì)胞（mesenchymalstemcell,MSC）是一群中胚層來源的具有自我更新和多向分化潛能的多能干細(xì)胞，在適宜的培養(yǎng)條件下可分化成多種組織細(xì)胞，包括成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、肌肉細(xì)胞、脂肪細(xì)胞等。間質(zhì)干細(xì)胞最早是從骨髓中分離得到的，正常情況下，它在骨髓中的比例非常低，僅占單核細(xì)胞的1/105~1/104。骨髓中單個(gè)核細(xì)胞包括淋巴細(xì)胞和單核細(xì)胞，其體積、形態(tài)和密度與其他細(xì)胞不同，紅細(xì)胞和多核白細(xì)胞密度較大，為g/ml左右，而淋巴細(xì)胞和單核細(xì)胞密度為~g/ml，血小板為~g/ml。為此利用一種密度介于~g/ml之間而近于等滲的溶液（分層液）進(jìn)行密度梯度離心，使一定密度的細(xì)胞按相應(yīng)密度梯度分布，從而將各種血細(xì)胞加以分離。常用的分層液有Ficoll和Percoll兩種。在骨髓的原代培養(yǎng)物中，除了貼壁生長的成纖維細(xì)胞樣的間質(zhì)干細(xì)胞外，還混雜著一些巨噬細(xì)胞、單核細(xì)胞、造血細(xì)胞及紅細(xì)胞等，要得到較均一的間質(zhì)干細(xì)胞，必須除去其他細(xì)胞。根據(jù)其他細(xì)胞的特性，可采用不同的方式排除它們。對(duì)于紅細(xì)胞，因其不貼壁，可通過換液除去。對(duì)于貼壁的單核巨噬細(xì)胞，可根據(jù)其黏附能力的不同，通過調(diào)整Trypsin/EDTA的消化時(shí)間，保證間質(zhì)干細(xì)胞在短暫的作用時(shí)間內(nèi)與塑料培養(yǎng)瓶壁分離，而巨噬細(xì)胞、單核細(xì)胞、造血細(xì)胞等仍貼附于培養(yǎng)瓶壁，從而使間質(zhì)干細(xì)胞與其他的貼壁細(xì)胞得到分離。在傳代培養(yǎng)中，接種密度是影響體外培養(yǎng)間質(zhì)干細(xì)胞增殖潛能的重要因素。低密度接種時(shí)，間質(zhì)干細(xì)胞的增殖能力明顯提高，而誘導(dǎo)細(xì)胞分化時(shí)則需要較高的細(xì)胞密度，這可能與分化時(shí)細(xì)胞與細(xì)胞間的相互作用有關(guān)。而在培養(yǎng)過程中，若細(xì)胞過度融合會(huì)促進(jìn)其分化趨向，故要保持干細(xì)胞未分化狀態(tài)，要及時(shí)傳代。間質(zhì)干細(xì)胞成脂和成骨誘導(dǎo)分化成骨和成脂誘導(dǎo)是鑒定干細(xì)胞的一種重要的方法，也是最常用、報(bào)道見得最多的方法。成骨最常用的染色方法是茜素紅染色(堿性磷酸酶)，成脂誘導(dǎo)最常用是OilRedO(油紅O)染色法。下面我介紹一下這兩種染色方法的原理和步驟。茜素紅染色方法和原理：成骨誘導(dǎo)的過程是使鈣離子能夠以鈣鹽的方式沉淀下來，這就是我們常說的“鈣結(jié)節(jié)”。鑒定鈣結(jié)節(jié)的染色方法常用“茜素紅”。步驟：吸去誘導(dǎo)液，再PBS洗一到兩次；加入10%中性甲醛，固定30min-60min；吸去固定液，加入％的茜素紅染色液，染色6-10min；用PBS洗兩次，去處殘留的染色液；加入PBS，完成染色；茜素紅：茜素磺酸鈉，茜素S，茜素紅S，茜素胭脂紅，1,2-二羥基蒽醌-3-磺酸鈉，1,2-二羥基蒽醌-3-磺酸鈉鹽。橙黃色或黃棕色粉末。易溶于水，微溶于乙醇，不溶于苯和氯仿。1%水溶液pH為，其水溶液呈淺黃褐色，加鹽酸后變成黃色，加氫氧化鈉后則變成藍(lán)紫色。有刺激性。能與許多金屬離子生成帶色化合物，能與錯(cuò)、釷、鋁、鈦及鈹和鈣的顯色反應(yīng)。染色的原理就是茜素紅和鈣發(fā)生顯色反應(yīng)，產(chǎn)生一種深紅色的帶色化合物，這樣成骨誘導(dǎo)的細(xì)胞外面沉積的鈣結(jié)節(jié)也就被染成了深紅色。OilRedO(油紅O)染色的方法和原理：成脂肪誘導(dǎo)的過程中，細(xì)胞在胞漿中不斷有油滴的累積，并不斷的增加變大，最后整個(gè)細(xì)胞的胞漿中都是油滴。OilRedO染色的方法是對(duì)油滴的染色的一種方法。步驟：吸去誘導(dǎo)液，再PBS洗一到兩次；加入10%中性甲醛，固定60min；吸去固定液，加入現(xiàn)配和過濾后的OilRedO染色液，染色60min；用PBS洗2-5次，去處殘留的染色液和殘?jiān)?；加入PBS，完成染色；OilRedO（油紅O）：1-[2,5-二甲基-4-（2,5-二甲基苯偶氮）苯偶氮]-2萘酚，蘇丹紅5B，溶劑紅27。紅色粉末。是一種油溶性偶氮染料。易溶于苯，溶于乙醇（呈淺黃色紅色）和丙酮。生物染色劑,淀粉凝膠電泳中作類脂和脂肪染色。顯微技術(shù)中用作脂肪染色劑。作為脂肪細(xì)胞的染色劑的原理是使用OilRedO的油溶性，對(duì)其它的細(xì)